鸭皮胶原蛋白肽的制备及抗氧化活性

2019-07-22郭德斌苏婷郭振毛春财卢素珍王辉

浙江农业科学 2019年7期

郭德斌，苏婷，郭振，毛春财，卢素珍，王辉*

(1.江西煌上煌集团食品股份有限公司，江西南昌 330200； 2.南昌大学食品科学与技术国家重点实验室，江西南昌 330047)

鸭肉具有大补消热、利便除肿、消胀利脏等功效，一直是餐桌上的上乘佳肴。鸭肉含有丰富的蛋白质、脂肪等营养物质，尤其是蛋白质含量和品质比畜肉高，脂肪、碳水化合物含量适中[1]。另外，鸭皮中含有丰富的胶原蛋白，是美容养颜、滋阴补肾的佳品。据报道，鸭皮胶原蛋白的氨基酸组成和比例非常优越，羟脯氨酸含量较高，且胶原蛋白的结构与人体胶原蛋白结构比较相似，是生产胶原蛋白的最佳原料[2]。

目前，胶原蛋白质的提取技术主要有酸法[3]、碱法、酶法、水提法等等，其中酸法、碱法和水提法的反应条件比较剧烈，易使蛋白质上的氨基酸发生其他副反应，影响胶原蛋白的品质。酶法具有效率高、反应温和、不破坏蛋白质的原始氨基酸结构等优点[4]，被广泛用于胶原蛋白的提取。鸭肉制品的加工是我国的传统产业，在全国各地均有较多的消费群体，但是关于鸭骨、鸭皮、鸭皮中胶原的研究较少，仅有鸭骨成分和鸭骨糜加工等方面的研究报道[5]。肉鸭加工中还会产生鸭皮等副产物，仅伊莉等[3]研发了酸法提取鸭皮胶原蛋白的工艺和技术。本文以鸭皮为主要原料，以水解度和抗氧化活性为指标筛选最佳蛋白酶，通过单因素和正交试验研究鸭皮胶原蛋白肽的最佳制备工艺，并进行分子质量和抗氧化活性分析，为鸭皮的高值化综合利用提供新方法。

1 材料与方法

1.1 材料与仪器

鸭皮来源于江西煌上煌集团食品股份有限公司。2.4 L Alcalase碱性蛋白酶购于丹麦诺维信公司；其他试剂均为国产分析纯。

U-2910紫外/可见分光光度计(日本日立公司)；Synergy H1酶标仪(美国Bio-Tek公司)；TGL-10C高速台式离心机(上海安亭科学仪器厂)；TP-214型分析天平(北京赛多利斯仪器系统有限公司)；Agilent 1100 HPLC(美国安捷伦科技技术有限公司)；B-260型恒温水浴锅(上海亚荣生化仪器厂)。

1.2 处理设计

1.2.1 鸭皮的粉碎和脱脂处理

将新鲜鸭皮清洗干净，采用胶体磨进行鸭皮的粉碎，得到鸭皮糜，然后以低沸点正己烷为提取剂，采用溶剂脱脂技术进行鸭皮糜的脱脂，使脂肪残留量低于5%(占干物质量)。

1.2.2 最适蛋白酶的选择

通过相关文献、市场销售和工艺需求，分别从表1的4种蛋白酶中进行最适蛋白酶的选择，比较不同酶对鸭皮糜的水解度，水解度最高的酶为最适合酶。

表1 最适蛋白酶的酶解条件

1.2.3 鸭皮中胶原多肽的提取

以脱脂后的鸭皮糜为原料，按照一定的料液比加入去离子水，在一定温度和pH值条件下采用碱性蛋白酶进行水解，以水解度为主要指标，以料液比、温度、pH值、酶添加量和时间为主要影响因素，通过单因素和正交试验确定鸭皮中胶原多肽的最佳提取工艺。

单因素试验：液料比分别为1∶5、1∶10、1∶15、1∶20、1∶25和1∶30；加酶量分别为4 000、5 000、6 000、7 000、8 000、9 000 U·g-1；温度分别为50、55、60、65、70 ℃；pH值分别为7、7.5、8.0、8.5、9.0；水解时间分别为1、2、3、4、5、6 h。

根据单因素试验结果，进行4因素3水平正交试验设计：1、2、3水平的酶解温度(A)分别为55、60、65 ℃，液料比(B)分别为1∶18、1∶20、1∶22，加酶量(C)分别为6 500、7 000、7 500 U·g-1，pH(D)分别为8.0、8.5、9.0。

1.3 指标测定

采用甲醛滴定法[6]测定水解度。

将最佳工艺制备得到的鸭皮胶原多肽溶于去离子水，用0.45 μm的微孔滤膜过滤后，采用高效体积排阻色谱法测定分子质量[7]。

羟自由基(·OH)清除能力的测定。分别取1.0 mL不同浓度的鸭皮胶原肽溶液加入5 mL的具塞试管中，然后依次分别加入硫酸亚铁(2 mL，1.8 mmol·L-1)、水杨酸-乙醇(1.5 mL，1.8 mmol·L-1)、H2O2(0.1 mL，8.8 mmol·L-1)，37 ℃孵化30 min；然后取200 μL反应液于96孔的酶标板上测量波长510 nm处的吸光度值Di，空白样品为去离子水样品，吸光度值为D0。羟自由基清除率(%)[8]=[(D0-Di)/D0]×100。

还原力的测定。分别取2.0 mL不同浓度的多肽溶液移入10 mL的具塞比色管中，然后依次加入2 mL磷酸盐缓冲液(0.2 mol·L-1，pH值6.6)、2 mL质量分数为1%的K3Fe(CN)6，混合均匀，于50 ℃水浴锅中反应20 min，然后冷却至室温。随后加入2 mL质量分数10%的三氯乙酸，混匀离心后取2 mL上清液，加2 mL去离子水和0.4 mL 0.1% FeCl3，混匀后于700 nm处测定Di。以去离子代替样品作为对照[9]。

DPPH清除能力测定。分别取100 μL不同浓度的胶原多肽移至96孔酶标板，然后加100 μL 0.2 mmol·L-1的DPPH的乙醇溶液，混匀，在常温条件下避光反应30 min，波长517 nm处测吸光度值D1。以95%乙醇代替DPPH溶液作为空白对照1(D0)，以去离子水代替胶原多肽为对照组2(D2)。DPPH清除率(%)[10]=(D2-D1)/(D2-D0)×100。

2 结果与分析

2.1 蛋白酶的筛选

水解度和抗氧化活性是衡量胶原多肽制备效率和产品效果的2个主要指标[10]。本研究选择具有较强活性的碱性蛋白酶、中性蛋白酶、风味蛋白酶和复合蛋白酶为主要水解酶，4种蛋白酶对鸭皮胶原多肽的水解效果和抗氧化活性如图1所示，碱性蛋白酶的酶解效率较高，且水解样品的羟自由基清除率、DPPH清除率和还原力均高于其他3种水解酶。因此，本试验以碱性蛋白酶为最佳水解酶开展后续试验。

同指标柱上无相同字母表示差异显著(P<0.05)。图2～4同

2.2 单因素试验

2.2.1 料液比对鸭皮胶原水解度的影响

料液比是影响鸭皮胶原蛋白水解的重要因素之一。如图2所示，随着料液比的增大，鸭皮胶原蛋白的水解度呈增加的趋势，且当料液比分别为1∶15、1∶20、1∶25和1∶30时，其水解度变化不显著。出现这种现象的原因有2个，一方面鸭皮糜本身含有一定的水分，料液比1∶15的条件下刚好使鸭皮糜达到最佳料液比；另一方面，在该条件下酶可以充分地与底物胶原蛋白接触和反应，物料浓度太高时，酶与底物不能充分接触，物料浓度太低时，酶与底物的接触面积也会相对减少[11]。

图2 料液比对鸭皮胶原蛋白水解度的影响

2.2.2 加酶量、温度对鸭皮胶原水解度的影响

加酶量和温度是鸭皮胶原水解的重要因素。由图3可知，酶的添加量与水解度成正相关，随着酶添加量的不断增加，鸭皮胶原的水解度显著提高，当酶加入量超过7 000 U·g-1后，水解度无显著变化，此时的反应达到平衡。主要是由于底物-酶的结合有一个最佳饱和度，当未达到饱和时，随着酶添加量增加，水解度逐渐提高；当二者达到饱和时，酶的添加量对其水解度的影响减小。出现这种现象的原因可能是，在蛋白质酶解初期，底物和酶之间的相互作用达到饱和，但是，随着酶添加量的增加，大部分反应底物被消耗，而使其水解度降低。因此，选取试验酶加入量的3个水平因素为5 000、6 000、7 000 U·g-1。随着温度的增加水解度呈现先增大后降低的变化趋势，当水解温度为60 ℃时，其水解度达到最大值，说明底物为鸭皮糜时，60 ℃为碱性蛋白酶的最佳酶解活性。

2.2.3 pH值和酶解时间对鸭皮胶原水解度的影响

由图4可知，pH值从7增加到9时，水解度呈现先增加后降低的趋势，当pH值为8.5时水解度达到最大。而随着酶解时间的延长，水解度不断提高。酶解时间为1、2 h时，水解度的升高速度最快，因为蛋白酶在前期活性最高，水解效率也最高。当时间超过5 h时，水解度无显著变化，这是因为当水解时间为1～5 h时，鸭皮胶原蛋白呈饱和状态，水解反应为零级反应，反应向产物生成的方向进行，当反应时间超过5 h，反应达到平衡，加上5 h以后蛋白酶的活性降低也会影响其水解度。

图3 加酶量和温度对鸭皮胶原蛋白水解度的影响

图4 pH值和反应时间对鸭皮胶原蛋白水解度的影响

2.3 正交试验结果

鸭皮胶原蛋白水解过程中的各个影响因素不是孤立发生的，是具有一定的相互关联性的。因此，要得到鸭皮胶原蛋白制备的最佳工艺，必须进行酶添加量、料液比、反应温度、时间和pH等各个因素正交试验[12]。根据单因素试验结果，选择固定酶解时间，进行料液比、酶解温度、加酶量、pH值4个因素的正交试验。由表2和极差分析结果可知，各因素对鸭皮中胶原蛋白水解度的影响大小为温度>料液比>pH>加酶量。鸭皮胶原水解的最佳工艺为温度60 ℃，料液比为1∶20，加酶量7 000 U·g-1，pH 8.5，反应4 h，此时水解度为22.14%。