APP下载

血管紧张素Ⅱ在肾间质纤维化中的作用机制

2017-03-18程欢陈星华丁国华

中国医药导报 2017年2期
关键词:胞外基质肾脏病纤维细胞

程欢++陈星华+丁国华

[摘要] 慢性肾脏病进展是多因素的,与肾小球损伤相比,以细胞外基质(ECM)积聚为特征的肾脏间质纤维化更能够反映肾脏疾病的进展。肾素-血管紧张素系统(RAS)的激活是肾间质纤维化的一个关键因素,其中,血管紧张素Ⅱ(AngⅡ)是其主要的促纤维化因子。AngⅡ介导肾间质纤维化依赖于多种机制。通过了解AngⅡ在肾间质纤维化中的作用机制,将为慢性肾脏病提供新的治疗策略。

[关键词] 血管紧张素Ⅱ;肾间质纤维化;转化生长因子β1

[中图分类号] R692.33 [文献标识码] A [文章编号] 1673-7210(2017)01(b)-0029-04

The mechanism of action for AngiotensinⅡ in renal interstitial fibrosis

CHENG Huan CHEN Xinghua DING Guohua▲

Department of Nephrology, Renmin Hospital of Wuhan University, Hubei Province, Wuhan 430060, China

[Abstract] The cause of progression for chronic kidney disease (CKD) is multifactorial. Renal interstitial fibrosis characterized by the accumulation of extracellular matrix (ECM), is a better reveal of progression for CKD, compared to glomeruli damage. The activation of the renin-angiotensin system (RAS) is a key factor for renal interstitial fibrosis. Angiotensin Ⅱ (AngⅡ), the main effector of RAS, is a critical promoter of fibrogenesis, the mechanisms underlying its profibrogenic effects are complex. A better understanding of the effects of AngⅡ for renal interstitial fibrosis, will contribute to developing better strategies for the CKD.

[Key words] Angiotensin Ⅱ; Renal interstitial fibrosis; Transforming growth factor-β1

肾素-血管紧张素系统(RAS)慢性激活参与了肾间质纤维化发生,加剧了慢性肾脏病的进展[1]。肾间质纤维化是慢性肾脏病的特征,主要表现为肾小管的缺失和萎缩,由肌成纤维细胞产生的细胞外基质(ECM)的积聚。RAS阻滞剂也能够通过多种机制发挥抗肾脏纖维化效应。AngⅡ作为RAS的核心成分,是肾脏纤维化发生的关键环节。AngⅡ不仅能够影响肾脏血流动力学,而且通过多种机制调节肾脏细胞生长、炎症和细胞因子产生、细胞外基质积聚与降解,从而加速肾间质纤维化[2]。本文就此做一综述。

1 AngⅡ与AngⅡ受体(ATR)

ATR包括血管紧张素Ⅱ1型受体(AT1R)、血管紧张素Ⅱ2型受体(AT2R)。AngⅡ介导纤维化的功能主要与AT1R有关,AngⅡ诱导的ATIR激活,介导了转化生长因子β1(TGF-β1)、结缔组织生长因子(CTGF)和缺氧诱导因子(HIF-1α)等促纤维化通路。AT2R在胚胎时期的各组织中表达丰富,出生后大多数组织器官AT2R减少或消失。而AT2R发挥的生物学活性多与AT1R相拮抗,且通常后者起主导作用[3]。大量体内外研究证实,ATR拮抗剂能够抑制肾间质纤维化进展[4-5]。也有研究发现,在单侧输尿管梗阻(UUO)模型中,巨噬细胞表面的AT1R通过增强巨噬细胞吞噬能力,或者通过抑制白细胞介素-1(IL-1)活性发挥保护肾脏纤维化作用。给予ATR拮抗剂后,肾间质浸润巨噬细胞减少、巨噬细胞吞噬能力减弱。巨噬细胞表面AT1R缺失后,肾间质纤维化加重[6-7]。因此,AT1R在巨噬细胞表面的抗肾纤维化作用,有望被运用于克服ATR受体拮抗剂类药物副作用和对造血细胞损害的缺陷。

2 AngⅡ与TGF-β1

TGF-β1是一种具有多生物学活性的细胞因子,在调节细胞外基质代谢、参与间质纤维化等方面发挥重要作用。AngⅡ和TGF-β1之间的交互作用多重复杂,是肾间质纤维化的重要环节。AngⅡ可以通过直接调控特异性转录序列激活TGF-β1基因转录[8],还可以间接通过单核细胞趋化因子蛋白1(MCP1)表达增强,或者通过p38丝裂原活化蛋白激酶(p38MAPK)信号通路激活血小板反应蛋白1(TSP-1)[9],最终导致TGF-β1表达增多。TGF-β1信号通路的激活是细胞外基质沉积的主要通路。在糖尿病肾病大鼠模型中抗TGF-β1受体与血管经张素转化酶抑制剂(ACEI)联合运用能够缓解间质炎症和Ⅱ型胶原蛋白(COL-Ⅱ)积聚。在肾间质纤维化中,肾小管上皮间质转化(EMT)是肌成纤维细胞来源之一,后者是产生细胞外基质的主要来源[10]。Fan等[11]发现,以TGF-β1刺激大鼠肾小管上皮细胞(NRK52E)后,表现出了细胞肥大、微绒毛消失、细胞伸长等形态学改变,并伴随上皮细胞标志物E-钙黏蛋白(E-cadherin)减少、肌成纤维细胞激活的标志物α平滑肌肌动蛋白(α-SMA)增多等表型改变。TGF-β1是EMT的重要介质,AngⅡ介导EMT也是通过这一介质。TGF-β1/smad信号通路发挥促纤维化作用主要是通过调节下游介质smad2和smad3。smad7在体内外实验中被证实是一种TGF-β的负性调节蛋白。转染或者过表达smad7导致CTGF、纤连蛋白、Ⅰ型胶原蛋白(COL-Ⅰ)表达下调,从而抑制肾纤维化[12]。Yang等[13]发现,AngⅡ刺激NRK52E后,可以通过AT1R激活smad2/3,并且诱导EMT。TGF-β1也能够通过激活smad2/3,诱导smad7的表达,后者通过负反馈调节机制抑制smad2/3磷酸化,从而抑制TGF-β1介导的纤维化。因此,下调smad7能够激活smad2/3,并促进肾脏纤维化,即smad2/3和smad7之间的负平衡是肾纤维化的关键机制[14]。而Yang等[13]研究发现,smad7降解主要是通过AT1R-Smurf2依赖的泛素降解机制,通过AT1R阻滞剂或者下调Smurf2减少smad7的降解,能够抑制smad2/3的激活和EMT。在AngⅡ介导的肾纤维化中,除了TGF-β1依赖的smad信号通路,AngⅡ介导血管纤维化可以通过ERK/p38MAPK-smad交互作用,而不依赖于TGF-β1。AngⅡ刺激人肾小管上皮细胞(HK-2)后,独立于TGF-β1的smad信号通路可以迅速被激活,而TGF-β1介导的smad转录发生于24 h之后。因此,在AngⅡ诱导的肾间质纤维化,阻断smad信号通路可以成为抗纤维化的重要靶点。

3 AngⅡ与结缔组织生长因子(CTGF)

CTGF是一种富含半胱氨酸的多肽,属于CCN家族成员之一,具有多种生物活性,包括调节细胞凋亡和增殖、趋化细胞、促纤维化等。在生理情况下,机体组织细胞可有少量CTGF基础分泌,但是肾小球硬化、糖尿病肾病等肾脏疾病中表达升高,并且它的表达水平与肾纤维化的进展和严重程度呈正相关。在AngⅡ灌注的大鼠肾小球、小管、肾动脉,CTGF表达量升高,并伴随纤连蛋白的沉积。予AT1R拮抗剂处理后,CTGF、纤连蛋白表达减少[15]。在培养的肾脏细胞(系膜、小管上皮细胞),AngⅡ通过ATIR增加CTGF mRNA和蛋白表达。CTGF反义寡核苷酸(CTGF-AS)能够抑制AngⅡ刺激后HK-2向肌成纤维细胞的转分化,从而减轻诱导的肾间质纤维化[16]。TGF-β1因其具有抑制细胞生长、免疫抑制等生物学活性,单纯被抑制后,不可避免地带来免疫失调等副作用。CTGF是TGF-β1下游介导纤维化的蛋白,成为新的抗纤维化治疗靶点。在TGF-β1基因缺陷的肾小管上皮细胞,AngⅡ也能够诱导CTGF、COL-Ⅰ的快速激活。在培养的大鼠系膜细胞,IL-1β通过下调CTGF抑制AngⅡ诱导的Ⅳ型胶原蛋白(COL-Ⅳ)的生成从而改善肾间质纤维化[17]。因此,不仅作为TGF-β1下游信号,CTGF的上述作用为在临床上找到安全、有效延缓肾脏纤维化途径提供新的思路。

4 AngⅡ与表皮生长因子受体(ECGR)

EGFR是ErbB家族成员的酪氨酸激酶受体。EGFR具有N端细胞外配体结合区域,一个保守的α螺旋跨膜区域,和一个C端细胞质区域,拥有酪氨酸激酶活性和磷酸化位点。磷酸化后,EGFR能够刺激细胞生长,抑制细胞凋亡,调节血管生成。在急性肾脏损伤后EGFR是小管上皮细胞再生修复的重要保护因子,然而EGFR持续激活在梗阻性肾病等慢性肾脏病中是有危害的。EGFR在AngⅡ诱导的纤维化中扮演重要角色。Grimminger等[18]发现,AngⅡ本身不能刺激细胞有丝分裂,但是可以放大EGR介导的促增殖效应。Chen等[19]发现,肝素结合性表皮生长因子(HB-EGF)通过EGFR自身磷酸化生成,并伴随TGF-β信号通路的激活,从而介导AngⅡ诱导的肾小管上皮细胞肥大。Lautrette等[20]研究发现,表达EGFR阴性的转基因小鼠,AngⅡ灌注2个月后,不能激活EGFR或者下游的激酶。AngⅡ灌注基因突变小鼠与野生型小鼠相比,表现出明显少量的蛋白尿,但是测得的血压却无差异[20]。另外发现,在小鼠系膜细胞,AT1R激活能够诱导EGFR活化,及下游PI3K和MAPK信号通路激活,从而调控TGF-β mRNA水平[20]。Qian等[21]研究发现,AngⅡ通过c-scr反式激活EGFR,从而进一步激活细胞外调节蛋白激酶(ERK)和Akt信号通路和诱导TGF-β/smad通路和纤维化基因的表达。在Ang2刺激的体内外实验中,EGFR阻滞剂能够显著抑制ERK和Akt活性。因此,以EGFR为靶点的药理途径有望成为治疗慢性肾脏病新的方式。

5 AngⅡ與低氧诱导因子-1α(HIF-1α)

HIF-1α是一种低氧条件下被激活的转录因子。脯氨酸羟化酶(PHD)是HIF降解反应的限速酶,可羟基化HIF的脯氨酸残基。在常氧条件下,HIF-1α在PHD作用下羟基化,迅速降解;在低氧条件下,氧敏感的PHD催化活性被抑制,HIF-1α表达增多。在许多急性肾损伤模型中HIF-1α的表达上调具有肾脏保护作用,然而在慢性肾脏病中,在低氧条件下,HIF-1α能够转录激活一系列低氧相关的基因,使细胞和组织适应低氧应激环境。HIF-1α长期激活对肾脏是有害的。体内外实验证实,HIF-1α基因的激活在AngⅡ介导的肾间质纤维化中发挥关键作用。在肾髓间质细胞,AngⅡ通过刺激H2O2生成,抑制了PHD2活性,激活HIF-1α,介导纤维化的发生[22]。Sánchez-López等[23]研究发现,AngⅡ诱导的体内外肾脏损伤实验中,AngⅡ通过HIF-1α的激活诱导内皮细胞生长因子(VEGF)表达上调,从而参与慢性肾脏疾病进展,活性氧(ROS)作为第二信号介导HIF-α生成。AngⅡ灌注导致肾脏HIF-1α激活和氧化应激,并且这种效应能够被抗氧化剂阻断。AngⅡ激活参与了糖尿病肾病发病机制,AT1R能够延缓疾病进展。在链脲菌素诱导的糖尿病肾病大鼠模型,AT1R受体拮抗剂缬沙坦通过抑制金属蛋白酶组织抑制剂(TIMP)、内皮素1(ET1)抑制HIF-1α活性,从而减轻肾脏的损伤[24]。基质金属蛋白酶(MMP)是降解细胞外基质的主要酶,ET1参与肾间质纤维化主要与间质成纤维细胞增殖有关。在体外肾脏髓间质细胞,AngⅡ刺激后HIF-1α的表达显著升高,并且伴随着显著的COL-Ⅰ/Ⅱ、促纤维化因子TIMP-1的上调,HIF-α siRNA也能够阻断AngⅡ诱导的增殖细胞核抗原(PCNA)和波形蛋白的上调,前者是细胞增殖的标志,后者是转分化EMT的标志。基因沉默HIF-1α能够抑制AngⅡ诱导的促纤维化因子TIMP-1、COL-Ⅰ/Ⅱ、PNAC、波形蛋白等的转录[22]。HIF-1α也能够通过AngⅡ介导的血流动力学改变参与肾脏纤维化。AngⅡ通过毛细血管内皮细胞结构和功能的改变,导致管周毛细血管网减少,肾间质缺氧,诱导了HIF-1α的生成,促进肾间质纤维化。

6 AngⅡ与MicroRNA( miRNA)

miRNA是一类由21~25个核苷酸组成非编码单链小分子RNA,其通过碱基配对与mRNA分子的3'非翻译区相结合,来降解mRNA或者抑制靶基因翻译,从而在转录后水平调控基因表达,参与了细胞生长、增殖、发育、肿瘤发生等多种疾病的发生发展过程。最近许多学者提出肾小管间质纤维化与这些miRNAs的丢失或者激活相关。miR-200家族包括miR-200a、miR-200b、miR-200c、miR-141和miR-429。在Xiong等[25]构建的UUO模型中观察到,miRNA-200家族的下调,锌指E-盒结合同源异形盒-1(ZEB1)和锌指E-盒结合同源异形盒-1(ZEB2)作为E钙黏蛋白转录抑制子的抑制作用被解除,启动了EMT及纤维化过程,从而为慢性肾脏病提供了新的治疗靶点。在用MWF大鼠构建的终末期肾脏病模型,ACEI能够通过调控miR-324-3p/Prep通路发挥保护肾间质纤维化的作用。脯氨酰肽内切酶(Prep)是miR-324-3p下游的目的蛋白,参与到Ang-Ⅰ/AngⅡ到Ang-(1~7)的代谢转化[26]。转录因子Ets-1在纤维化的肾脏中,表达上调。在AngⅡ刺激的大鼠肾成纤维细胞(NRK-49F),miRNA221表达下调,予miRNA221抑制剂处理后,Ets-1表达增多,NRK-49F活化[27]。Pan等[28]研究发现,AngⅡ刺激NRK-52E后,miRNA29b表达减少,转染miRNA29b抑制剂后TGF-β1、α-SMA、COL-Ⅰ表达增多,说明miRNA29b参与AngⅡ介导的EMT。

最终AngⅡ通过ATIR调控肾小管上皮细胞、周细胞、间质成纤维细胞、循环中骨髓来源的成纤维细胞的激活并转分化成为肌成纤维细胞[29],后者产生ECM,在小管间质积聚,纤维化发生。现在针对于AngⅡ作用的ACEI、血管紧张素Ⅱ受体拮抗剂(ARB)已用于临床慢性肾脏病的治疗,然而却不能完全阻断肾间质纤维化进展。因此,smad信号通路、CTGF、miRNAs、EGFR、PHD/HIF-1α等有望成为拮抗AngⅡ的新的藥物治疗靶点,从而运用于慢性肾脏病的防治。

[参考文献]

[1] Eddy AA,Neilson EG. Chronic kidney disease progression [J]. J Am Soc Nephrol,2006,17(11):2964-2966.

[2] Border WA,Noble NA. Interactions of transforming growth factor-beta and angiotensin Ⅱ in renal fibrosis [J]. Hypertension,1998,31(1 Pt 2):181-188.

[3] Suzuki K,Han GD,Miyauchi N,et al. Angiotensin Ⅱ type 1 and type 2 receptors play opposite roles in regulating the barrier function of kidney glomerular capillary wall [J]. Am J Pathol,2007,170(6):1841-1853.

[4] Hosojima M,Sato H,Yamamoto K,et al. Regulation of megalin expression in cultured proximal tubule cells by angiotensin Ⅱ type 1A receptor- and insulin-mediated signaling cross talk [J]. Endocrinology,2009,150(2):871-878.

[5] Andersen S. Angiotensin Ⅱ receptor blockade in diabetic nephropathy [J]. Dan Med Bull,2004,51(3):274-294.

[6] Nishida M,Fujinaka H,Matsusaka T,et al. Absence of angiotensin Ⅱ type 1 receptor in bone marrow-derived cells is detrimental in the evolution of renal fibrosis [J]. J Clin Invest,2002,110(12):1859-1868.

[7] Zhang JD,Patel MB,Griffiths R,et al. Type 1 angiotensin receptors on macrophages ameliorate IL-1 receptor-mediated kidney fibrosis [J]. J Clin Invest,2014,124(5):2198-2203.

[8] Weigert C,Brodbeck K,Klopfer K,et al. Angiotensin Ⅱ induces human TGF-beta 1 promoter activation:similarity to hyperglycaemia [J]. Diabetologia,2002,45(6):890-898.

[9] Naito T,Masaki T,Nikolic-Paterson DJ,et al. Angiotensin Ⅱ induces thrombospondin-1 production in human mesangial cells via p38 MAPK and JNK:a mechanism for activation of latent TGF-beta1 [J]. Am J Physiol Renal Physiol,2004,286(2):F278-287.

[10] Iwano M,Plieth D,Danoff TM,et al. Evidence that fibroblasts derive from epithelium during tissue fibrosis [J]. J Clin Invest,2002,110(3):341-350.

[11] Fan JM,Ng YY,Hill PA,et al. Transforming growth factor-beta regulates tubular epithelial-myofibroblast transdifferentiation in vitro [J]. Kidney Int,1999,56(4):1455-1467.

[12] Rodríguez-Vita J,Sánchez-López E,Esteban V,et al. Angiotensin Ⅱ activates the Smad pathway in vascular smooth muscle cells by a transforming growth factor-beta-independent mechanism [J]. Circulation,2005,111(19):2509-2517.

[13] Yang F,Huang XR,Chung AC,et al. Essential role for Smad3 in angiotensin Ⅱ-induced tubular epithelial-mesenchymal transition [J]. J Pathol,2010,221(4):390-401.

[14] Carvajal G,Rodríguez-Vita J,Rodrigues-Díez R,et al. Angiotensin Ⅱ activates the Smad pathway during epithelial mesenchymal transdifferentiation [J]. Kidney Int,2008,74(5):585-595.

[15] Liu BC,Sun J,Chen Q,et al. Role of connective tissue growth factor in mediating hypertrophy of human proximal tubular cells induced by angiotensin Ⅱ [J]. Am J Nephrol, 2003,23(6):429-437.

[16] Chen L,Liu BC,Zhang XL,et al. Influence of connective tissue growth factor antisense oligonucleotide on angiotensin Ⅱ-induced epithelial mesenchymal transition in HK2 cells [J]. Acta Pharmacol Sin,2006,27(8):1029-1036.

[17] Sánchez-López E,Rodriguez-Vita J,Cartier C,et al. Inhibitory effect of interleukin-1beta on angiotensin Ⅱ-induced connective tissue growth factor and type IV collagen production in cultured mesangial cells [J]. Am J Physiol Renal Physiol,2008,294(1):F149-160.

[18] Grimminger F,Schermuly RT,Ghofrani HA. Targeting non-malignant disorders with tyrosine kinase inhibitors [J]. Nat Rev Drug Discov,2010,9(12):956-970.

[19] Chen J,Chen JK,Neilson EG,et al. Role of EGF receptor activation in angiotensin Ⅱ-induced renal epithelial cell hypertrophy [J]. J Am Soc Nephrol,2006,17(6):1615-1623.

[20] Lautrette A,Li S,Alili R,et al. Angiotensin Ⅱ and EGF receptor cross-talk in chronic kidney diseases:a new therapeutic approach [J]. Nat Med,2005,11(8):867-874.

[21] Qian Y,Peng K, Qiu C,et al. Novel Epidermal Growth Factor Receptor Inhibitor Attenuates Angiotensin Ⅱ-Induced Kidney Fibrosis [J]. J Pharmacol Exp Ther,2016,356(1):32-42.

[22] Zhang Z,Yin D,Wang Z. Contribution of hypoxia-inducible factor-1α to transcriptional regulation of vascular endothelial growth factor in bovine developing luteal cells [J]. Anim Sci J,2011,82(2):244-250.

[23] Sánchez-López E,López AF,Esteban V,et al. Angiotensin Ⅱ regulates vascular endothelial growth factor via hypoxia-inducible factor-1alpha induction and redox mechanisms in the kidney [J]. Antioxid Redox Signal,2005,7(9-10):1275-1284.

[24] Tang L,Yi R,Yang B,et al. Valsartan inhibited HIF-1α pathway and attenuated renal interstitial fibrosis in streptozotocin-diabetic rats [J]. Diabetes Res Clin Pract,2012, 97(1): 125-131.

[25] Xiong M,Jiang L,Zhou Y,et al. The miR-200 family regulates TGF-β1-induced renal tubular epithelial to mesenchymal transition through Smad pathway by targeting ZEB1 and ZEB2 expression [J]. Am J Physiol Renal Physiol,2012,302(3):F369-379.

[26] Macconi D,Tomasoni S,Romagnani P,et al. MicroRNA-324-3p promotes renal fibrosis and is a target of ACE inhibition [J]. J Am Soc Nephrol,2012,23(9):1496-1505.

[27] Di J,Jiang L,Zhou Y,et al. Ets-1 targeted by microrna-221 regulates angiotensin Ⅱ-induced renal fibroblast activation and fibrosis [J]. Cell Physiol Biochem,2014,34(4):1063-1074.

[28] Pan J,Zhang J,Zhang X,et al. Role of microRNA-29b in angiotensin Ⅱ-induced epithelial-mesenchymal transition in renal tubular epithelial cells [J]. Int J Mol Med,2014,34(5):1381-1387.

[29] Strutz F,Zeisberg M. Renal fibroblasts and myofibroblasts in chronic kidney disease [J]. J Am Soc Nephrol,2006,17(11):2992-2998.

(收稿日期:2016-10-11 本文編辑:程 铭)

猜你喜欢

胞外基质肾脏病纤维细胞
Tiger17促进口腔黏膜成纤维细胞的增殖和迁移
脱细胞外基质制备与应用的研究现状
滇南小耳猪胆道成纤维细胞的培养鉴定
益肾清利和络泄浊法治疗慢性肾脏病4期的临床观察
慢性肾脏病患者血清HIF-1α的表达及临床意义
关于经络是一种细胞外基质通道的假说
胃癌组织中成纤维细胞生长因子19和成纤维细胞生长因子受体4的表达及临床意义
两种制备大鼠胚胎成纤维细胞的方法比较
水螅细胞外基质及其在发生和再生中的作用
慢性肾脏病围透析期的治疗及中医药干预