晚期内皮祖细胞对ESRD患者心血管并发症的诊断及预后价值探讨
2018-01-18孙林林苏森森
孙林林,李 琳,苏森森,陈 志
(吉林大学第一医院 肾病科,吉林 长春130021)
目前,慢性肾脏病,特别是终末期肾病(ESRD)已成为威胁人类健康不可忽视的疾病。近年来,CKD患者心血管疾病的发病率及病死率呈逐渐上升趋势,其中透析患者的心血管死亡风险是普通人群的10-20倍[1]。内皮祖细胞(Endothelialprogenitorcells,EPCs)被认为是起源于HSC或其成血管细胞亚群及MSC的异质性群体细胞,当机体处于应激或损伤状态下,能够分化为成熟血管内皮细胞并转移至外周血中,参与血管的形成[2,3]。Lorezen等[4]研究提示在CKD5期患者中有功能的内皮祖细胞数量减少,并与CVD事件的发生存在显著的联系。微血管损伤、缺血、缺氧与CKD的发生和发展密切相关,有证据表明循环内皮祖细胞(EPCs)有促进缺血组织内皮修复的功能[5]。许多研究认为CKD患者EPC数量及功能下降可能与血管系统中血管修复过程受损有关,而EPC生物学性质的这种改变可能导致CKD患者的高心血管事件负担,所以EPC监测可能为CKD患者心血管危险事件的发生提供诊断及预后参考。本文旨在对内皮祖细胞,尤其是晚期内皮祖细胞及相关影响因素在ERSD患者中心血管并发症的诊断及预后价值作一综述。
1 EPCs概述
1.1 基本特性
Asahara等[6]首先描述了来源于骨髓的细胞群有助于新血管形成,并把这些细胞称为内皮祖细胞(EPCs),并首次从人外周血中分离出CD34+的EPCs,并证实了EPCs可迁移到缺血组织并促进血管生成。EPCs作为一种以内皮标记物为特征的循环干细胞,目前对这些细胞的起源没有明确的定论,存在这样的差距可能是由于用于分离和鉴定EPC的技术的低特异性所致,这意味着EPCs培养体系的优化仍需要克服许多困难。根据它们在培养基中出现的阶段,EPCs可以被划分为两个亚群,早期内皮祖细胞(Early-outgrowth-endothelial-cells,EOEC)在培养后4-7天出现,显示单核细胞和内皮细胞表面特征,而晚期内皮祖细胞(Late-outgrowth-endothelial-cells,LOEC)在培养后14-21天出现,晚期EPCs缺乏CD1a和CD14的免疫表型谱,其与微血管内皮上的表达相同,具有比早期EPC更明显的内皮标志物的表达,具有显著的促血管生成的能力[7,8]。两类EPCs形态不同,EOEC形成纺锤样细胞簇,而LOEC呈鹅卵石样外观[9]。从功能角度来看,体外早期EPC显示其细胞结构的延伸,形成纺锤状形状,但没有确定管状结构的发展。相反,晚期EPC能够在胶质基质上形成管状毛细血管,且被证明更有能力产生一氧化氮(NO),从而实现内皮化[10]。目前,有三种视为EPC的细胞被研究最多,包括集落形成单位-Hill(CFU-Hill)细胞、循环血管生成细胞(CAC)和内皮集落形成细胞(ECFC)。CFU-Hill细胞和CAC通常被称为早期生长的EPC,相比之下,ECFC被称为晚期生长的EPC[11]。
1.2 动员、迁移及粘附
EPC动员的确切机制尚未完全阐明,目前仍在研究中。缺血、缺氧、组织损伤、应激等内源性因素和特定细胞因子(如GM-CSF、VEGF)、药物(如重组人红细胞生成素)、体育运动等外源性因素均能够刺激骨髓源性EPCs向外周血释放,促进损伤血管的内皮化[12]。迁移是EPC从骨髓释放并招募到损伤部位以增强新血管形成的过程。趋化因子如基质细胞衍生因子1(SDF-1),单核细胞趋化蛋白-1(MCP-1)和肝细胞生长因子(HGF)子等在迁移过程中起重要作用[13,14]。EPC从循环中募集并粘附到新血管生成部位的机制虽然不完全清楚,但似乎主要依赖于EPCs上表达的P选择素糖蛋白配体-1(PSGL-1)与表达的P-选择蛋白在血小板上的相互作用。血管损伤后血小板粘附到暴露的内皮下,在粘附后血小板活化并表达P-选择素,同时释放SDF-1,这两者都促进EPCs在血管损伤部位的粘附[15]。
2 CKD与EPCs
2.1 ESRD与EPCs
Chen等[16]研究发现与早期CKD患者(Ⅰ-Ⅲ期)相比,晚期CKD[Ⅳ-Ⅴ期或终末期肾病(ESRD)]患者EPC数量显著降低,血清VEGF和SDF-1a的水平升高(均为P<0.01),该研究认为血清VEGF水平与循环EPC数量增加密切相关。此外,ESRD患者的血清白蛋白水平显著低于非ESRD患者(3.79±0.48g/dl vs 4.03±0.51 g/dl,P=0.009)。多因素分析结果显示,ESRD和低血清白蛋白水平与循环EPCs数量减少独立相关(P<0.04)。研究[17,18]提示ESRD血液透析患者EPCs数量较健康者明显减少,但与血管损伤参数(如PWV增加或冠脉钙化程度)无关,即使冠状动脉钙化程度严重的患者,EPC功能(粘附,迁移)也没有显示出任何显著的损害,这可能提示EPC数量变化可能与ESRD疾病本身有关。有研究显示血透患者EPC数量减少可能与患者的TNF-α等炎症因子的活化有关[11]。但Herbrig等[19]发现长期血液透析患者EPCs总数增加,而迁移活性和粘附能力受损,这可能是与研究中有相当多的患者伴随有与EPC数量和/或功能降低相关的疾病有关。透析剂量是尿毒症毒素去除的指标,是终末期CRF患者预后的关键决定因素。Choi等[20]发现与接受较高剂量透析的患者相比,接受较低剂量透析的患者EPC分化为内皮细胞的能力显著受损(P=0.015),这一结果可能提示高剂量透析更大程度地清除尿毒症毒素,可以改善EPC的血管生成功能和CRF患者的预后[21]。Chan等[22]研究发现夜间血液透析患者(每晚6-8 h,每周5-6夜)比传统血液透析对象有更高的循环EPCs,这提示夜行性透析可能对EPCs生物学功能有积极影响。Pala等[23]发现血液中CD34+细胞的数量可以用作诊断为糖尿病肾病的患者中ESRD发展风险的标志物。以上研究均提示EPCs可能作为ESRD预后的风险标志物。
2.2 尿毒症毒素与EPCs
有研究证实血清尿毒症毒素在体外抑制EPCs分化和迁移。尿素诱导的ROS生成减少了内皮细胞集落形成单位的数量,加速了EPC衰老的发生,导致衰老相关的分泌表型(SASP),这进一步表明尿素本身可能引起EPC数量减少和EPC功能障碍,从而导致CRF患者心血管疾病的发生[24]。De Groot等[25]发现在终末期肾病患者及健康对照者中,尿毒症血清毒素显著(P<0.05)抑制体外EPC分化和功能活性。Jourde-Chiche等[26]提出透析患者中CD34+CD13+未成熟祖细胞的数量与尿毒症毒素IAA(3-吲哚乙酸)和血清β2M(β2-微球蛋白)水平成负相关,并且尿毒症毒素IAA体外诱导CD133+细胞凋亡。据报道,IAA参与了肾纤维化的进展,并对人肾近端肾小管细胞具有促氧化和促炎作用。由此可见,尿毒症毒素可能是导致EPCs数量与功能低下重要原因之一。
2.3 ESRD与晚期内皮祖细胞
尽管大量研究表明CKD患者外周血EPC数目明显减少,且伴有功能下降,这可能与病程中EPCs参与损伤内皮修复导致不断消耗有关,但是关于晚期内皮祖细胞数目及功能的研究较少。Zhao[27]等从ESRD患者中分离出有功能的生长晚期的EPC(LO-EPC)的表征,以研究其内皮修复的可能性。ESRD患者比健康对照组产生更多的LO-EPC集落,并具有更高的IL-16,IL-6,MIF,VEGF,催乳素和血清PLGF水平。患者的LO-EPC表现出正常的内皮细胞形态,且PLGF,MCP-1和IL-1β的分泌增加。由此可见,LO-EPC在血管生成中可能起到至关重要的作用。
3 EPCs与CKD并发的心血管疾病
加速的动脉粥样硬化和血管生成能力受损可能对慢性肾功能衰竭(CRF)患者心血管疾病风险的增加发挥关键作用。Lee等[28]评估了ESRD患者循环EPC水平和CV参数之间的关联,发现低水平的EPC与随访期间发生的CV事件显著相关,但该研究中有许多因素导致ESRD患者EPC水平降低,这使得难以解释特定心血管危险因素的影响。占雅萍[29]等研究发现随着CKD的进展,患者的EPC数量逐渐减少,经多因素校正后,EPC数量减少依然是血液透析患者CVD发生的独立危险因素。Lomonte等[30]研究发现循环CD34+EPC计数可能是一种新的评估透析患者心血管风险的生物标志物。以上研究可能提示EPCs在ESRD患者中预测心血管事件的重要地位。
4 影响EPC生物学特性的其他因素
有研究[31]表明E-选择蛋白在内皮祖细胞归巢修复过程中起基础作用。E-选择蛋白是一种关键的粘附分子,其在实验性缺血内皮祖细胞依赖性修复机制中起基础作用,并且可以在致炎过程中将白细胞锚定到内皮。该研究表明ESRD患者中循环E-选择蛋白水平低,其可能是阻碍祖细胞对致动脉粥样硬化依赖性修复机制的关键因素,进一步显示独立于其他风险因素的血清E-选择素可预测致死性和非致命性心血管事件。晚期糖基化终产物(advanced glycosylationend products,AGEs)的累积和AGE与其细胞受体(RAGE)相互作用的增强在慢性肾脏病的发展过程中起到潜在的作用。Hiroki等[32]通过逐步多元回顾分析得出皮肤自发荧光(代表了晚期糖基化终产物的聚集)与cEPCs数量减少有关,提示了AGEs的聚集也许是ESRD患者中cEPCs减少的决定因素。Schlieper等[18]经多变量分析显示低血清胎球蛋白A水平是EPC数量的阳性预测因子,而血细胞比容和网织红细胞是ac-LDL+/凝集素+EPC数量的阴性预测因子。Jourde-Chiche等[25]人的研究发现尽管已知营养不良和炎症与CKD中的血管病变相关,但HD患者中的EPCs数量与血清白蛋白、usCRP之间没有相关性。
5 总结和展望
目前的研究表明在有心血管疾病或存在心血管疾病高危因素的CKD患者群体中,EPCs不同程度的受到了损伤。由于心血管并发症是终末期肾病患者主要死亡原因之一,尽早发现有助于降低ERSD患者心血管事件的发生率及全因死亡率。多项研究指出EPCs水平可预测冠状动脉疾病(CAD)患者心血管疾病的死亡事件,但在ESRD背景下研究EPCs水平预测患者心血管未来事件的研究很少,目前国内外关于EPCs的相关研究也相对较少,且动物实验研究较多,尚处于初级阶段。EPC目前仍缺少特异性的表面抗原,对于EPC的确切定义仍需探讨。迄今为止,只有少数研究在ESRD的背景下研究了EPCs,EPCs在新血管形成过程中涉及许多细胞因子和调节因子的参与,未来仍需对其进一步研究,尤其是关于LOEC的相关生物学特性,希望未来对晚期内皮祖细胞的进一步研究能够为ERSD患者并发心血管疾病事件提供更精确的诊断及预后价值。
参考文献:
[1]Cheung AK,Samak MJ,Yan G,et al.Atherosclerotic cardiovascular disease risks in chronic hemodialysis patients[J].Kidney Int,2000,58(1):353-362.DOI:10.1046/j.1523-1755.2000.00173X.
[2]Jiang S,Walker L,Afentoulis M,et al.Transplanted human bone marrow contributes to vascular endothelium[J].PNAS,2004,101(48):16891.
[3]Moebius-Winkler S,Schuler G,Adams V.Endothelial Progenitor Cells and Exercise-Induced Redox Regulation[J].Antioxidants&Redox Signaling,2011,15:997.
[4]Lorenzen J,David S,Bahlmann FH,et al.Endothelial progenitor cells and cardiovascular events in patients with chronic kidney disease-a prospective follow-up study[J].PLoS One,2010,5(7):e11477.
[5]Li YF,Ren LN,Guo G ,et al.Endothelial progenitor cells in ischemic stroke:an exploration from hypothesis to therapy[J].Journal of hematology & oncology,2015,8:33.
[6]Asahara T,Murohara T,Sullivan A,et al.Isolation of putativeprogenitor endothelial cells for angiogenesis[J].Science,1997,275(80):964.
[7]Fadini GP,Losordo D,Dimmeler S.Critical reevaluation of endothelial progenitor cell phenotypes for therapeutic and diagnostic use[J].Circulation research,2012,110(4):624.
[8]Ge YZ,Wu R,Lu TZ,et al.Circulating endothelial progenitor cell:a promising biomarker in clinical oncology[J].Medical oncology (Northwood,London,England),2015,32(1):332.
[9]Chen Z,Herrmann SM,Zhu X,et al.Preserved function of late-outgrowth endothelial cells in medically treated hypertensive patients under well-controlled conditions[J].Hypertension (Dallas,Tex :1979),2014,64(4):808.
[10]Zaccone V,Flore R,Santoro L,et al.Focus on biological identity of endothelial progenitors cells[J].European review for medical and pharmacological sciences,2015,19(21):4047.
[11]Ozkok A,Aktas E,Yilmaz A,et al.Decrease in endothelial progenitor cells associated with inflammation,but not with endothelial dysfunction in chronic hemodialysis patients[J].Clinical Nephrology,2013,79(1):21.
[12]李桂林,杨宝钟.内皮祖细胞在血管新生及血管组织工程化过程中的生物学意义[J].基础医学与临床,2010,30(3):333.
[13]Mocharla P,Briand S,Giannotti G,Dorries C,Jakob P,Paneni F,et al.AngiomiR-126 expression and secretion from circulating CD34(+) and CD14(+) PBMCs:role for proangiogenic effects and alterations in type 2 diabetics[J].Blood,2013,121(1):226.
[14]Jodon de Villeroche V,Avouac J,Ponceau A,et al.Enhanced late-outgrowth circulating endothelial progenitor cell levels in rheumatoid arthritis and correlation with disease activity.Arthritis research & therapy,2010,12(1):R27.
[15]Massberg S,Konrad I,Schurzinger K,et al.Platelets secrete stromal cell-derived factor1alpha and recruit bone marrow-derived progenitor cells to arterial thrombi in vivo[J].J Exp Med,2006,203:1221.
[16]Chen YT,Cheng BC,Ko SF ,et al.Value and level of circulating with chronic kidney disease[J].Clinical and experimental nephrology,2013,17(1):83.
[17]Eizawa T,Murakami Y,Matsui K,et al.Circulating endothelial progenitor cells are reduced in hemodialysis patients[J].Current Medical Research and Opinion,2003,19(7):627.
[18]Schlieper G,Hristov M,Brandenburg V,et al.Predictors of low circulating endothelial progenitor cell numbers in haemodialysis patients[J].Nephrology Dialysis Transplantation,2008,23(8):2611.
[19]Herbrig K,Pistrosch F,Oelschlaegel U,et al.Increased total number but impaired migratory activity and adhesion of endothelial progenitor cells in patients on long-term hemodialysis[J].Am J Kidney Dis,2004,44(5):840.
[20]Choi JH,Kim KL,Huh W,et al.Decreased number and impaired angiogenic function of endothelial progenitor cells in patients with chronic renal failure[J].Arterioscler Thromb Vasc Biol,2004,24(7):1246.
[21]Miyata T,Ueda Y,Yoshida A et al.Clearance of pentosidine,an advanced glycation end product,by different modalities of renal replacement therapy[J].Kidney Int,1997,51:880.
[22]Chan CT,Li SH,Verma S.Nocturnal hemodialysis is associated with restoration of impaired endothelial progenitor cell biology in end-stage renal disease[J].Am J Physiol-Renal Physiol,2005,289(4):F679.
[23]Pala C,Altun I,Koker Y,et al.The effect of diabetes mellitus and end-stage renal disease on the number of CD34+ cells in the blood[J].Ann Hematol,2013,92(9):1189.
[24]D′Apolito M,Colia AL,Lasalvia M,et al.Urea-induced ROS accelerate senescence in endothelial progenitor cells[J].Atherosclerosis,2017,263:127.
[25]De Groot K,Bahlmann FH,Sowa J,et al.Uremia causes endothelial progenitor cell deficiency[J].Kidney Int,2004,66:641.
[26]Jourde-Chiche N,Dou L,Sabatier F,et al.Levels of circulating endothelial progenitor cells are related to uremic toxins and vascular injury in hemodialysis patients[J].J Thromb Haemost,2009,7(9):1576.
[27]Zhao J,Bolton EM,Randle L,et al.Functional characterization of late outgrowth endothelial progenitor cells in patients with end-stage renal failure[J].Transplant international:official journal of the European Society for Organ Transplantation,2014,27(5):437.
[28]Lee HJ,Kim W,Kim WS,et al.Circulating Endothelial Progenitor Cell Levels Predict Cardiovascular Events in End-Stage Renal Disease Patients on Maintenance Hemodialysis[J].Nephron,2015,130(3):151.
[29]占雅萍.内皮祖细胞与慢性肾脏病及其心血管并发症的关系[D].上海交通大学,2013.
[30]Lomonte C,Derosa C,Vernaglione L,et al.Serum parathyroid hormone and phosphate influence the levels of circulating CD34+cells in uremia[J].Journal of nephrology,2010,23(6):693.
[31]Malatino LS,Stancanelli B,Cataliotti A,Bellanuova I,Fatuzzo P,Rapisarda F,et al.Circulating E-selectin as a risk marker in patients with end-stage renal disease[J].J Intern Med,2007,262(4):479.
[32]Ueno H,Koyama H,Fukumoto S,et al.Advanced glycation end products,carotid atherosclerosis,and circulating endothelial progenitor cells in patients with end-stage renal disease[J].Metabolism:clinical and experimental,2011,60(4):453.