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钠氢通道1在脑缺血再灌注损伤中的相关机制研究进展

2017-03-23综述刘红亮审校

重庆医学 2017年2期
关键词:星形神经细胞胶质

周 炬 综述,刘红亮 审校

(重庆市肿瘤研究所麻醉科 400030)

钠氢通道1在脑缺血再灌注损伤中的相关机制研究进展

周 炬 综述,刘红亮△审校

(重庆市肿瘤研究所麻醉科 400030)

脑缺血;再灌注;再灌注损伤;钠氢通道1

大脑发生缺血一段时间后再恢复血供,不仅不能改善脑缺血的症状,还会引起更加严重的脑功能障碍,该现象被称为脑缺血再灌注损伤。各种疾病(脑卒中)、创伤,以及手术(颈内动脉内膜切除术,动脉瘤修补术)都是脑缺血再灌注损伤的常见原因。脑缺血再灌注损伤的机制复杂,缺血和再灌注过程通过引起一系列细胞、分子及其调节过程的变化损伤脑功能,其中主要包括离子失衡、血脑屏障破坏、氧化应激、炎症反应、细胞凋亡等。

钠氢通道(Na+-H+Exchanger,NHE)家族是细胞膜上普遍存在并广泛表达的一种蛋白离子通道,对维持细胞内pH以及细胞体积稳定至关重要[1-2]。NHE-1离子通道是NHE家族的重要亚型,其在脑组织分布广泛。近年来研究发现,该离子通道的激活与脑缺血再灌注损伤有密切联系[2],通过阻断NHE-1离子通道可以改善大脑缺血再灌注损伤。本文将从离子失衡、细胞水肿、炎症反应、细胞凋亡4个方面描述NHE-1在脑缺血再灌注损伤中的作用,并探讨未来对脑缺血再灌注损伤的保护策略。

1 离子失衡

中枢神经系统作为高代谢器官对缺血缺氧异常敏感,短时间的缺血、缺氧即可引起脑组织细胞无氧代谢增加,从而导致细胞内酸中毒。而神经元细胞及胶质细胞对酸中毒极为敏感,因此,有效的细胞内pH调节机制对于脑保护至关重要,而NHE-1的主要生理功能即调节细胞内pH[3]。组织缺血、缺氧的情况下,细胞内H+浓度增加,细胞内出现酸中毒,为纠正细胞内酸中毒NHE-1被激活,Na+和H+以1∶1的形式反向交换,细胞内H+被排出细胞的同时将细胞外的Na+交换到细胞内。而NHE-1的过度激活导致细胞内Na+超载,进而激活钠钙离子通道(Na+-Ca2+Exchanger,NCX),引起细胞内Ca2+超载,造成细胞损伤。在其他细胞,如内皮细胞、心肌细胞及肺泡上皮细胞,都已经证实了NHE-1的阻滞剂能够保护由缺血再灌注中引起的钙离子介导的细胞损伤[4-5]。

Luo等[6]观察到在脑缺氧无糖损伤(OGD)3h,再灌注(REOX)1h后神经细胞内Na+浓度增加了7倍,而细胞内Ca2+浓度增加了1.5倍,再灌注21h后发生了(68±10)%的神经细胞死亡。在运用NHE-1特异性阻滞剂HOE642后,OGD引发的神经细胞死亡减少40%~50%,并且细胞内Na+和Ca2+的蓄积出现了明显的缓解。

脑缺血、缺氧后,细胞内酸中毒导致星形胶质细胞肿胀,而这种现象与星形胶质细胞上的NHE通道激活有关。Kintner等[7]认为,NHE-1是星形胶质细胞中管理细胞内pH的主要离子通道,缺血导致的NHE-1基因敲除后的小鼠星形胶质细胞离子失衡以及细胞肿胀减轻,而运用NHE-1特异性抑制剂HOE642的实验组也观察到同样的结果。缺血后的野生型小鼠离体皮质星形细胞的NHE-1活性提高,缺血2h后细胞内Na+增加了5倍,26%的细胞出现了水肿。作者认为对野生型小鼠使用HOE642同样可以减少缺血导致的星形胶质细胞离子失衡及细胞肿胀,具体机制可能与两者都能抑制NHE-1相关。

小胶质细胞是一种在神经受损等病理情况下被激活的细胞[8-10],它的激活与细胞吞噬、增殖、释放氧活性物质相关。NHE-1通过活化的小胶质细胞,参与维持细胞内的pH及离子平衡。Liu等[11]证明了NHE-1在小胶质细胞上的表达,又观察到缺血再灌注后小胶质细胞内Na+和Ca2+浓度增加。活化的小胶质细胞膜上NHE-1被过度激活,细胞内钠钙离子蓄积,细胞内离子失衡,活性物质释放,引起神经细胞的损失[12]。

脑细胞内的碱化被认为是由脑缺血、缺氧引发的,而持续性的细胞内碱化可能与脑缺血、缺氧后NHE-1过度被激活引起细胞内离子失衡相关。离子失衡是新生儿缺血、缺氧(HI)后的重要生理改变,且可能是HI导致脑损伤的直接原因[2]。最近的研究表明,在新生儿脑缺血、缺氧模型中运用NHE-1特异性抑制剂HOE642有神经保护作用,HOE642保存了海马体结构的完整性,并且减少了神经元的退行性变[6]。这些发现都证明了NHE-1过度激活介导的离子失衡可能是新生儿缺血、缺氧后脑损伤最重要的原因。

2 脑细胞水肿

血脑屏障是毛细血管与脑实质间的物理和代谢屏障,主要维持中枢神经功能的稳定。血脑屏障主要由毛细血管内皮细胞和细胞间的缝隙连接形成。脑细胞缺氧后会导致细胞间紧密连接的破坏,细胞外液被动进入脑组织,形成血管源性脑水肿,造成脑组织的第2次伤害[13]。Suzuki等[14]观察到NHE-1阻滞剂的运用可以减轻大脑缺血后的脑组织水肿,因此,作者推测脑组织的水肿可能与NHE-1相关。另一项研究也证实了HOE642可减轻脑缺血早期数小时的脑水肿和Na+浓度增加[15]。同时,NHE1也通过影响血脑屏障的通透性和紧密连接功能,加重功能紊乱。NHE1另一抑制剂sabiporide也可减小缺血/低糖缺氧引起的脑梗死面积,降低血脑屏障的通透性,从而起到脑保护的作用[16]。Lam等[17]也证明NHE-1和NHE-2存在于脑血管内皮细胞,当脑缺血、缺氧时,NHE-1被过度激活,NHE-2仅有部分激活,细胞内Na+浓度增加,早期细胞外液内流引起细胞水肿,而静脉注射NHE-1特异性抑制剂HOE642后可以减少缺血再灌注3h后的大鼠脑细胞的水肿程度和脑组织的缺血坏死面积。

钙离子对维持缝隙连接的完整性和正常的结构功能很重要,而缺血再灌注后血管内皮细胞的NHE-1过度激活,细胞内钙离子超载,高浓度钙离子可以损伤血脑屏障,增加血脑屏障通透性,引起脑细胞水肿。以上实验都说明,在缺血再灌注后脑实质的水肿与血脑屏障上毛细血管的NHE-1表达相关,且该通道的特异性阻滞剂可以减轻脑实质水肿。

3 炎症反应

大量实验已经证实,脑缺血后强烈的炎症反应是造成脑组织继发性损伤的因素之一,在此炎症反应过程中,多种因素相互作用,共同引起再灌注损伤[18]。许多炎症介质和炎症细胞参与了炎症反应,在再灌注过程中主要是白细胞、小胶质细胞、星形胶质细胞等炎症细胞释放的炎症介质产生细胞损害[19]。虽然炎症反应是一种自我修复机制,但是也与细胞死亡相关。

NHE-1广泛存在于神经胶质细胞,多项研究证实其与炎性损伤相关。小胶质细胞的激活是通过清除坏死细胞,释放神经营养因子的组织自我修复能力来实现的,但是激活的小胶质细胞也会通过释放炎症因子IL-1b、TNF-α、ROS、NO来加重脑损伤[20]。

小胶质细胞的增生高峰发生在局部脑缺血48至72h间,持续30d。缺血早期激活的小胶质细胞多在中央缺血区,再灌注期激活的小胶质细胞多位于半阴影区。激活的小胶质细胞和活化的星形神经细胞产生大量的促炎因子IL-1b、TNF-α、ROS、NO加重组织损伤[21]。脑缺血再灌注过程中促炎因子产生的分子细胞机制一直不清楚,最近有文献认为这种作用与神经胶质细胞维持氢离子稳定相关,这又与小胶质细胞表面的NHE-1 保持NADPH呼吸链阻止细胞内氢离子蓄积相关[12]。在脑缺血再灌注模型中,同侧缺血区域生理盐水组与HOE642组相比IL-1b和TNF-a的表达明显增加,在NHE-1基因敲除组的缺血区域观察到IL-1b的表达被抑制,基因敲除和HOE642两种方法目的均是抑制小胶质细胞上NHE-1的活性。通过NHE-1活性被抑制后,促炎因子的释放减少的现象,作者认为小胶质细胞在缺血再灌注损伤过程中的激活,以及炎症因子的释放与NHE-1相关。

海马星形胶质细胞通过包裹神经元的突触与神经元产生密切联系,它主要功能是在突触间的联系过程中保持离子和神经递质的平衡,并且通过钙的级联反应和产生活性介质(谷氨酸盐,ATP,腺苷)改变神经细胞的兴奋性,以及在缺氧情况下通过提供ATP给神经细胞,减少神经细胞的损伤[22-23]。在离体缺血再灌注模型中,NHE-1蛋白的表达对海马体星形胶质细胞活化起正调节作用,提高NHE-1活性将增加星形胶质细胞内Na+、Ca2+浓度,以及谷氨酸盐和细胞炎症因子的释放,缺血后海马星形胶质细胞释放促炎因子IL-1B,IL-6和TNF-α,再灌注5h后3种促炎因子释放大量增加,而运用HOE642后,这些炎症因子在再灌注5h后的释放量减少了26%[24]。缺血再灌注后海马细胞内钠钙离子浓度的增加是星形胶质细胞激活,以及一系列炎症介质释放等原因。Kim等[25]证明了钙信号通路在星形胶质细胞的炎症释放中有重要作用,因此,作者认为海马星形胶质细胞在缺血再灌注过程中炎症介质的释放与NHE-1过度激活引起的细胞内钙离子超载相关。

4 凋亡发生

迟发性的神经损伤多发生在缺血再灌注后几天到几周的时间内,这段时间也是进行神经保护的主要目标。研究证明,缺血再灌注后的脑损伤是由于离子失衡导致的细胞内Na+和Ca2+超载引起的细胞损伤,但是迟发型脑神经损伤除了与NHE-1激活导致离子失衡相关外,也与NHE-1激活引起细胞凋亡和线粒体功能紊乱相关[26]。

细胞凋亡受多种基因和蛋白的调控,B淋巴细胞瘤-2(B-celllymphoma-2,Bcl-2)是目前最受关注的凋亡基因家族,促凋亡和抗凋亡基因维持平衡保证线粒体稳定,阻止促凋亡蛋白从线粒体释放,抗凋亡基因表达增加抑制细胞色素C、凋亡诱导因子(AIF)从线粒体释放[27]。缺血再灌注后0.5h可以出现凋亡细胞,高峰在24~48h,最长可持续28d,凋亡与缺血时间呈正相关,多出现在梗死的边缘区域,且免疫组织化学的方法证明凋亡多发生在神经细胞内。Wang等[26]在实验中观察到野生型小鼠在缺血再灌注24h后线粒体细胞色素C、AIF(凋亡诱导因子)释放,以及核染色质的浓缩。同时发现caspase-3在缺血再灌注模型中呈现时间依赖性的激活,但在NHE-1基因敲除小鼠中caspase-3、细胞色素C、凋亡诱导因子AIF释放明显减少,且这种改变与运用HOE642效果相似。作者认为NHE-1在脑缺血再灌注的细胞凋亡过程中有重要作用,但是NHE-1与凋亡基因家族的关系有待进一步研究。

根据最近的一些研究发现,NHE-1与脑缺血再灌注损伤相关,生理条件下NHE-1对维持细胞内离子平衡有重要作用,但是过度激活NHE-1将会加重缺血后再灌注损伤。特异性的药物阻滞剂HOE642和NHE-1基因敲除的小鼠在脑缺血再灌注过程中又表现出了神经保护作用,因此未来阻断NHE-1可以作为脑缺血再灌注损伤治疗的主要目标。

[1]PangV,CounillonL,Lagadic-GossmannD,etal.OntheroleofthedifferenceinsurfacetensionsinvolvedintheallostericregulationofNHE-1inducedbylowtomildosmoticpressure,membranetensionandlipidasymmetry[J].CellBiochemBiophys,2012,63(1):47-57.

[2]OrlowskiJ,GrinsteinS.Na+/H+exchangers[J].ComprPhysiol,2011,1(4):2083-2100.

[3]CălinescuO,PaulinoC,KühlbrandtW,etal.Keepingitsimple,transportmechanismandpHregulationinNa+/H+exchangers[J].JBiolChem,2014,289(19):13168-13176.

[4]WakabayashiS,HisamitsuT,NakamuraTY.RegulationofthecardiacNa+/H+exchangerinhealthanddisease[J].JMolCellCardiol,2013,61(8):68-76.

[5]HuetschJ,ShimodaLA.Na+/H+exchangeandhypoxicpulmonaryhypertension[J].PulmCirc,2015,5(2):228-243.

[6]LuoJ,ChenH,KintnerDB,etal.DecreasedneuronaldeathinNa+/H+exchangerisoform1-nullmiceafterinvitroandinvivoischemia[J].JNeurosci,2005,25(49):11256-11268.

[7]KintnerDB,SuG,LenartB,etal.IncreasedtolerancetoOxygenandglucosedeprivationinastrocytesfromNa(+)/H(+)exchangerisoform1nullmice[J].AmJPhysiolCellPhysiol,2004,287(1):C12-21.

[8]ChenH,SongYS,ChanPH.InhibitionofNADPHoxidaseisneuroprotectiveafterischemia-reperfusion[J].JCerebBloodFlowMetab,2009,29(7):1262-1272.

[9]CuomoO,VinciguerraA,CerulloP,etal.Ionichomeostasisinbrainconditioning[J].FrontNeurosci,2015,9(8):277.

[10]NeumannH,KotterMR,FranklinRJ.Debrisclearancebymicroglia:anessentialLinkbetweendegenerationandregeneration[J].Brain,2009,132(Pt2):288-295.

[11]LiuY,KintnerDB,ChananaV,etal.ActivationofmicrogliadependsonNa+/H+exchange-mediatedH+homeostasis[J].JNeurosci,2010,30(45):15210-15220.

[12]ShiY,ChananaV,WattersJJ,etal.RoleofSodium/Hydrogenexchangerisoform1inmicroglialactivationandproinflammatoryresponsesinischemicbrains[J].JNeurochem,2011,119(1):124-135.

[13]AlluriH,Wiggins-DohlvikK,DavisML,etal.Blood-brainbarrierdysfunctionfollowingtraumaticbraininjury[J].MetabBrainDis,2015,30(5):1093-1104.

[14]SuzukiY,MatsumotoY,IkedaY,etal.SM-20220,aNa+/H+exchangerinhibitor:effectsonischemicbraindamagethroughedemaandneutrophilaccumulationinaratmiddlecerebralarteryocclusionmodel[J].BrainRes,2002,945(2):242-248.

[15]O′donnellME,ChenYJ,LamTI,etal.IntravenousHOE-642reducesbrainedemaandNauptakeintheratpermanentmiddlecerebralarteryocclusionmodelofstroke:evidenceforparticipationoftheblood-brainbarrierNa/Hexchanger[J].JCerebBloodFlowMetab,2013,33(2):225-234.

[16]ParkSL,LeeDH,YooSE,etal.TheeffectofNa+/H+exchanger-1inhibitionbysabiporideonblood-brainbarrierdysfunctionafterischemia/hypoxiainvivoandinvitro[J].BrainRes,2010,1366(12):189-196.

[17]LamTI,WisePM,O′donnellME.CerebralmicrovascularendothelialcellNa/Hexchange:evidenceforthepresenceofNHE1andNHE2isoformsandregulationbyargininevasopressin[J].AmJPhysiolCellPhysiol,2009,297(2):C278-289.

[18]ChenB,LiaoWQ,XuN,etal.Adiponectinprotectsagainstcerebralischemia-reperfusioninjurythroughanti-inflammatoryaction[J].BrainRes,2009,1273(6):129-137.

[19]王光胜.脑缺血/再灌注损伤机制研究进展[J].医学综述,2011,17(24):3753-3756.

[20]JinR,YangG,LiG.Inflammatorymechanismsinischemicstroke:roleofinflammatorycells[J].JLeukocBiol,2010,87(5):779-789.

[21]YenariMA,KauppinenTM,SwansonRA.Microglialactivationinstroke:therapeutictargets[J].Neurotherapeutics,2010,7(4):378-391.

[22]SofroniewMV,VintersHV.Astrocytes:biologyandpathology[J].ActaNeuropathol,2010,119(1):7-35.

[23]VermaV,BaliA,SinghN,etal.ImplicationsofSodiumHydrogenexchangersinvariousbraindiseases[J].JBasicClinPhysiolPharmacol,2015,26(5):417-426.

[24]CengizP,KintnerDB,ChananaV,etal.SustainedNa+/H+exchangeractivationpromotesgliotransmitterreleasefromreactivehippocampalastrocytesfollowingoxygen-glucosedeprivation[J].PLoSOne,2014,9(1):e84294.

[25]KimDY,HongGU,RoJY.Signalpathwaysinastrocytesactivatedbycross-talkbetweenofastrocytesandmastcellsthroughCD40-CD40L[J].JNeuroinflammation,2011,8(25):2637-2647.

[26]WangY,LuoJ,ChenX,etal.GeneinactivationofNa+/H+exchangerisoform1attenuatesapoptosisandmitochondrialdamagefollowingtransientfocalcerebralischemia[J].EurJNeurosci,2008,28(1):51-61.

[27]任俊伟,杨琴.白藜芦醇对脑缺血/再灌注氧化应激损伤保护机制的研究进展[J].中国药理学通报,2011,27(4):448-451.

周炬(1983-),住院医师,本科,主要从事围术期脑保护方面研究。△

E-mail:liuh175@163.com。

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10.3969/j.issn.1671-8348.2017.02.044

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