矮冷水花成分预试验及不同溶剂提取物的抗氧化活性
2016-10-20曹剑锋任朝辉芦静波
曹剑锋 任朝辉 芦静波
摘要:通过对1,1-二苯基-2-三硝基苯肼(DPPH)自由基、·OH的清除活性、还原力、螯合能力、总抗氧化能力的测定,评价矮冷水花水提取物、95%乙醇提取物及其石油醚相、乙酸乙酯相和水溶性3个不同极性部位的抗氧化活性;测定总黄酮、总酚含量;采用化学反应鉴别法对矮冷水花提取物进行化学成分预试验。预试验结果表明:矮冷水花可能含有酚类、鞣质、黄酮类、挥发油或油脂、氨基酸、多肽、蛋白质、还原糖、多糖、苷类、甾体、萜类内酯、香豆素及其苷类化学成分。试验结果表明:水提取物、95%乙醇提取物以及其石油醚相、乙酸乙酯相、水溶性部位提取物均表现出一定抗氧化活性,其中乙酸乙酯部位的黄酮、总酚含量最高,分别为28.43%、2.16%,清除DPPH自由基、·OH的能力、还原力、螯合力及总抗氧化能力的IC50值分别为0.142、0.598、0.328、1.008、0.298 mg/mL,并且随着浓度的增加,清除活性增强。综合试验结果可知,矮冷水花提取物具有很好的抗氧化活性,乙酸乙酯部位抗氧化活性最强。
关键词:矮冷水花;化学成分;提取物;抗氧化活性;药用价值
中图分类号: S132 文献标志码: A 文章编号:1002-1302(2016)07-0307-05
矮冷水花[Pilea peploides (Gaudich.)Hook.et Arn.]属荨麻科,为一年生草本,别称地油仔、苔水花。矮冷水花分布于我国华东、西南等地,常被作为蔬菜食用,因具有清热解毒、祛痰止痛、消炎、褪肿、通便、利尿等功效,民间用于清热解毒祛瘀止痛、跌打损伤、无名肿毒、毒蛇咬伤、疮疖等症[1]。陈谢生等研究矮冷水花并制成了适合防治多种毒蛇的蛇伤草药[2];张浩等对矮冷水花进行了生药学鉴定研究[3]。有关矮冷水花的研究报道较少,本研究对矮冷水花的化学成分和对水提物、乙醇提取物不同萃取物抗氧化活性进行初步研究,以期为矮冷水花植物药用价值的开发应用提供一定参考。
1 材料与仪器
1.1 试验材料
矮冷水花,采自贵阳市乌当区,经贵州师范学院朱富寿教授鉴定为荨麻科植物矮冷水花[Pilea peploides (Gaudich.)Hook.et Arn.]。
1.2 主要药品及试剂
石油醚、乙醇、乙酸乙酯、盐酸、茚三酮、三氯化铁、溴甲酚绿、乙酸、碘化汞钾、碘、碘化铋钾、硅钨酸、碱性苦味酸、3,5-二硝基苯甲酸、氢氧化钠、1,1-二苯基-2-三硝基苯肼(DPPH)、水杨酸、过氧化氢、硫酸亚铁、铁氰化钾、三氯乙酸、三氯化铁、磷酸氢二钠、磷酸二氢钠、菲咯嗪(ferrozine)、硫酸、磷酸钠、钼酸铵、芸香苷、亚硝酸钠、硝酸铝、没食子酸、碳酸钠等,均为分析纯。
1.3 试验仪器
722分光光度计,上海精密科学仪有限公司;旋转蒸发仪,上海亚荣生化仪器厂;冷冻干燥机,河南兄弟仪器设备有限公司;电子天平,赛多利斯科学仪器有限公司;恒温水浴锅,上海梅香仪器有限公司。
1.4 不同提取物的制备
1.4.1 水提物的制备 称取100 g矮冷水花干燥粉末(全草),按料液比1 g ∶ 10 mL加入蒸馏水,浸泡24h,然后于40 ℃ 超声2 h,过滤、浓缩冻干,即得水提物,冷藏备用。
1.4.2 乙醇提取物、石油醚提取物、乙酸乙酯提取物及水溶性提取物的制备 称取500 g矮冷水花干燥粉末(全草),按料液比1 g ∶ 10 mL加入乙醇(95%),不时振荡,浸泡24 h;然后于40 ℃超声2h,过滤,从滤液中回收乙醇至无醇味;取1/4量浓缩液作为乙醇提取物,浓缩冻干,冷藏备用;剩余3/4浓缩液先用石油醚萃取3次,过滤,回收石油醚,浓缩冻干,即得到石油醚提取物,冷藏备用。取上述剩余的浓缩液,加入500 mL 5%盐酸,充分搅拌、过滤,将过滤部分做酸水试验。酸水不溶部分加500 mL乙酸乙酯溶解,乙酸乙酯液用 500 mL 5%NaOH溶液振摇洗涤2次,弃去碱水层;乙酸乙酯层再用蒸馏水洗2次,至水洗液呈中性反应,弃去水洗液,回收乙酸乙酯,浓缩冻干,即得乙酸乙酯提取物,不溶于乙酸乙酯的部分为水溶性提取物,将其冷藏备用。
1.5 试验方法
1.5.1 化学成分预试验 (1)用石油醚提取物分别做挥发油、油脂、甾体的预试验,方法见表1。(2)用乙醇、乙酸乙酯提取物做酚类、鞣质、植物甾体、三萜类、蒽醌类、黄酮类、生物碱、香豆素与内脂、强心苷等预试验,方法见表2、表3。(3)用酸水提取物做生物碱预试验,方法见表4。(4)用水提取物做氨基酸、多肽、蛋白质、糖、多糖、苷类、鞣质、有机酸、皂苷等预试验,方法见表5。
1.5.2 黄酮含量的测定 取100 μL样品原液于试管中,加30%乙醇补齐到5 mL;然后加入0.3 mL 5%亚硝酸钠溶液,摇匀;放置6 min后,加0.3 mL 10%硝酸铝溶液,摇匀;放置6 min 后,再加入4 mL 1 mol/L氢氧化钠溶液;加0.4 mL蒸馏水,摇匀,放置10~15 min后,在515 nm波长处测定上述标准溶液的吸光度[4]。
标准曲线的制作。精确配制浓度为0.1 mg/mL的对照品芸香苷的标准液,分别精确吸取0、1、2、3、4、5 mL标准液于6支具塞试管中,加30%乙醇补齐到5 mL;然后加入0.3 mL 5%亚硝酸钠溶液,摇匀;放置6 min后,加0.3 mL 10%硝酸铝溶液,摇匀;放置6 min后,再加入4 mL 1 mol/L氢氧化钠溶液;加0.4 mL蒸馏水,摇匀,放置10~15 min后,在515 nm波长处测定上述标准溶液的吸光度,制作标准曲线,得到回归方程:
y=0.270 8x-0.001 5,r2=0.990 1。
式中:y为吸光度D515 nm;x为芸香苷浓度,mg/mL。
1.5.3 总酚含量的测定 取100 μL原液样品于试管中,加水补齐到0.5 mL;加入2.5 mL 0.2 mol/L Folin-Ciocalteu试剂,振荡20 s后反应5 min;再加入2 mL7.5%碳酸钠溶液,振荡20 s后反应1 h,于760 nm测定吸光度D760 nm[5]。
标准曲线的制作。配制浓度为100 μg/mL的没食子酸溶液,分别取0、0.1、0.2、0.3、0.4、0.5 mL,共6支试管,加水补齐到0.5 mL;加入2.5 mL 0.2 mol/L Folin-Ciocalteu试剂,振荡20 s后反应5 min;再加入2 mL7.5%碳酸钠溶液,振荡20 s后反应1 h,在760 nm处测定吸光度D760 nm。空白对照用蒸馏水代替样品,制作标准曲线,得到回归方程:
y=34.799x+0.002 2,r2=0.999 1。
式中:y为吸收光度D760 nm;x为没食子酸浓度,mg/mL。
1.5.4 不同部位的抗氧化活性测定 (1)DPPH·清除活性。以95%乙醇为溶剂,配制浓度0.2 mmol/L的DPPH·溶液。加样品后于试管中补齐至1 mL,加入1 mL DPPH溶液,使总体积为2 mL,摇匀。室温放置30 min后记录517 nm处吸光度D517 nm(样品)[6-7];向1 mL DPPH·溶液中加入1 mL蒸馏水,记录吸光度D517 nm(空白),即为空白对照;以维生素C为阳性对照。根据以下公式计算样品DPPH·清除率:
DPPH·清除率=(D517 nm(空白)-D517 nm(样品))/D517 nm(空白)×100%。
(2)·OH清除活性。分别在试管中加入1 mL 3 mmol/L硫酸亚铁溶液、1 mL 3 mmol/L水杨酸-乙醇溶液、1 mL 005%过氧化氢溶液,立即混匀,然后加入不同体积的样品溶液并补齐至1 mL。以等体积的蒸馏水作为空白对照,于 37 ℃ 反应30 min,在510 nm下测量吸光度D510 nm(样品)、D510 nm(空白)[8]。以1 mL 3 mmol/L硫酸亚铁溶液、1 mL 3 mmol/L水杨酸-乙醇溶液、2 mL蒸馏水作为本底吸收(调零管)。相应公式为:
清除率=(D510 nm(空白)-D510 nm(样品))/D510 nm(空白)×100%。
(3)还原力测定。加入不同体积的样品后补齐至1 mL,再加入2.5 mL 0.2 mol/L、pH值为6.6的磷酸盐缓冲液和25 mL 1%铁氰化钾溶液,于50 ℃水浴20 min;加入25 mL 10%三氯乙酸溶液,3 000 r/min离心10 min;取2.5 mL上清液,加入2.5 mL蒸馏水、0.5 mL三氯化铁(0.1%),于700 nm 处测定吸光度D700 nm[9-10],以维生素C为阳性对照。
(4)螯合能力测定。加入不同体积的样品后补齐至 1 mL,再加入3.7 mL蒸馏水、0.1 mL 2 mmol/L氯化亚铁(FeCl2)溶液,振荡30 s,混合均匀;然后加入0.2 mL 0.5 mmol/L ferrozine启动反应,室温放置30 min;接下来于3 000 r/min 离心 5 min,取上清液在562 nm处测定吸光度D562 nm,以EDTA为对照[11]。
(5)总抗氧化能力的测定。加入不同体积的样品后补齐至1、4 mL,试剂中含0.6 mol/L硫酸、28 mmol/L磷酸钠、4 mmol/L钼酸铵,混匀后于95 ℃水浴中恒温90 min,在695 nm 波长下测其吸光度D695 nm。空白用1 mL蒸馏水代替样品液,以维生素C作为阳性对照[12]。
1.5.5 数据统计 数据以均值±标准差(x±s)表示,采用SPSS 11.5软件进行t检测处理 。
2 结果与分析
2.1 化学成分预试验结果
石油醚提取物、乙醇提取物、乙酸乙酯提取物、酸水提取物、水提取物化学鉴别试验结果分别见表1至表5。
2.2 矮冷水花不同提取物黄酮、酚类含量
由表6可以看出:矮冷水花乙酸乙酯提取物的总黄酮含量最高,为28.43%;其次是乙醇提取物中的含量,为2176%;水溶性、水提取物中黄酮含量分别为1.83%、192%。因此,矮冷水花黄酮主要集中在乙酸乙酯、乙醇部分,矮冷水花乙酸乙酯提取物的总酚含量为2.16%,含量最高;乙醇提取物、水溶性、水提取物总酚含量分别为077%,0.59%、0.27%,因此可知,矮冷水花总酚含量主要集中在乙酸乙酯部分,其次是乙醇部分。
2.3 DPPH· 清除活性
从图1可以看出,矮冷水花不同提取物对DPPH·均具有一定的清除作用,且随着提取物浓度的增加,清除能力逐渐增强;在浓度为0.5 mg/mL时,乙酸乙酯提取物对DPPH·清除活性可达到97.0%,高于同浓度乙醇提取物的76.2%、水溶性部分的53.7%,以及水提物的7.4%。因此可知,矮冷水花乙酸乙酯提取物对DPPH·清除活性最强。
2.4 ·OH清除活性
从图2可以看出,矮冷水花不同提取物对·OH均具有一定的清除作用,且随着提取物浓度的增加,清除活性逐渐增强。在浓度为1.5 mg/mL时,乙酸乙酯提取物对·OH清除活性可达到99.9%,同浓度的水提物、乙醇提取物、水溶性部分的清除率分别为94.8%、73.2%、67.7%。因此矮冷水花乙酸乙酯提取物对·OH自由基清除活性最强,其次为水提取物部位。
2.5 还原力测定
从图3可以看出,矮冷水花不同提取物均具有一定的还原能力,且随着提取物浓度的增加,还原能力逐渐增强。在浓度为1 mg/mL时,乙酸乙酯提取物还原能力D700 nm为1.31,同浓度的乙醇提取物、水溶性部分、水提物D700 nm分别为0.78、0.39、0.19。因此,矮冷水花乙酸乙酯提取物的还原能力最强。
2.6 螯合能力测定
从图4可以看出,矮冷水花不同提取物均具有一定的螯合能力,且随着提取物浓度的增加,螯合能力逐渐增强。在浓度为1.2 mg/mL时,水提取物螯合能力D562 nm为0.87,同浓度的乙酸乙酯提取物、乙醇提取物、水溶性部分的D562 nm分别为0.53、0.52、0.16。因此可知:矮冷水花水提取物的螯合能力最强,乙酸乙酯提取物次之。
2.7 总抗氧化能力的测定
从图5可以看出,矮冷水花不同提取物均具有一定的总抗氧化能力,且随着提取物浓度的增加,总抗氧化能力逐渐增强。在浓度为1.2 mg/mL时,乙酸乙酯提取物总抗氧化能力D695 nm为1.35,高于同浓度的乙醇提取物的0.52;水溶性提取物的D695 nm为0.13,明显高于水提物的0.01。因此可知,矮冷水花水提取物的总抗氧化能力最强,主要集中在乙酸乙酯、乙醇提取物部位。
2.8 矮冷水花不同提取物抗氧化IC50值
由表7可见,在4个不同提取物中,清除DPPH·能力、还原力、总抗氧化能力大小依次是:乙酸乙酯提取物>乙醇提取物>水溶性>水提物,其中乙酸乙酯提取物清除DPPH·的活性约为维生素C的1/10,乙醇提取物约为维生素C的1/20左右; 清除·OH自由基活性能力大小依次是:乙酸乙酯提取物>水提物>乙醇提取物>水溶性,水提物表现较强的清除·OH活性,其活性约为纯品维生素C的1/6;螯合能力大小依次是:水提物>乙酸乙酯提取物>乙醇提取物>水溶性。3 结论
预试验结果初步表明:矮冷水花中可能含有黄酮类、酚类、香豆素类、挥发油、植物甾醇、糖类、苷类、鞣质、有机酸等化学成分。本研究初步确定了矮冷水花可能存在的化学成分, 为矮冷水花活性成分的提取、分离、纯化和筛选研究提供了科学依据。
本研究表明,植物提取物的抗氧化活性与植物中多酚、黄酮含量密切相关[13-16]。通过对比冷水花抗氧化活性与总黄酮、总酚含量可知,矮冷水花提取物不同极性部位黄酮、总酚含量大小依次为:乙酸乙酯提取物>乙醇提取物>水溶性>水提物。体外抗氧化研究结果表明:4种提取物对DPPH·清除力、还原力、螯合力、总抗氧化力均表现出一定的抗氧化能力,次序是:乙酸乙酯提取物>乙醇提取物>水溶性>水提物,对DPPH·表现出中等极性乙酸乙酯的活性较强,极性大的水部位相对较弱,但对羟自由基清除能力方面,水提取物明显较强。总之,本试验结果表明,乙酸乙酯提取物部位是矮冷水花抗氧化活性的主要部位,提示黄酮、多酚类化合物是矮冷水花抗氧化作用的主要物质基础。
参考文献:
[1]福建省卫生厅医教科研处.研究资料汇编[Z]. 1983.
[2]陈谢生,汪如明.防治蛇伤药物矮冷水花制剂的研究[J]. 蛇志,1992,4(4):13-14.
[3]张 浩,郭增喜. 矮冷水花的生药学鉴定[J]. 现代应用药学,1988,5(4):16-17.
[4]Athukorala Y,Kim K N,Jeon Y J. Antiproliferative and antioxidant properties of an enzymatic hydrolysate from brown alga,Ecklonia cave[J]. Food & Chemical Toxicology,2006,44(7):1065-1074.
[5]Silva J K D,Cazarin C B B,Colomeu T C,et al. Antioxidant activity of apueous extract of passion fruit (Passiflora edulis) leaves:in vitro and in vivo study[J]. Food Research International,2013,53(2):882-890.
[6]韦献雅,殷丽琴,钟 成,等. DPPH法评价抗氧化活性研究进展[J]. 食品科学,2014,35(9):317-322.
[7] Blois M S. Antioxidant determinations by the use of a stable free radical[J]. Nature,1985,181(4617):1199-1200.
[8]Halliwell B,Gutteridge J M,Aruoma O I. The deoxyribose method:a simple “test-tube” assay for determination of rate constants for reactions of hydroxyl radicals[J]. Analytical Biochemistry,1987,165(1):215-219.
[9]Dinis T C P,Madeira V M C,Almeida L M. Action of phenolic derivates (acetoaminophen,salycilate and 5-aminosalycilate) as inhibitors of membrane lipid peroxidation and as peroxyl radical scavengers[J]. Archives of Biochemistry & Biophysics,1994,315:161-169.
[10]Kumar P S,Sudha S. Evaluation of antioxidant activity and total phenolic content of Padina boergesenii from Gulf of Mannar[J]. Drug Invention Today,2012,4(12):635-639.
[11]Gülcinì,
瘙 塁 ati G,Beydemir S,et al. Comparison of antioxidant activity of clove (Eugenia caryophylata Thunb) bubs and lavender (Lavandula stoechas L.)[J]. Food Chemietry,2004,87(3):393-400.
[12]Tung Y T,Wu J H,Huang C Y,et al. Antioxidant activities and phytochemical characteristics of extracts from Acacia confusa bark[J]. Bioresource Technology,2009,100(1):509-514.
[13]Rice-Evans C A,Miller N J,Paganga G. Structure-antioxidant activity relationships of flavonoids and phenolic acids[J]. Free Radical Biology & Medicine,1996,20(7):933-956.
[14]李加兴,陈 选,邓佳琴,等. 黄秋葵黄酮的提取工艺和体外抗氧化活性研究[J]. 食品科学,2014,35(10):121-125.
[15]李姝蓓,张 东,杨 岚,等. 荚果蕨贯众提取物中黄酮类成分的含量测定和抗氧化活性研究[J]. 中国药学杂志,2013,48(21):1860-1863.
[16]李利华. 芹菜不同部位总黄酮含量测定及其抗氧化活性[J]. 食品研究与开发,2013,34(7):12-15.