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重组分泌型肿瘤坏死因子相关凋亡诱导配体腺病毒对PC-3细胞荷瘤鼠瘤体的生长抑制

2018-07-05高磊潘铁军谢鸣蒋渊喻希李想

实用医学杂志 2018年12期
关键词:荷瘤腺病毒前列腺癌

高磊 潘铁军 谢鸣 蒋渊 喻希 李想

中国人民解放军武汉总医院泌尿外科(武汉 430070)

肿瘤坏死因子相关凋亡诱导配体(tumor necrosis factor related apoptosis inducing ligand,TRAIL)被发现后,经过不断研究证实其在细胞凋亡中发挥重要作用。TRAIL能诱导多种肿瘤细胞的凋亡,被认为是一种很有前途的抗癌分子。我们前期成功构建了表达分泌型TRAIL基因的腺病毒载体Ad-sTRAIL,并且在体外实验中证实了Ad-sTRAIL可以抑制前列腺癌细胞增殖,促进肿瘤细胞凋亡。本研究试图探讨Ad-sTRAIL的体内抗肿瘤作用。

1 材料与方法

1.1 材料与分组

1.1.1 人前列腺癌细胞株 PC-3购于中国科学院上海细胞库。Ad-LacZ病毒,Ad-sTRAIL病毒均由本科构建保存。鼠抗人TRAIL单克隆抗体及兔抗鼠荧光素标记二抗均购自Santa公司。新生牛血清购于北京四季青生物技术公司;RPMI 1640细胞培养基(Gibco BRL公司)。DAPI染色液购于Beyotime公司。TUNEL检测试剂盒购于Roche公司。本研究起止时间为2015年3月至2016年10月。

1.1.2 分组 Control组:常规培养的PC-3细胞;Ad-LacZ组:40 MOI的Ad-LacZ感染的PC-3细胞;Ad-sTRAIL组:40 MOI的Ad-sTRAIL感染的PC-3细胞。

1.2 方法

1.2.1 DAPI染色检测细胞凋亡 高压消毒后无菌盖玻片置于24孔板中,取细胞浓度5×105/mL,每孔300 μL,接种后每24小时分别以40 MOI的Ad-LacZ和Ad-sTRAIL感染相应分组细胞,继续常规培养48 h。以4%多聚甲醛固定爬片,经0.1%Triton PBS作用5 min,0.01 mol/L PBS溶液洗涤,滴加DAPI染液染色10 min,流水冲去染液,滤纸吸除多余水分,加一滴荧光封片液,荧光显微镜观察并拍照。

1.2.2 Transwell实验 采用孔径为8 μm的24孔Borden小室(美国BD公司)进行实验。先用无血清培养液冲洗小室上室2次,然后加入1∶8稀释的Matrigel胶(美国BD公司)50 μL,37℃孵育30 min制作人工基底膜。以无血清培养基调整细胞密度为2 × 105个/mL,上室加入细胞悬液200 μL,下室加入600 μL含10%胎牛血清的培养液,37℃培养72 h后以Giemsa染色观察穿入下室面的细胞数。

1.2.3 体内抗肿瘤实验 PC-3细胞接种于雄性BALB/c裸鼠右侧腋窝皮下(第四军医大学实验动物中心提供)。待瘤块长至足够大时,取新鲜肿瘤组织在生理盐水中剪成3 mm×3 mm×3 mm大小的小块接种裸鼠右侧背部,选取荷瘤成功的裸鼠18只;随机分为3组,每组6只,分别为对照组、Ad-LacZ组和Ad-sTRAIL组。实验开始后7、14 d给药,共给药2次。每3天测量1次瘤体的长径(a)和短径(b),按肿瘤体积V=a×b2/2。共观察21 d,依据肿瘤体积计算肿瘤抑瘤率(%)=1-实验组肿瘤体积/对照组肿瘤体积。

1.2.4 荷瘤组织免疫组化 4%多聚甲醛固定,制作蜡块、切片、贴片;用二甲苯浸洗2次,每次5 min;用梯度乙醇(100%、95%、90%、80%、70%)各浸洗1次,每次3 min。PBS清洗;加入0.3%的过氧化氢甲醇溶液30 min,PBS清洗5 min×3;0.3%Triton×100处理30 min,PBS清洗5 min×3。加入1∶500稀释的鼠抗人TRAIL单克隆抗体,4℃存放24 h;吸去抗体,PBS清洗5 min×3。加入PBS稀释的以生物素标记的兔抗鼠二抗,室温孵育2 h。PBS清洗5 min×3。加入ABC复合物,室温孵育2 h,PBS清洗5 min×3;蒸馏水迅速冲3次。加入DAB显色10 min,用蒸馏水迅速冲洗,苏木素复染30 s;梯度酒精脱水之后,封片,拍照。

1.2.5 荷瘤组织TUNEL染色 4%多聚甲醛固定,制作蜡块、切片、贴片;用二甲苯及梯度乙醇;PBS漂洗3次;用Proteinase K工作液处理组织15 min在37℃;PBS漂洗3次;加50 μL TUNEL反应混合液于标本上,加盖玻片反应37℃×1 h。PBS漂洗3次;加50 μL converter-POD于标本上,加盖玻片反应37℃×30 min。PBS漂洗3次;在组织处加100 μL DAB底物,反应25℃×10 min;PBS漂洗3次;拍照后再用苏木素复染30 s。梯度酒精脱水之后,封片,拍照。

1.3 统计学方法 采用SPSS 18.0进行统计学分析,结果中定量数据用±s表示,均数间的两两比较采用SNK-q检验,P<0.05为差异有统计学意义。

2 结果

2.1 DAPI染色 Ad-sTRAIL组肿瘤细胞凋亡水平明显高于Control组和Ad-LacZ组。Ad-sTRAIL组肿瘤细胞出现皱缩,胞浆致密,核染色质边集,并且胞核裂解,形成含核碎片和细胞器成份的凋亡小体(图1)。

2.2 TranswellAd-sTRAIL组穿入下室面的细胞数(24.8±3.70)明显少于对照组(47.6±4.28,q=10.68,P<0.01)及Ad-LacZ组(49.6±4.39,q=11.61,P<0.01)。见图2。

2.3 体内抗肿瘤实验 与Control组和Ad-LacZ组的细胞相比,Ad-sTRAIL组的荷瘤鼠肿瘤生长能力显著降低(图3)。经计算后可见Ad-sTRAIL对荷瘤鼠肿瘤的抑制率3 d为8.15%(P<0.05),6 d为11.55%(P<0.01),9 d为17.23%(P<0.01),12 d为20.05%(P<0.01),15 d为27.18%(P<0.01),18 d为34.27%(P<0.01),21 d为33.08%(P<0.01),随时间抑制作用逐渐增强。

图1 Ad-sTRAIL对PC-3细胞凋亡的影响(×200)Fig.1 The effects of Ad-sTRAIL on PC-3 cells apoptosis(× 200)

图2 Ad-sTRAIL对PC-3细胞侵袭能力的影响(×200)Fig.2 The effects of Ad-sTRAIL on PC-3 cells invasion(× 200)

图3 Ad-sTRAIL对荷瘤鼠肿瘤增殖能力的影响Fig.3 The effects of Ad-sTRAIL on the tumor proliferation of tumor-bearing mice

2.4 免疫组化实验 Ad-sTRAIL组荷瘤鼠肿瘤组织中TRAIL表达水平明显高于Control组和Ad-LacZ组(图4)。TUNEL实验显示:Ad-sTRAIL组荷瘤鼠肿瘤细胞核染色明显,表明该组细胞凋亡水平明显高于Control组和Ad-LacZ组(图5)。

3 讨论

前列腺癌是男性生殖系统常见的恶性肿瘤。在北美和欧洲国家中,前列腺癌为男性的第二大恶性肿瘤,在我国的发病率也有明显增加的趋势[1]。目前,对于伴发转移的难治性前列腺癌主要的治疗方法是化疗。但由于前列腺癌属于对化疗不敏感的肿瘤,并常产生耐药性,所以常规化疗很难达到令人满意的治疗效果。随着对肿瘤发病机制的不断研究,基因治疗已成为前列腺癌治疗的重要方法[2]。

TRAIL是肿瘤坏死因子家族的新成员,其可诱导肿瘤细胞发生凋亡等,但对正常的细胞却无影响[3]。有研究表明:TRAIL可以抑制人肺癌细胞的增殖,促进肿瘤细胞凋亡;并且当TRAIL与格列吡嗪联合应用时可以发挥更好的抗肿瘤效果[4]。同时,TRAIL在小细胞肺癌和肝癌中发挥重要作用,其主要是通过活化Caspase-8达到促进肿瘤细胞凋亡的效果。但TRAIL的促凋亡作用可被DNA损伤诱导凋亡抑制因子(DNA damage-induced apoptosis suppressor,DDIAS)减弱[5]。此外,TRAIL可与结肠癌细胞中的死亡受体结合,活化Fas相关的死亡结构域蛋白(Fas associated death domain protein,FADD),从而促进结肠癌细胞凋亡。并且,TRAIL与热休克蛋白90(heat shock protein 90,Hsp90)联合应用可以进一步增强其促凋亡作用[6]。大量研究表明TRAIL可以诱导多种肿瘤细胞凋亡[7]。作为肿瘤坏死因子家族TNF相关的凋亡诱导配体,TRAIL可与死亡受体(TRAIL-R1和TRAIL-R2)结合,激活Caspase信号通路,进而引起细胞凋亡。TRAIL-R2在前列腺癌中高表达,特别是晚期前列腺癌[8]。因此前列腺癌细胞对TRAIL反应敏感,所以构建表达TRAIL的腺病毒用于治疗前列腺癌存在理论基础[9]。本研究成功构建了表达分泌型TRAIL基因的腺病毒载体Ad-sTRAIL;并以该载体感染前列腺癌细胞株PC-3,结果表明经Ad-sTRAIL感染组肿瘤细胞凋亡水平明显增加;同时Ad-sTRAIL还抑制了PC3细胞的侵袭能力。TRAIL蛋白表达水平增加导致其与死亡受体结合增加,诱导胞内死亡结构域变构,从而催化裂解Caspase-8前体,激活形成活化型Caspase-8,进一步放大凋亡信号以诱导细胞死亡。进一步的实验也验证了这一结论,DAPI染色显示Ad-sTRAIL感染前列腺癌细胞后,肿瘤细胞凋亡水平显著提升,出现皱缩,胞浆致密,核染色质边集,并且胞核裂解,形成含核碎片和细胞器成份的凋亡小体。另外,Transwell试验结果显示Ad-sTRAIL感染后细胞侵袭转移的能力明显降低。进一步荷瘤鼠实验表明,Ad-sTRAIL组的荷瘤鼠肿瘤生长能力显著降低,证明Ad-sTRAIL在体内亦能发挥抑制肿瘤生长的作用。免疫组化实验及TUNEL实验证实,荷瘤鼠肿瘤组织中TRAIL表达水平的增加导致了肿瘤细胞凋亡水平的增加。

图4 TRAIL蛋白在3组荷瘤鼠肿瘤组织中的表达(×200)Fig.4 The expression of TRAIL protein in tumors of three groups tumor-bearing mice(× 200)

图5 Ad-sTRAIL对3组荷瘤鼠肿瘤细胞凋亡的影响(×200)Fig.5 The effects of Ad-sTRAIL on tumor cells apoptosis of three groups tumor-bearing mice(× 200)

综上所述,通过提高TRAIL的表达在体内外均可以抑制PC-3细胞增殖,促进细胞凋亡;其具体机制可能是通过增加前列腺癌细胞中TRAIL的表达来活化Caspase-3和Caspase-8达到促进前列腺癌细胞凋亡的作用。本研究成功在体内实验中验证了Ad-sTRAIL抗肿瘤效果,为下一步的临床抗肿瘤研究奠定了基础。

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