APP下载

广西某市屠宰猪淋巴结猪圆环病毒3型的病原检测及遗传演化分析

2018-07-04季程远王蔚怡冯选榕冯园青覃一峰方庆励欧阳康韦祖樟黄伟坚广西大学动物科学技术学院南宁530004

畜牧兽医学报 2018年6期
关键词:进化树相似性毒株

季程远,王蔚怡,冯选榕,姚 静,黄 欣,冯园青,覃一峰,方庆励,陈 樱,欧阳康,韦祖樟,黄伟坚(广西大学动物科学技术学院,南宁 530004)

猪圆环病毒(porcine circovirus,PCV)是一种呈二十面体对称、无囊膜的单股环状负链DNA病毒。它是迄今为止发现的最小的动物病毒,成熟的病毒粒子平均直径约为17 nm[1-2]。PCV主要分为三种血清型,PCV1、PCV2和PCV3。PCV1基因组序列为1 759 bp,包含7个开放阅读框(ORFs),即ORF1~ORF7;PCV2基因组序列为1 767或1 768 bp,包含11个开放阅读框,即ORF1~ORF11[3]。各个开放阅读框之间大小相距甚多,正链上包括ORF1、ORF5、ORF7、ORF10,负链上包括ORF2、ORF3、ORF4、ORF6、ORF8、ORF9、ORF11,虽然圆环病毒非常短小,但是这些开放阅读框之间会有部分碱基重叠,这样就可以充分利用病毒有限的遗传物质;PCV3基因组序列为2 000 bp,目前只确定了ORF1和ORF2,对于它的更多的开放阅读框作用功能还没有定论[4-5]。ORF1主要负责与病毒复制相关蛋白的编码(Rep蛋白),ORF2主要负责病毒衣壳蛋白的编码(Cap蛋白)[6]。

PCV1虽普遍存在于猪群中,但是对猪没有致病性[7];PCV2被认为是断奶仔猪综合征(postweaning multisystemic wasting syndrome,PMWS)的主要病原,导致断奶仔猪生长缓慢,消瘦等,甚至一些呼吸道疾病、肠道疾病、繁殖障碍等也被证实与PCV2相关[8-10];PCV3是2016年新发现的猪环状病毒,与猪皮炎肾病综合征(porcine dermatitis and nephropathy syndrome)相关,且会导致母猪死亡率和流产率升高[11]。

为了解PCV3在健康猪群中的感染情况,本研究对广西某市屠宰场健康猪淋巴结进行PCR检测。对阳性样品进行全序列扩增并分析比对序列,进一步了解PCV3的遗传变异情况,为广西地区PCV3的研究提供科学依据。

1 材料与方法

1.1 材料

1.1.1 样品采集 2017年6月—2017年8月来自广西某市屠宰场的淋巴结181份,进行PCV3检测。

1.1.2 主要试剂 PCR用预混酶购自Vazyme;DH5α感受态细胞、DNA抽提试剂盒购自康为世纪公司;氨苄西林钠粉末购自Soarbio;pMD18-T载体、BanHⅠ内切酶 、Hind Ⅲ内切酶、DNA MarkerDL2000购自TaKaRa;DNA纯化、质粒小提试剂盒购自OMEGA。

1.2 方法

1.2.1 引物设计 PCV3的检测引物是根据PCV3基因上保守片段设计的一对引物命名为PCV3-2F/PCV3-1R,PCR扩增长度为649 bp;PCV3全基因引物分为PCVG2-F/G2-R和PCVG4-F/G4-R,PCR扩增长度分别是1 075和1 337 bp。引物使用终浓度为10 pmol·μL-1,稀释后-20 ℃保存。引物序列和片段长度如表1所示。

表1本研究所用引物列表

Table1Listofprimersusedinthisstudy

引物名称Primers引物序列(5′→3′)Sequence片段长度/bpProductsizePCV3⁃2F/1RACTTAGAGAACGGACTTGTAACGAA649AAATGAGACACAGAGCTATATTCAGPCVG2⁃F/G2⁃RTTGCACTTGTGTACAATTATTGCG1075ATCTTCAGGACACTCGTAGCACCACPCVG4⁃F/G4⁃RTCCACGGAGGTCTGTAGGG1337GATTCGTTACAAGTCCGTTCTC

1.2.2 病毒基因组DNA提取 取适量送检组织病料置于碾钵中充分碾磨至糊状,加入2~3 mL灭菌PBS(pH 7.42)混匀,将混合液吸至干净的1.5 mL EP管中,置于-80 ℃冰箱反复冻融3次。按照DNA提取试剂盒说明书,提取病毒基因组DNA,提取的DNA置于-20 ℃保存备用。

1.2.3 DNA纯化回收及重组质粒鉴定 DNA纯化回收按照试剂盒说明步骤操作,将胶回收产物与pMD18-T载体按其说明书进行连接,转化入DH5α感受态细胞。挑选单个菌落接种含有Amp(100 μg·mL-1)的LB培养基,放入37 ℃恒温摇床中以200 r·min-1培养12~14 h。按质粒小提试剂盒进行质粒抽提,用BamHⅠ、Hind Ⅲ内切酶对质粒酶切鉴定,将酶切鉴定正确的质粒送往上海杰李生物有限公司测序。

1.2.4 序列比对分析 通过DNAStar软件编辑测序结果,将剪辑完成的核苷酸片段放到NCBI-Blast网站上进行比对,得到的结果进行初步分析。

2 结 果

2.1 淋巴结中PCV3病原检测

对于广西某市屠宰猪181份淋巴结进行PCV3的病原检测, PCV3电泳结果表明,阳性条带在650 bp左右,与预期片段相一致,如图1。其中PCV3阳性共44份。

1~3.扩增的目的片段;N.阴性对照;M. DL2000 DNA相对分子质量标准1-3.PCR product of fragments of PCV3; N. The negative sample; M. DNA marker (DL2000)

图1 PCV3检测结果Fig.1 The detecting results of PCV3

2.2 PCV3全基因的扩增

用引物PCVG2F/R、PCVG4F/R对已经确认为PCV3阳性的样品进行全基因扩增,分别得到长度约为1 100和1 300 bp的片段,与预期片段相一致,见图2、3。

2.3 PCV3 全基因核苷酸序列的遗传演化分析

运用MEGA5.2软件将本研究的6株PCV3全基因核苷酸序列与国内外26株PCV3全基因序列共同建立遗传演化树,结果如图4。从图中可以看出,世界各地的PCV3毒株主要分为两大分支,其中有4株(GXDX2-14、GXDX2-2、GXDX1-82和GXDX2-15)位于其中一个分支,GXDX2-4和GXDX2-1位于另外一个分支。其中GXDX2-15毒株虽然和GXDX2-14、GXDX2-2、GXDX1-82这三株位于同一大的分支,但是与他们的距离比较远,说明它们的亲缘关系可能有点远,其独立在一个小分支上,反而和另一大分支上的GXDX2-4距离比较近。

1、2.扩增的目的片段;N. 阴性对照;M. DL2000 DNA相对分子质量标准1, 2. PCR product of fragments of PCV3 genome; N.The negative sample; M. DNA marker (DL2000)

图2 PCV3-G2的克隆Fig.2 Clones of the PCV3-G2

1~3.扩增的目的片段;N. 阴性对照;M. DL2000 DNA相对分子质量标准1-3. PCR product of fragments of PCV3 genome; N.The negative sample; M. DNA marker (DL2000)

图3 PCV3-G4的克隆Fig.3 Clones of the PCV3-G4

●.本研究所获的PCV3全序列;■.首条PCV3全序列●. Full sequence of the PCV3 obtained by this study; ■. The complete sequence of the first PCV3

图4 PCV3 全基因核苷酸序列的遗传演化树Fig.4 Genetic phylogenetic tree of PCV3 complete gene nucleotide sequence

2.4 国内外PCV3全基因序列进行同源性分析

运用MegAlign软件将本研究所获的6株PCV3全基因序列与国内外26株PCV3全基因序列进行同源性比较,结果发现本研究得到的6株PCV3毒株之间相似性最高,在98.6%~99.4%,其中GXDX2-14与GXDX2-15相似性为99.4%,相似性较低的是GXDX1-82与GXDX2-1、GXDX1-82与GXDX2-4。与国内外其他26条PCV3毒株比对结果发现,毒株间相似性最高为99.6%(美国株KX458235.1与GXDX2-14),相似性最低为98.6%(美国株KX778720与GXDX2-4)。国内外PCV3全基因的相似性在98.6%~99.9%,说明目前世界各国的PCV3全基因序列相似性都比较高,遗传关系比较近。

2.5 PCV3 ORF2基因核苷酸序列的遗传进化树分析

对本研究6株毒株和国内外26株PCV3毒株的ORF2进行遗传演化的分析,主要是依据ORF2的遗传演化情况来对PCV3进行分型。ORF2基因与全基因生成的进化树有所区别,但从图6中可以看出,还是主要分为两大分支。从图中可以发现GXDX2-1、GXDX2-4、GXDX2-14和GXDX2-15同处于一大分支上,其中GXDX2-14和GXDX2-15与美国株KX458235.1、韩国株KY996345.1同处于一个小的分支,GXDX2-1和GXDX2-4同处于一个小的分支,在同一分支的还有三株韩国株KY996343.1、KY996339.1、KY996341.1,说明它们具有更近的亲缘性。GXDX2-14和GXDX2-15在一个小分支上,与它们遗传距离较近的有美国株KX458235.1、韩国株KY996345.1。GXDX1-82、GXDX2-2和美国株KX778720、韩国株KY996337.1、中国湖北株KY354038处于同一大分支上,分为二亚型,亲缘性较近;而GXDX1-82和GXDX2-2又同处于一个小的分支下,亲缘性更为接近。

图5 国内外PCV3全基因核苷酸序列同源性分析Fig.5 Homology analysis of nucleotide sequence of PCV3 whole gene at worldwide

●.本研究所获的PCV3 ORF2 序列;■.首次发现的PCV3 ORF2序列●. ORF2 sequence of the PCV3 obtained by this study; ■. ORF2 sequence of the first PCV3

图6 PCV3 ORF2基因核苷酸序列的遗传进化树Fig.6 Genetic evolution of the nucleotide sequence of the PCV3 ORF2 gene

2.6 国内外PCV3 ORF2基因序列同源性比较

本研究中6株PCV3的ORF2基因序列与国内外26株PCV3的ORF2基因序列进行同源性比较(图7),结果发现这6株PCV3毒株的ORF2基因序列之间相似性最高可达99.8%(GXDX2-14与GXDX2-15),相似性最低为97.2%(GXDX1-82与GXDX2-1)。这6株的ORF2基因序列与国内外其他26株ORF2基因序列比较结果显示,相似性为97.5%~99.7%。而国内外所有ORF2基因序列相似性比较来看,相似性最高为100%(如中国福建株KY075987和中国河南株KY075988)。

2.7 PCVs ORF2基因的核苷酸序列遗传演化分析

将本实验室已有的13条PCV2 ORF2基因和7条PCV3 ORF2基因以及从NCBI下载的PCV1 ORF2基因做成遗传进化树,如图8。从图中可以看出,PCV1、PCV2和PCV3亲缘性都比较远。虽然PCV1和PCV2都在同大一分支上,但是在分支中距离相差很远。PCV3在另外一个大分支上,且明显与其他两个型距离更远。说明PCV1、PCV2和PCV3三个基因型遗传关系都比较远。

2.8 PCVs Cap蛋白的同源性比较

图9中1~4株为PCV1 Cap蛋白;5~17株为PCV2 Cap蛋白;18~23株为PCV3 Cap蛋白。PCV1 Cap蛋白与PCV2 Cap蛋白之间的相似性为67.2%~69.8%;PCV1 Cap蛋白与PCV3 Cap蛋白之间的相似性为26.1%~27.0%;PCV2 Cap蛋白与PCV3 Cap蛋白之间的相似性为26.5%~29.9%。据此推测PCV2与PCV3交叉保护性极低。

图7 国内外PCV3 ORF2基因序列相似性比较Fig.7 Comparison of PCV2 ORF2 gene homology at home and abroad

3 讨 论

近年来,世界各地生猪养殖业中关于PCV2感染的报道依然层出不穷,其可导致猪免疫功能下降,生长发育受阻,对养猪业造成了巨大额度经济损失[12]。而在2016年出现的猪圆环病毒新的血清型PCV3,更是给猪圆环病毒的防控增加了难度[13-14]。目前在健康屠宰猪群中关于PCV2的隐性感染已经有所报道,而关于PCV3在健康屠宰猪群中的感染还未有报道。本研究通过调查广西某市健康屠宰猪群PCV3的感染情况,并对PCV3进行序列分析、比对,以了解病毒的遗传演化和流行情况,对疾病防控以及疫苗研究等具有重要的指导意义。

本研究克隆得到的6株PCV3全基因组序列长度均为2 000 bp,6株毒株之间相似性为98.6%~99.4%。与国内外其他26条毒株比对发现,相似性为98.6%~99.6%。无论是广西内PCV3全基因组的相似性比对,还是国内外PCV3全基因组的相似性比对,PCV3毒株之间相似性都非常高。通过构建PCV3全基因的遗传进化树可以发现,PCV3主要分为两大分支,本试验扩增得到的PCV3全基因在两大分支中都有分布。PCV3 ORF2基因的相似性为97.2%~100%,相比较PCV2而言,PCV3的相似性更高,更为保守。从PCV3 ORF2基因的遗传进化树来看,GXDX2-1、GXDX2-4、GXDX2-14和GXDX2-15同位于一亚型,GXDX1-82与GXDX2-2同位于二亚型。并且在一亚型中,似乎还可以分为两个基因型,但由于PCV3为新发现病毒,GenBank上的基因序列还不够多,无法对其下结论。

此外本研究构建了PCV1、PCV2和PCV3全基因核苷酸序列进化树,从进化树中可以看出, PCV1和PCV2处于同一大分支,而PCV3处于另一分支。通过对PCVs的Cap蛋白进行同源性分析,发现PCV2 Cap蛋白与PCV3 Cap蛋白之间的相似性仅为26.5%~29.9%,推测PCV2与PCV3交叉保护性极低。目前市场有众多商品化的PCV2疫苗,对PCV2的防控起到一定的作用,但已有的PCV2疫苗无法对PCV3提供有效的免疫保护作用[15],所以对PCV3的防控任重而道远。

●.首次发现的PCV3序列●. Sequence of the first PCV3

图8 PCVs ORF2基因的核苷酸序列遗传演化Fig.8 Genetic evolution of the nucleotide sequence of the PCVs ORF2

图9 PCVs Cap蛋白的相似性比较Fig.9 Comparison of PCVs Cap homology

4 结 论

扩增了6株猪圆环病毒3型全基因组序列,遗传进化分析可分为两大型,彼此之间较为保守。通过对PCVs Cap蛋白的同源性进行比对分析,推测 PCV2与PCV3不具有交叉保护性。

参考文献(References):

[1] TISCHER I, GELDERBLOM H, VETTERMANN W, et al. A very small porcine virus with circular single-stranded DNA[J].Nature, 1982,295(5844):64-66.

[2] FRANZO G,TUCCIARONE C M,DOTTO G, et al. International trades, local spread and viral evolution: The case of porcine circovirus type 2 (PCV2) strains heterogeneity in Italy[J].InfectGenetEvol, 2015, 32:409-415.

[3] MOROZOV I, SIRINARUMITR T, SORDEN S D, et al. Detection of a novel strain of porcine circovirus in pigs with postweaning multisystemic wasting syndrome[J].JClinMicrobiol, 1998, 36(9):2535-2541.

[4] MAHÉ D, BLANCHARD P, TRUONG C, et al. Differential recognition of ORF2 protein from type 1 and type 2 porcine circoviruses and identification of immunorelevant epitopes[J].JGenVirol, 2000, 81:1815-1824.

[5] LIU Q, WILLSON P, ATTOH-POKU S, et al. Bacterial expression of an immunologically reactive PCV2 ORF2 fusion protein[J].ProteinExprPurif, 2001, 21(1):115-120.

[6] NAWAGITGUL P, MOROZOV I, BOLIN S R, et al. Open reading frame 2 of porcine circovirus type 2 encodes a major capsid protein[J].JGenVirol, 2000, 81(Pt 9):2281-2287.

[7] TISCHER I, RASCH R, TOCHTERMANN G. Characterization of papovavirus-and picornavirus-like particles in permanent pig kidney cell lines[J].ZentralblBakteriolOrigA, 1974, 226(2):153-167.

[8] HARMS P A, SORDEN S D, HALBUR P G, et al. Experimental reproduction of severe disease in CD/CD pigs concurrently infected with type 2 porcine circovirus and porcine reproductive and respiratory syndrome virus[J].VetPathol, 2001, 38(5):528-539.

[9] CHOI C, KIM J, KANG I J, et al. Concurrent outbreak of PMWS and PDNS in a herd of pigs in Korea[J].VetRec, 2002, 151(16):484-485.

[10] HINES R K, LUKERT P D. Porcine circovirus as a cause of congenital tremors in newborn pigs[C]//Proceedings of America Association Swine Prsctitioners. Chicago:America Association Swine Prsctitioners,1994:344-345.

[11] PALINSKI R, PIEYRO P, SHANG P C, et al. A novel porcine circovirus distantly related to known circoviruses is associated with porcine dermatitis and nephropathy syndrome and reproductive failure[J].JVirol, 2016, 91(1):e01879-16.

[12] GRAU-ROMA L, FRAILE L, SEGALÉS J. Recent advances in the epidemiology,diagnosis and control of diseases caused by porcine circovirus type 2[J].VetJ, 2011, 187(1):23-32.

[13] KU X,CHEN F,LI P,et al.Identification and genetic characterization of porcine circovirus type 3 in China[J].TransboundEmergDis, 2017, 64(3):703-708.

[14] CHEN G H, MAI K J, ZHOU L, et al. Detection and genome sequencing of porcine circovirus 3 in neonatal pigs with congenital tremors in South China[J].TransboundEmergDis, 2017, 64(6):1650-1654.

[15] 贺会利, 李 军, 潘 艳, 等. 广西首例猪圆环病毒3型的发现及其衣壳蛋白序列分析[J].南方农业学报, 2017, 48(8):1499-1503.

HE H L, LI J, PAN Y, et al. The first report of porcine circovirus type 3 infection in Guangxi and sequence analysis of its capsid protein[J].JournalofSouthernAgriculture, 2017, 48(8):1499-1503. (in Chinese)

猜你喜欢

进化树相似性毒株
一类上三角算子矩阵的相似性与酉相似性
法国发现新冠新变异毒株IHU
基于心理旋转的小学生物进化树教学实验报告
常见的进化树错误概念及其辨析*
浅析当代中西方绘画的相似性
猪繁殖与呼吸综合征病毒类NADC30毒株流行现状
福州2009—2014年甲型H1N1流感病毒株HA基因进化分析
艾草白粉病的病原菌鉴定
低渗透黏土中氯离子弥散作用离心模拟相似性
牛传染性鼻气管炎IBRV/JZ06-3基础毒株毒力返强试验