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母胎亚甲基四氢叶酸还原酶基因C677T多态性与不明原因习惯性流产发生风险的相关性研究

2018-10-15李乾常亮刘平刘娟路建波高华方马旭

生殖医学杂志 2018年10期
关键词:叶酸等位基因基因型

李乾,常亮,刘平,刘娟,路建波,高华方,马旭

(1.国家卫生计生委科学技术研究所国家人类遗传资源中心,北京 100081;2.北京大学第三医院妇产科生殖医学中心,北京 100191)

习惯性流产(recurrent pregnancy loss,RPL)是指2次或2次以上的自然流产(约70%孕期不满12周流产),国际上多称之为复发性自然流产,临床发病率约2%~5%[1]。RPL发生的病因非常复杂,大致包括遗传因素[2]、自身免疫[3]、组织结构因素[4]、感染因素[5]、内分泌因素[6]和其他因素[7],但仍然有50%~70%的RPL患者无法明确原因[8],称为不明原因习惯性流产(unexplained recurrent pregnancy loss,URPL)。研究表明亚甲基四氢叶酸还原酶(MTHFR)C677T基因多态性通过影响血清同型半胱氨酸(Hcy)水平及DNA甲基化而造成URPL[9],但还存在一定的争议[10]。本研究拟纳入URPL及有正常妊娠史的女性及胎儿,探究母体及胎儿自身MTHFR基因C677T多态性与URPL的相关性。

资料与方法

一、研究对象

选取2014年12月至2016年12月在北京大学第三医院妇产科生殖医学中心就诊的URPL患者100名为病例组。纳入标准:年龄≤40岁、流产史≥2次;排除标准:染色体异常、抗核抗体阳性、妊娠高血压、糖尿病史、抗心磷脂抗体阳性、甲状腺功能异常、生殖系统解剖畸形、五种胎儿致畸病毒(TORCH)感染阳性、配偶生殖功能异常等患有明确引起流产的疾病。同时,100名URPL患者中收集到了配对的70例流产胎儿绒毛组织(均为9~13周内,胚胎发育停滞,行清宫术取样)。另征集100名有正常妊娠史的健康志愿者作为对照组,其中70例有胎儿脐带血样本。

本研究开始前经北京大学第三医院生殖伦理委员会审查批准(编号2015SZ-025),所有研究对象均签署知情同意书。

二、研究方法

1.样本采集:(1)病例组样本采集:胚胎发育停滞患者,行常规负压吸引清宫术,无菌条件下留取绒毛组织2 cm×2 cm,生理盐水充分漂洗,放入无菌器皿中;同时抽取患者外周静脉血2 ml,枸缘酸钠抗凝管-80℃保存。(2)对照组样本采集:胎儿娩出后,常规断脐,脐静脉穿刺取脐带血,本研究留脐带血2 ml,枸缘酸钠抗凝管-80℃保存;同时抽取产妇外周静脉血2 ml,枸缘酸钠抗凝管-80℃保存。

2.基因分型检测方法:基因检测采用BaiO©核酸提取试剂(上海百澳科技)提取血液及绒毛组织基因组DNA,采用BaiO©MTHFR(C677T)基因检测试剂盒[上海百澳科技,PCR-芯片杂交法国食药监械(准)字2012第3401329号]检测MTHFRC677T 基因多态性位点,操作按说明书进行。血样本加蛋白酶K短暂离心,加入200 μl缓冲液BL,500 r/min低速离心15 s,裂解细胞,活化吸附柱后转移至吸附柱中,洗脱获得DNA。PCR扩增时向扩增液中各加入1 μl反应液(冰上操作)。向扩增液中加入2 μl对应样本的模板DNA(冰上操作),低速离心混匀。运行扩增程序:50℃ 5 min,94℃5 min,(94℃ 25 s,56℃ 25 s,72℃ 25 s),72℃5 min。最后芯片杂交显色。

三、统计学处理

采用SPSS 22.0统计数据包进行两组间基因型、等位基因频率进行分析。URPL病例组与对照组两组间等位基因频率采用χ2检验进行分析;两组间母体-胎儿同时携带T等位基因频率采用Fisher精确检验,以P<0.05为差异有统计学意义。

结 果

一、URPL病例组与对照组MTHFR C677T位点基因型及等位基因频率比较

基因型频率统计结果提示,对照组C/C基因型频率显著高于病例组C/C基因型频率(P<0.05),两组C/T基因型频率比较无显著性差异(P>0.05);病例组T/T基因型频率显著高于对照组T/T基因型频率(P<0.05);另外病例组等位基因T频率显著高于对照组基因T频率,且病例组中等位基因T频率显著高于基因C频率,而对照组等位基因C频率显著高于病例组基因C频率(P<0.05)(表1)。

表1 URPL病例组和对照组MTHFR C677T基因型频率及等位基因频率比较结果[n(%)]

注:与对照组比较,*P<0.05

二、URPL病例组与对照组配对母体-胎儿同时携带MTHFR 677位T等位基因比较

URPL病例组配对的母亲和胎儿至少有一个为C/C基因型的配对组有18对,频率为25.7%;配对的母亲和胎儿同时携带T等位基因(即基因型C/T或T/T)的配对组有52对,频率为74.3%。对照组配对的母亲和胎儿至少有一个为C/C基因型的配对组有33对,频率为47.1%;配对的母亲和胎儿同时携带T等位基因(即基因型C/T或T/T)的配对组有37对,频率为52.9%。病例组和对照组配对的母亲和胎儿同时携带T等位基因的频率差异有统计学意义(Fisher精确检验,P=0.014),病例组显著高于对照组(P<0.05)(表2)。

表2 URPL病例组和对照组母体-胎儿同时携带MTHFR 677位T等位基因频率比较结果[n(%)]

注:与对照组比较,*P<0.05

讨 论

流行病学发现,复发性流产发生率约占全部妊娠的2%~5%[1]。除明确的遗传因素、自身免疫、组织结构因素内分泌因素和其他因素外,约有一半以上的患者发病原因仍然不明[11]。该疾病给家庭带来巨大的精神压力和经济压力,成为近年来的研究热点。

既往研究发现MTHFRC677T多态性与URPL可能存在相关性[12-14]。MTHFR是叶酸代谢过程中的关键性的酶,对5,10-亚甲基四氢叶酸还原成为5-甲基四氢叶酸起催化作用。MTHFR基因677位等位基因C变为T会导致MTHFR酶耐热性和活性下降甚至丧失,酶活性降低会导致5-甲基四氢叶酸合成减少,5-甲基四氢叶酸为Hcy提供一碳单位使其甲基化为甲硫氨酸,5-甲基四氢叶酸合成减少使Hcy不能甲基化为甲硫氨酸而造成Hcy堆积,导致血清Hcy水平升高[15-16]。Hcy具有细胞毒性可以使巯基氧化,细胞内产生大量氧自由基,损伤血管内皮并增加血栓形成风险,影响子宫胎盘血流灌注,导致胚胎血液供给不足影响生长发育从而使流产风险升高[17]。另外,MTHFR酶活性降低影响甲硫氨酸合成效率,导致甲基供给异常,出现DNA甲基化不足和DNA合成障碍,胚胎发育期甲基化异常导致胚胎正常发育失败,最终将导致出生缺陷或者胚胎停育[18-19]。

高Hcy血症可能是URPL的风险因子之一,但由于本研究纳入的URPL组中的部分患者已服用叶酸进行治疗,入组本研究时患者的血清Hcy水平已经大幅度降低。此外,影响血清Hcy水平的因素很多,包括年龄、性别、BMI[20]、饮食中是否摄入含大量蛋氨酸的食物[21]等,Hcy一次的检测结果难以反映患者妊娠时真实的水平。因此,本研究未将病例及对照Hcy水平纳入研究,而是关注URPL组与对照组MTHFR基因 C677T位点基因分型,结果显示URPL组中MTHFRC677T位点T等位基因频率显著高于对照组,支持MTHFRC677T位点T等位基因是URPL的高风险因子。

目前,胎儿本身的MTHFRC677T等位基因是否与URPL相关的研究比较少见,曾有报道认为夫妻配对研究可以间接地反映子代MTHFRC677T基因型,王亚文等[22]对32对有两次及两次以上URPL史的夫妇和39对健康夫妇进行MTHFRC677T相关性研究,结论认为子代携带MTHFR纯合或杂合突变可能是胚胎早期发育异常的原因之一,从而导致流产的发生。顾莹等[23]对URPL组和对照组各50对夫妇的外周血进行MTHFRC677T的位点多态性进行检测分析本研究结果显示,夫妇双方T等位基因频率在URPL组显著升高。本研究直接检测与母体配对的流产胎儿组织样本,分析结果显示配对的母体和胎儿均携带T等位基因时,URPL风险进一步升高。推测其原因,一方面母亲携带T等位基因,自身MTHFR酶活性降低,易发生Hcy堆积而使胎盘形成血栓风险升高,影响胚胎血液供给;另一方面胎儿自身携带T等位基因时,高Hcy产生细胞毒性,激发某些信号转导途径和控制系统,诱发细胞凋亡,影响胚胎早期重要的心脏、神经系统等的发育。因此,母体和胎儿均同时带T等位基因增加了URPL风险,进一步推测,对于夫妻双方均携带有T等位基因时,鉴于其遗传给胎儿的几率较大,因此应该密切关注其可能流产的风险。

综上所述,本研究的结果显示MTHFR677位 T等位基因是URPL的风险因素之一,为MTHFRC677T基因型与URPL相关性研究提供了一定的实验依据和资料积累。但是,本研究URPL病例组和对照组样本数量较少,日后还需要积累更多样本量继续验证工作。本研究的结果提示对于无法寻找出原因的习惯性流产患者,建议进行MTHFRC677T基因型的筛查,同时,如果有条件获取胎儿MTHFRC677T基因型时,应该密切关注母胎均携带MTHFR677位T等位基因的孕妇流产风险,并后续有针对性地进行预防和治疗。

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