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多肉植物白牡丹Graptoveria ‘Titubans’组培快繁技术

2017-10-10管菊万劲陈嘉裔

江苏农业科学 2017年14期
关键词:多肉植物白牡丹组织培养

管菊 万劲 陈嘉裔

摘要:以白牡丹叶片及幼嫩茎段为外植体,建立无菌快繁体系,在此基础上筛选适合白牡丹组培快繁不同生长阶段的最适培养基。结果表明:最适宜的外植体材料为叶片,灭菌方法为75%乙醇处理15 s、0.1% HgCl2处理12 min;最佳的丛生芽诱导培养基为MS+2 mg/L 6-BA +0.2 mg/L NAA,芽诱导量可达10.8个/张;最适增殖培养基为 MS+0.2 mg/L NAA+2 mg/L 6-BA+1 mg/L KT,增殖倍数可达11.57;使用切根苗于干燥基质上进行生根炼苗可取得较好效果,炼苗成活率可达95%。

关键词:多肉植物;白牡丹;组织培养

中图分类号: S682.330.4+3文献标志码: A

文章编号:1002-1302(2017)14-0036-03

白牡丹(Graptoveria ‘Titubans)由景天科石莲花属多肉植物静夜(Echeveria derenbergii)与风车草属胧月(Graptopetalum paraguayense)杂交培育而来,是目前较为流行的多肉园艺品种之一。白牡丹茎叶肉质化,全株被白粉,互生叶排列成莲座形,如牡丹花绽放,具有很高的观赏价值[1]。白牡丹繁殖方式目前仅局限于扦插以及分株繁殖,白牡丹规模繁殖一直存在技术瓶颈。因此,对于白牡丹组培快繁技术进行研究具有一定意义,本研究将为白牡丹组培扩繁提供试验依据。

1材料与方法

1.1试验材料

试验材料为西南林业大学大棚内种植的多肉植物白牡丹。选取的外植体分别为白牡丹植株的叶片、茎段。

1.2试验方法

1.2.1培养条件本试验采用MS为基本培养基,附加 0.4% 1 500 g/cm2强度卡拉胶、30 g/L蔗糖,pH值调节至 5.8~6.0,121 ℃高压灭菌锅中灭菌15 min备用。选用日本三洋MLR-351H型培养箱进行组织培养,光照度设定为 3 000 lx,设定每天的光照时间为18 h,培养温度为25 ℃。

1.2.2材料与消毒选取长势良好的植株茎段与叶片为供试材料。叶片要求为从基部与茎段分离的完整叶片,叶片饱满挺拔、表面无伤痕;茎段要求为当年生幼嫩茎段,表面无伤痕、无虫害。剪取材料后,将材料首先置于洗衣粉中浸泡约10 min,在浸泡过程中,用软毛刷轻轻刷洗,将材料表面残留的污物清除;之后再将材料置于流水中冲洗,冲洗约3 h,冲洗完成后,将材料置于超净台内,用75%乙醇快速浸泡15 s;取出后立即置于无菌水中清洗,再用0.1% HgCl2消毒,设置4、8、12、16 min 4个时间梯度的消毒处理,之后用无菌水清洗 5~6次,总清洗时间不少于15 min;将清洗后的材料置于灭菌滤纸上吸去多余水分,接种入MS空白培养基中,每瓶接种1株,每个处理20瓶,3次重复。3 d后开始记录污染率、污染类型、死亡率,之后每天记录1次,15 d后结束记录。

1.2.3诱导培养以MS为基本培养基,分别附加不同含量的NAA、6-BA(表1),使用之前试验中所得的最适外植体材料以及最适消毒方法,将外植体接种于分别附加不同激素含量的培养基中,每种处理接20瓶,每瓶接种1株,重复3次,30 d后统计诱导情况。

1.2.4增殖培养根据初代培养中白牡丹无菌苗诱导培养的长势情况,确定白牡丹无菌苗的增殖培养方式。将初代培养中诱导得到的白牡丹丛生芽或愈伤组织接种于以MS为基本培养基,分别附加不同含量NAA、6-BA、KT的培养基中,进行增殖培养,采用L9(34)正交试验设计(表2、表3),每种处理接20瓶,每瓶接种3株,重复3次,30 d后统计增殖情况。

1.2.5生根培养与炼苗移栽采用1/2MS培养基进行生根培养,当植株长至4~5 cm时进行炼苗移栽。炼苗基质采用椰糠+珍珠岩以1 ∶[KG-*3]1体积比例混配,121 ℃高压蒸汽灭菌对基质进行消毒。由于景天科植物生根较为容易,故分别选取未经生根培养、经过生根培养且根长为4~5 cm的2种材料进行炼苗培养。先将瓶口打开,逐渐与外界环境接触,提高种苗的适应能力,5 d后将小苗取出,在自来水下用镊子、软毛刷等洗净附着在根部的培养基,种于含水量不同的基质中(表4),每个处理接种20株苗,3次重复,保持空气湿度在70%以上,30 d后统计成活率及根系情况。

2结果与分析

2.1不同植物器官及不同HgCl2消毒时间对外植体成活率的影响

表5显示,随着HgCl2消毒时间的增加,污染率大幅度降低,这说明使用HgCl2处理对材料表面所携带的污染物具有较好的灭杀效果;但是随着HgCl2处理时间的延长,植物成活率明显降低,说明过长时间的HgCl2接触会对白牡丹外植体造成较大伤害。

不同植物器官用HgCl2处理的效果也是不同的,使用茎段作为外植体时,大部分处理成活率要低于以叶片为外植体的处理组,这说明相比茎段,叶片更适宜作为外植体。同时,使用茎段作外植体时,3 d后的污染率仍然在不断上升,与 15 d 时相比,各处理的污染率上升幅度均大于以叶片为外植体的处理组,这一现象可能与茎段上存在灭菌死角、自身所带的内生菌较多有关,也进一步说明了相比茎段,叶片更适宜作为外植体。

综合白牡丹生长特性,由于白牡丹自身生長速度缓慢,难以取得如花茎这类内生菌相对较少的外植体材料,故较适的外植体材料为叶片,最佳消毒处理方法为采用75%乙醇处理15 s、0.1% HgCl2处理12 min。

2.2不同培养基下无菌苗的诱导培养

表6显示:使用白牡丹叶片为外植体,在合适培养基配方下叶片即可以直接诱导出大量丛生芽。在试验中发现,NAA与6-BA含量比值与丛生芽的发生有密切关联,6-BA含量范围为1~3 mg/L时,当6-BA/NAA值<10,则大部分叶片开始只生根不长芽,最终叶片死亡;当6-BA/NAA>10时,大部分叶片逐渐开始发生膨大,最终形成水渍状的愈伤组织;6-BA/NAA值=10时,丛生芽诱导效果最好。当6-BA含量为2 mg/L、NAA含量为0.2 mg/L时,白牡丹丛生芽诱导效果最好,在灭菌接种约8 d时,叶片首先出现一定膨大,部分区域发生开裂,可见内部嫩绿色膨大组织;之后15 d左右时,在近基部的叶片区域以及叶片开裂的区域内,萌发出大量丛生芽,丛生芽平均萌发量达10.8芽/张,诱导效果良好。endprint

2.3不同培养基下无菌苗的增殖培养

由表7可见,第3组处理2 mg/L 6-BA+2 mg/L KT的增殖倍数最高,但增殖长势最差,出现了严重的玻璃化现象,导致之后无法正常继代生长,故此配方不具备可行性;而在第1组不添加激素的培养基中,丛生芽长势最好,说明此培养基适合作为白牡丹的壮苗培养基使用,在出现丛生芽长势变差、需要壮苗生根时,可选用此配方。综合各组增殖倍数以及长势来看,第9组0.2 mg/L NAA+2 mg/L 6-BA +1 mg/L KT为最佳增殖培养基处理,在此激素组合下丛生芽有较高的增殖倍数,在长势上也较为良好,利于转接继代。

由表8可以看出,KT、6-BA在0.05水平下影响显著,说明这2种激素在丛生芽增殖时与增殖倍数有着较大相关性,而KT影响度相较于6-BA更大,说明KT对于白牡丹丛生芽的增殖倍数较6-BA更为敏感。NAA对丛生芽增殖倍数影响较小,结合丛生芽增殖长势,NAA含量可能与维持丛生芽正常形态有关,通过配合NAA的添加,使得丛生芽在高速增殖的同时仍然保持一定的正常长势,避免出现玻璃化现象。

2.4炼苗移栽

白牡丹的炼苗与常规组培苗炼苗区别较大。首先,组培苗所产生的根系在炼苗过程中难以存活,这表明在白牡丹快繁过程中不宜进行瓶内生根。此外,在白牡丹的炼苗过程中进行保湿处理并不利于其生长,而相对干燥的环境更加利于白牡丹新根的萌发及存活。组培苗切根后移栽于保持湿润的介质中,大部分植株在8 d左右时切口处即发生溃烂,导致植株死亡。由表9可见,带根的组培苗在保持湿润的介质中始终无明显变化,30 d内未见新根形成,且有部分组培苗出现溃烂死亡。带根的组培苗移栽于干燥介质中,虽然根系很快出现死亡,植株出现了萎蔫现象,但大部分植株在25 d左右后即出现了新根并存活下来,只有少部分植株死亡。将组培苗切根后移栽入保持干燥的介质中,相比以上几组植株成活情况好,植株移栽后在12 d时即见新根产生,炼苗成活率可达95%。

3结论与讨论

不同多肉植物,根据自身特性的不同,可以用不同的诱导方式以及增殖手法来进行组培扩繁。在实际操作中,需要视无菌苗生长情况进行科学选择,如大和锦、玉露、十二卷、寿等这些多肉,首先需要通过诱导形成绿色球状小体或愈伤组织,再来诱导产生丛生芽[2]。本试验中的白牡丹,在对叶片进行诱导时直接就可以诱导出丛生芽,通过对丛生芽的增殖培养,即可获得高效增殖扩繁体系,若对其进行愈伤诱导培养反而影响了其增殖进程,没有太大意义。

在增殖培养中,经过方差分析发现,白牡丹丛生芽增殖倍数与KT、6-BA显著相关,而NAA虽然与增殖倍数无显著相关,但与丛生芽形态关联密切,丛生芽在NAA与KT、6-BA组合下达到最优繁殖水平,这与宋晓涛等的研究结论[3-4]基本一致,但夏时云等在对龟甲龙的增殖培养中,使用NAA与KT的组合配方也取得良好繁殖[5]。同时,本研究中KT与增殖倍数的相关性较6-BA高,这说明有可能仅使用KT的效果也会较好,这还有待进行验证。

在对多肉植物的炼苗过程中,常规的保湿条件并不利于多肉的炼苗与移栽。在相对干燥的情况下,白牡丹植株不但没有出现萎蔫枯死的现象,反而有利于新根的萌发,这与多肉植物平时的养护种植有一定类似[6],在常规繁殖中,也是相对干燥的环境更有利于根系产生及植株生长,这可能是由多肉植物原本的生境以及自身的一些特性所決定的,具体是哪些因素造成的,也有待进一步研究。

参考文献:

[1]丁一凡,刘宇,刘娅妮,等. 银川地区景天科多肉花卉新品种形态特征与栽培管理初报[J]. 农业科学研究,2015,36(2):86-90.

[2]孙涛,金蕊,李德森. 康平寿的组织培养与快速繁殖[J]. 植物生理学通讯,2003,39(3):232-232.

[3]宋晓涛,沈萌,左志宇,等. 十二卷属植物西山寿的组织培养与快速繁殖[J]. 植物生理学通讯,2007,43(5):883-884.

[4]张昊鹏,宋晓涛,张耀,等. 白银寿的组织培养与快速繁殖[J]. 植物生理学通讯,2008,44(5):951-952.

[5]夏时云,孙涛,李德森. 龟甲龙的组织培养与快速繁殖[J]. 植物生理学通讯,2004,40(5):589-589.

[6]胡海波,郝永丽,高博,等. 多肉植物繁殖特性概述[J]. 农业工程技术,2016,36(1):64-67.endprint

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