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不同剂量异鼠李素对炎症损伤小鼠巨噬细胞RAW264.7增殖能力的影响及其机制探讨

2018-11-15王科庞辉梁春梅罗创才黄海珠周玉权吴青燕韦娇

山东医药 2018年39期
关键词:细胞培养低剂量细胞因子

王科,庞辉,梁春梅,罗创才,黄海珠,周玉权,吴青燕,韦娇

(1广西医科大学基础医学院,南宁 530021;2西安长安医院)

炎症反应是机体对于刺激的一种免疫性防御反应,通常情况下是有益的,是人体的自动的防御反应,但是如果炎症过激,也会对机体的组织产生损伤作用。在免疫系统中,巨噬细胞是人体的第一道防线,其几乎参与人体所有的免疫应答过程,对于识别、产生免疫应答及清除侵入人体的细菌、病毒或异物,以及人体产生的衰老、损伤细胞和坏死组织等起重要作用[1]。异鼠李素(ISO)是一种拥有多种药理作用的植物类黄酮化合物,结构为3,5,7,4′-OH3′-CH3,广泛存在于银杏、沙棘等多种植物的花、果实和叶中,有抗心律失常、心肌缺血、缺氧、清除氧自由基,抗病毒、抗肿瘤及减少血清胆固醇水平等作用[1~5]。最近研究[4~8]报道,ISO可显著抑制脂多糖诱导的急性肺损伤模型的中性粒细胞浸润,并减轻水肿。但目前针对ISO抗炎作用的文献报道较少。本研究观察了ISO对炎症损伤小鼠巨噬细胞RAW264.7增殖能力的影响,并探讨其机制。

1 材料与方法

1.1 药物、细胞、试剂及仪器 ISO(中国科学院成都生物研究所,批号:MUST-16120110)。RAW264.7细胞(广西医科大学药学院)。1640培养基、小牛血清、0.25%的胰酶-0.02%EDTA消化液(美国Gibco公司),双抗(美国Sigma公司),脂多糖(LPS)、MTT(噻唑蓝)试剂盒(北京Solarbio公司),一氧化氮(NO)试剂盒(北京百奥莱博科技有限公司),TNF-α-ELISA试剂盒(南京建成生物工程研究所)。酶标分析仪(Thermo Labsystems公司),倒置显微镜(日本奥林巴斯公司),Integral 10纯水仪(美国Millipore公司),二氧化碳恒温培养箱(美国Thermo Forma公司),超净工作台(苏州安泰空气技术有限公司)。

1.2 RAW 264.7细胞培养、分组及ISO给予方法 用1640培养基(含10%FBS)在37 ℃、5%CO2培养箱中培养RAW 264.7细胞。待细胞生长数量至对数生长期时,37 ℃环境下用胰酶进行消化5 min,用1640完全培养基洗涤,800 r/min离心5 min。细胞计数后接种于96孔板,每孔105个细胞,每组设6个复孔,总共铺4块板,贴壁培养12 h后按不同实验目的处理。所有细胞分为5组,对照组用溶剂DMSO(≤0.2%)代替药物培养细胞,模型组:用终浓度为10 ng/mL的LPS刺激细胞,使其产生炎症反应;低、中、高剂量组用10 ng/mL的LPS与终浓度为50、100、200 μg/mL的ISO(DMSO溶解)共同刺激细胞。

1.3 RAW264.7细胞增殖指数测算 细胞培养及分组参照“1.2”方法,分别在细胞培养12、24、36、48 h将MTT试剂加入到每个孔里,每孔50 μL,培养4 h后,弃去孔内培养基,每孔加入150 μL的二甲基亚砜,低速振荡5 min,在570 nm波长下,用酶标仪检测每个孔的OD值。计算细胞增殖指数,细胞增殖指数=药物组处理OD570 nm/对照组OD570 nm。

1.4 RAW264.7细胞NO检测 细胞培养及分组参照“1.2”方法,在细胞培养24 h后,每孔吸取上清100 μL,按照NO试剂盒说明书处理。在450 nm波长下,用酶标仪检测每个孔的OD值,根据标准曲线计算NO分泌量。

1.5 RAW264.7细胞TNF-α检测 细胞培养及分组参照“1.2”方法,在培养细胞24 h后,取上清,按照ELISA试剂盒说明书处理。在450 nm波长下,用酶标仪检测每个孔的OD值,根据标准曲线计算TNF-α分泌量。

2 结果

2.1 12、24、36、48 h各组细胞增殖指数比较 结果见表1。

表1 12、24、36、48 h各组细胞增殖指数比较

注:与对照组比较,*P<0.05;与模型组比较,#P<0.05;与低剂量组比较,△P<0.05。

2.2 各组细胞NO、TNF-α水平比较 结果见表2。

表2 各组细胞NO、TNF-α水平比较

注:与对照组比较,*P<0.05;与模型组比较,#P<0.05;与低剂量组比较,△P<0.05。

3 讨论

炎症反应是一种防御性或自身调节性反应,它会造成患者自身组织损伤和功能紊乱。RAW264.7细胞为小鼠腹腔的一种巨噬细胞,是动物体内重要的免疫调节细胞和炎症反应中的效应细胞,它在不同的微环境下分泌出多种不同的炎症细胞因子,在炎症反应、组织修复及维持机体稳态等方面发挥了重要作用。内毒素是革兰氏阴性菌细胞壁的主要成分,其主要成分为脂多糖,可以诱导巨噬细胞分化,使其产生炎症细胞因子,在抵抗病原入侵的同时也引起炎症反应及组织异常损伤。

ISO属于黄酮类化合物,广泛存在于植物界中,具有较好的抗肿瘤、降血脂、降血压、抗氧化以及扩张冠脉等作用,在心血管系统疾病防治中具有广泛的应用前景[1~10]。近年对ISO的研究主要集中在抗肿瘤方面,而在抗炎方面研究报告很少。本研究显示,与对照组比较,模型组细胞12、24、36、48 h细胞增殖指数增加;与模型组比较,低剂量组24、36 h及中剂量组和高剂量组12、24、36、48 h细胞增殖指数减少;与低剂量组比较,中剂量组24 h及高剂量组24、48 h细胞增殖指数减少。上述结果提示ISO可抑制炎症损伤RAW264.7细胞增殖能力,且呈剂量依赖性,高剂量作用最大。

细胞因子是具有调节炎症反应、调节免疫的小分子反应蛋白。在巨噬细胞被激活后,细胞因子可以分泌如IL-6、IFN-α、IL-1β等促炎症细胞因子来调控免疫系统[10~15]。NO是一种细胞信号调节因子,可作为第二信使参与机体多个生理和病理疾病的过程[16]。有研究[17~19]表明,巨噬细胞可以释放NO参与抗肿瘤、抗病毒、炎症反应及免疫应答等病理过程。NO的合成依赖于iNOS(诱导型一氧化氮合酶)的表达,iNOS的产生也受到一些促炎症细胞因子(如TNF-α、IL-1β等)的调控[12~22]。于是我们推测,ISO抑制RAW 264.7细胞中NO的释放,可能是通过抑制细胞内iNOS的表达有关。巨噬细胞感染病菌时,释放出的TNF-α是一种重要的促炎症因子,能促使细胞的活化和增殖,引起局部或全身的炎症反应,并经常参与自身免疫性反应的疾病。因此,抑制TNF-α等炎症细胞因子的分泌,可能阻碍机体炎症病理的继续发展[23,24]。本研究显示,与对照组比较,模型组NO、TNF-α水平升高;与模型组比较,低剂量组NO水平及中剂量组和高剂量组NO、TNF-α水平降低;与低剂量组比较,中剂量组和高剂量组NO、TNF-α水平降低。上述结果提示,ISO可抑制炎症损伤RAW 264.7细胞增殖能力的机制可能与抑制NO、TNF-α水平有关。

总之,ISO能抑制RAN 264.7细胞的增殖,进而抑制NO及TNF-α的分泌,从而发挥抗菌消炎作用,这可能与ISO可以抑制iNOS的表达及NF-κB信号通路的激活有关。但是这种抗菌消炎作用可能还通过其他通路发挥作用,因而要明确ISO具体的抗炎机制,还需进行进一步的药理研究。

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