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纳米硅/聚丙烯酰胺水凝胶的制备及性能研究

2018-04-18曹玉娟亓文丽

弹性体 2018年2期
关键词:超纯水氢键敏感性

郑 艳,曹玉娟,亓文丽

(合肥工业大学 化学与化工学院,安徽 合肥 230009)

智能化的水凝胶响应于各种外部刺激,如温度、pH值等引起的各种性能变化,正在因其潜在的价值而备受关注,其中荧光凝胶最具有发展前景。纳米硅(F-SiNPs)是一种生物相容性好、无毒、尺寸可控制并且结构稳定的纳米材料,其具有荧光特性,在催化[1]、纳米技术[2-5]等方面应用越来越广泛。丙烯酰胺(AM)是常用的制备凝胶的单体,由于网络结构中存在可离子化的酸碱性基团,如酸性的磺酸、羧酸基团,碱性的伯仲叔胺基等,这些基团随着pH值的改变而发生质子化或去质子化,导致网络结构内静电斥力增减,从而引起凝胶的溶胀或去溶胀,在生物医学等[6]领域应用甚广。将F-SiNPs的荧光特性与聚丙烯酰胺(PAM)的pH敏感性结合在一起,制备具有荧光及pH敏感性的复合水凝胶,目前尚未见相关的文献报道。

本文采用两步法合成了F-SiNPs/PAM复合水凝胶,并对其结构与性能进行相应表征。

1 实验部分

1.1 原料

(3-氨丙基)三甲氧基硅烷(KH540):质量分数为97%,阿拉丁试剂公司;1,8-萘二甲酰亚胺:质量分数为98%,西亚试剂公司;AM:分析纯,质量分数为98%,国药集团化学试剂有限公司;过硫酸铵(APS):分析纯,国药集团化学试剂有限公司;N,N-亚甲基双丙烯酰胺(MBA):化学纯,质量分数为97%,国药集团化学试剂有限公司;N,N,N,N-四甲基乙二胺(TMEDA):生物试剂,国药集团化学试剂有限公司。

1.2 仪器及设备

Nicolet 6700型红外光谱仪、ESCALAB250Xi型光电子能谱:美国Thermo公司;Nano-ZS90型Zeta电位仪:英国Malvern公司;JEM-2100F型场发射透射电子显微镜:日本电子制造公司;UV-4820型紫外-可见分光光度计、F-4600FL型荧光分光光度计:日立公司。

1.3 复合水凝胶的制备

(1) 采用光催化法[7]制备F-SiNPs:在烧瓶中依次加入90 mL超纯水、2 g 1,8-萘二甲酰亚胺、10 mL KH540,快速搅拌10 min,然后用240 W、365 nm的紫外灯照射20 min,紫外灯与烧瓶之间间隔10 cm左右。光照结束后,反应液自然冷却到室温,高速离心,以除去小分子的1,8-萘二甲酰亚胺。然后把上清液装入分子截流量为1 000的透析袋,用超纯水透析,去除残留的KH540,透析后的溶液冷冻干燥即可得到F-SiNPs。

(2) 复合水凝胶制备:称取0.1 g的F-SiNPs,加10 mL超纯水,再依次加入1 g单体AM,0.03 g引发剂APS,0.03 g交联剂MBA,溶解完全,再将溶液转移至10 mL的烧杯密封静置,待凝胶成型后取出,得到F-SiNPs/PAM复合水凝胶。

(3)对比实验:在烧杯中量取10 mL超纯水,依次加入1 g单体AM、0.03 g引发剂APS、0.03 g交联剂MBA,完全溶解后加入10 μL TMEDA,密封静置,待凝胶成型后取出,得到纯的PAM水凝胶。

1.4 分析测试

粒度分析(DLS):将干燥好的F-SiNPs粉末溶于超纯水中,超声分散,用Nano-ZS90型Zeta电位仪进行粒径测试;场发射透射电子显微镜(FE-TEM)测试:F-SiNPs溶于无水乙醇中,取少量的液体滴加在超薄碳膜铜网上,在200 kV的电压下用FE-TEM进行表面形貌分析;傅里叶红外光谱分析(IR):复合水凝胶真空干燥后,与KBr研磨压片制样后进行分析;X射线光电子能谱(XPS):对干燥后的F-SiNPs粉末、复合水凝胶进行元素定性定量分析;紫外-荧光光谱分析(UV-PL):将F-SiNPs粉末溶于高纯水中,复合水凝胶切成薄片进行测试;场发射扫描电子显微镜(SEM):水凝胶在-50 ℃下冷冻干燥,然后喷金测试;平衡溶胀比(SR)的测定:配制不同pH值(pH值为1~14)溶液,按照式(1)计算SR。

SR=(Ws-Wd)/Wd

(1)

式中:Ws为在不同pH溶液中溶胀平衡后的质量;Wd为干凝胶的质量。

2 结果与讨论

2.1 F-SiNPs的结构特征

由图1可以看出,F-SiNPs的粒径小于3 nm,表明成功制备了小尺寸的纳米粒子,一般小于10 nm的粒子在生物活体细胞中更容易被清除,具有更小的毒性[8],故这种小粒径在生物应用方面更具有优势。图2存在清晰的点阵平面,表明F-SiNPs在水中分散良好。

粒径/nm图1 F-SiNPs的粒径分布

图2 F-SiNPs的场发射透射电子显微镜图

2.2 FT-IR分析

F-SiNPs红外谱图如图3所示。750 cm-1处是Si—N的伸缩振动峰,1 000 cm-1与3 350 cm-1处分别为Si—O键和N—H键的振动峰。

波数/cm-1图3 F-SiNPs、PAM和复合水凝胶的红外谱图

2.3 XPS分析

键能/eV(a) F-SiNPs的全峰图

键能/eV(b) Si元素的分峰图

键能/eV(c) C元素的分峰图

键能/eV(d) N元素的分峰图

键能/eV(e) O元素的分峰图

键能/eV(f) F-SiNPs/PAM的全峰图图4 F-SiNPs和复合水凝胶的XPS谱图

图4(a)中的F-SiNPs与图4(f)中的F-SiNPs/PAM复合水凝胶的XPS谱图几乎没有差异,表明PAM对F-SiNPs的结构并无影响,分散在水凝胶中的F-SiNPs成功地赋予了复合水凝胶荧光特性。

2.4 SEM分析

图5是不同F-SiNPs含量复合凝胶的电镜扫描图。从图5可以看出,复合水凝胶仍具有水凝胶的特有性质和三维多孔网状结构,而且随着F-SiNPs含量的增加,凝胶孔径在逐渐减小,说明F-SiNPs的存在使得交联密度增加,导致网孔越来越紧密。

(a) ρ(F-SiNPs)=10 mg/mL

(b) ρ(F-SiNPs)=15 mg/mL

(c) ρ(F-SiNPs)=20 mg/mL图5 不同F-SiNPs复合水凝胶的电镜扫描图

2.5 UV-PL分析

由图6可以看出,F-SiNPs的质量浓度为10 mg/mL时,在306 nm处出现紫外吸收峰,394 nm处有较强的发射峰,说明该纳米粒子存在较好的荧光特性。由图7可以看出,不同硅浓度的水凝胶在400 nm附近都有发射峰,并且随着F-SiNPs浓度的增加,荧光在不断地加强,表明F-SiNPs的加入赋予了凝胶独特的荧光特性。

波长/nm图6 F-SiNPs的紫外荧光谱图

波长/nm图7 不同F-SiNPs含量的复合水凝胶紫外荧光谱图

2.6 纳米复合水凝胶pH敏感性分析

由图8可以看出,pH在1~7之间的溶胀比接近一条平直的直线,变化比较小,但在pH=13时出现峰值区,溶胀比突然增大。随着碱性继续增大,溶胀比又迅速减小,甚至比在酸性条件下还低。根据Flory离子型凝胶溶胀比理论,在离子型水凝胶中,可离子化基团如酰胺基团水解后的羧酸电离度很小,所以凝胶内外浓度差就很小,这样溶胀的渗透压也随之减小,最终导致溶胀比很小。pH在1~7时,羧酸的电离度很小,同时由于酰胺键能形成分子内部氢键,氢键的存在加强了凝胶的交联点密度,抑制了凝胶的溶胀,因此溶胀比变化不大。在中强碱条件下,羧酸电离度增加,导致大分子链上固定电荷数量增加,提高了吸引可移动电子的能力,使得凝胶内外离子浓度差增大,内部渗透压远远大于外部;随着固定电荷的增加,凝胶内部静电斥力增强;酰胺键的水解和电离使得氢键被大量破坏。以上三点使得溶胀比急剧增加,达到峰值。随着NaOH浓度的继续增大,Na+浓度达到最大值,屏蔽了凝胶大分子间的静电作用力,从而溶胀比迅速下降。相比较而言,F-SiNPs/PAM复合水凝胶与纯PAM水凝胶溶胀比几乎无差别,表明F-SiNPs/PAM复合水凝胶具有pH敏感性,且F-SiNPs的加入对其pH敏感性并没有影响,仅仅赋予了凝胶荧光特性。

pH图8 pH对复合水凝胶平衡溶胀比的影响

2.7 纳米复合水凝胶溶胀速率分析

从图9(a)可以看出,当pH=2时,由于凝胶中酰胺键本身能形成分子内氢键,这些氢键具有较强的相互作用,使得体系中物理交联程度增加,凝胶难以舒张,故平衡溶胀比较小并且变化不大。但是在pH=13时突然增大,这是由于随着pH的增加,凝胶网络中的电荷密度不断增加,在强碱溶液中,静电排斥加强,使得凝胶之间物理交联密度下降,凝胶在溶液中充分溶胀,溶胀比达到最大;从图9(b)可以看出,F-SiNPs/PAM复合水凝胶在不同pH下的溶胀速率与纯的PAM几乎一致,这与pH敏感性分析结果相一致。

时间/h(a) 纯PAM水凝胶

时间/h(b) F-SiNPs/PAM复合水凝胶图9 水凝胶在不同pH时的溶胀速率

3 结 论

(1) 以AM为单体、MAB为交联剂、APS为引发剂,在F-SiNPs水溶液中采用原位聚合的方法,制备了 F-SiNPs/PAM复合水凝胶,F-SiNPs的成功加入,赋予了凝胶荧光特性。

(2) F-SiNPs的加入对凝胶的pH敏感性影响不大,表明F-SiNPs粒子并没有改变凝胶结构,仅仅赋予了凝胶荧光性能。

(3) F-SiNPs/PAM复合水凝胶在中强碱条件下,具有很强的pH敏感性与荧光性,有望在生物医药领域得到应用。

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