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具ACE抑制活性的油茶饼粕酶解物的制备及分离表征

2016-10-17高刚峰陈勇强陈养陈莉沈双玲

福建轻纺 2016年1期
关键词:抑制率蛋白酶水解

高刚峰,陈勇强,陈养,陈莉,沈双玲

(1.三明市生物医药及生物产业工作办公室, 福建 三明 365000;2.福建省农产品加工推广总站,福建 福州 350001;3.尤溪县林业局,福建 尤溪 365100)

具ACE抑制活性的油茶饼粕酶解物的制备及分离表征

高刚峰1,陈勇强2,陈养3,陈莉1,沈双玲1

(1.三明市生物医药及生物产业工作办公室, 福建 三明 365000;2.福建省农产品加工推广总站,福建 福州 350001;3.尤溪县林业局,福建 尤溪 365100)

以油茶饼粕为原料,研究通过5种蛋白酶水解制备的茶粕酶解物ACE抑制率随酶解时间的变化规律,结果表明除蛋白酶C外,其余4种蛋白酶水解的茶粕酶解物ACE抑制率随酶解时间呈现先增加后减小的趋势。比较不同蛋白酶水解的茶粕酶解物ACE抑制活性得出经蛋白酶A水解后的茶粕酶解物具有较高的ACE抑制率(94.4%);为获得高纯度并具有高ACE抑制活性的酶解组分,文章采用CM-SephadexC-25阳离子交换色谱和RP-HPLC纯化经蛋白酶A酶解的茶粕酶解物。由CM-SephadexC-25阳离子交换色谱分离得到一个组分A,通过RP-HPLC进一步分离组分A得到6个组分。对ACE抑制率最高的组分A-2 进行RP-HPLC二次纯化,得出该分离组分达到色谱纯,其半数抑制浓度(IC50)为98μg.mL-1。

油茶饼粕;ACE抑制率;RP-HPLC

ACE抑制活性物质通过抑制ACE活性达到降血压的作用。它们对ACE活性区域的亲和力大于血管紧张素I(Angiotensin I)和缓激肽(BradykininI)对ACE的亲和力,并且一旦和ACE活性区域结合就难于释放,从而阻碍ACE催化水解血管紧张素I(AngiotensinI)成为血管紧张素Ⅱ(AngiotensinⅡ)以及催化水解缓激肽(Bradykinin)成为失活片段的两种生化反应过程,起到降血压的作用[1,2]。目前,微生物发酵或蛋白酶水解是生产ACE抑制活性物质的最常用的方法,其次还有从自溶产物中提取、DNA重组技术及化学合成等方法[3-6]。酶法水解是目前获得ACE抑制活性物质的主要途径,该方法的优点是生产成本低,而且产品的安全性高,无副作用。

茶籽饼又名油茶饼粕,别名茶麸、茶枯,呈紫褐色颗粒,是野山茶油果实榨油后剩下的渣,其数量相当于茶油的3倍。我国年产茶油约15万t,茶籽饼约50万t[6]。用有机溶剂将茶籽饼进行进一步提油后的残渣即为茶粕。全国每年有榨油后剩下的约50万t。根据分析测定,油茶饼粕中富含蛋白质、脂肪、淀粉、茶皂素、粗纤维,茶粕蛋白质中含有18种氨基酸,包括畜禽生长所需的10种必需氨基酸,其中苏氨酸、谷氨酸、组氨酸和精氨酸等含量较为丰富[1,8]。但由于茶粕味苦有毒,目前基本上被废弃,造成了很大的资源浪费。因此,文章拟对茶粕进行深度开发和利用,通过酶解技术制备具ACE抑制活性的茶粕酶解物,再经过色谱等分离方法对酶解产物的ACE活性活性物质进行分离和表征。

表1 酶解处理表

1 材料和方法

1.1 材料

1.1.1 材料和药品

油茶饼粕,沈郎食用油公司提供,粉碎过筛待用;蛋白酶A、蛋白酶B、蛋白酶C、蛋白酶D和蛋白酶E,丹麦NOVE公司;马尿酰组氨酰亮氨酸(HHL)、血管紧张素转化酶(ACE),Sigma公司。

1.1.2 仪器和设备

HH-8型数显恒温水浴锅:国华电器有限公司;V-1200型可见光分光光度计:上海美谱达仪器有限公司; SHB-Ⅲ型循环水式多用真空泵:郑州长城科工贸有限公司;ML-902型磁力搅拌器:上海浦江分析仪器厂;TDL-5-A型台式离心机:上海安亭科学仪器厂;868型pH计:Orion Research公司;KQ-250E型超声波清洗器:昆山市超声仪器有限公司;TE601-L型,BS110S型电子天平:北京赛多科斯天平有限公司;EasySepTM-1010型高效液相色谱仪:上海通微分析技术有限公司;CM-SephadexC-25阳离子交换柱:上海贺宝化工有限公司;BS-100A型自动部分收集器:上海沪西分析仪器厂。

1.2 方法

1.2.1 茶粕酶解物的制备

将底物浓度为2.5%的茶粕置于250mL三角瓶中,采用表1的处理方法进行酶解,水解在恒温水浴振荡器中进行。反应结束后,将反应体系在85℃下加热使酶失活。

1.2.2 茶粕酶解物的分离纯化

1.2.2.1 离心和微滤

酶解液经过离心机4000r.min-1离心10min,收集上清液;将上清液经过膜孔径为0.2um的无机膜微滤,收集滤液供后续分离操作。

1.2.2.2 离子交换层析初步分离

阳离子交换树脂预处理参照赵永芳[9]方法,采用湿法填柱。

将滤液(经过透析除盐)20mL上样至CMSephadexC-25阳离子层析柱,分离条件为:凝胶柱φ1.6×15cm,洗脱液0.02mol.L-1pH3.8醋酸-醋酸钠缓冲溶液和1mol.L-1氯化钠溶液,氯化钠线性洗脱梯度0~ mol.L-1,流速为0.5mL.min-1,每管收集时间为10mL,检测波长为220nm。

1.2.2.3 RP-HPLC分离纯化

[10]并略作改动。将经离子交换层析分离的组分冻干,适当稀释后采用RP-HPLC进一步分离。色谱条件:色谱柱EasySepTMC18 分析型色谱柱(5um4.6⋆250mm),检测波长220nm,柱温25℃;流速1mL.min-1;洗脱条件:0~5min,100%A;5~20min,100%A~60%A;20~30min,60%A~100%B;30~50min,100%B(A:0.05%TFA+5%乙腈,B:80%乙睛+0.05%TFA)。收集各组分峰,重复进样,收集多次,冷冻干燥,并测定每个组分峰的ACE抑制活性。经 RP-HPLC一次制备的具有最高ACE抑制活性的组分再次进行二次纯化。

1.2.3 茶粕酶解物水解度的测定

参考文献甲醛滴定法[8]

1.2.4 ACE抑制活性的测定

ACE抑制率根据参考文献[11]和[12]的方法测定,ACE半数抑制浓度(IC50)的测定参考文献[13]。

2 结果与分析

2.1 酶解时间与ACE抑制率的关系

5种蛋白酶酶解的茶粕酶解物ACE抑制率和水解度随酶解时间的变化趋势见图1。

从图1可以看出,水解度随着时间的延长而增大,符合酶解的一般规律;但是,茶粕酶解物的ACE抑制率并不随时间增加而增大,除蛋白酶C外,其余四种蛋白酶酶解的茶粕酶解物ACE抑制率随酶解时间的延长呈现先增加后减小的趋势。原因可能是:随着酶解时间的延长,原来酶解出的具有ACE抑制活性的物质被进一步酶解,酶解物的端基和肽链长度等发生了变化,使得之前酶解出的物质失去了原有的ACE抑制活性,所以,ACE抑制活性不会随着氨基氮含量呈先增加后稳定的趋势变化。从图中还可以看出,不同酶解时间所获得的茶粕酶解物都体现出一定的ACE抑制活性,即存在着多种ACE活性抑制物质。这一现象与吴建平等人的报道基本一致[14],即ACE是一类专一性相对较弱的酶,在蛋白质经酶解后的酶解物中,存在着多种ACE抑制活性物质,这些ACE抑制活性物质并非是简单的或有或无。

2.2 不同蛋白酶酶解的茶粕酶解物ACE抑制率的对比分析

由图2可知,没有经过酶解的茶粕提取液就存在74.5%的ACE抑制率,说明茶粕提取液本身就含有一定的ACE抑制活性物质。茶粕经蛋白酶酶解后,抑制率均有所提高,最高提高了27%,说明酶解液中有ACE抑制活性物质的存在。五种酶水解后的ACE抑制活性大小依次为:蛋白酶A>蛋白酶D>蛋白酶E>蛋白酶C>蛋白酶B;从氨基氮含量来看,蛋白酶C水解后氨基氮含量最高。相比之下,其他酶解液的氨基氮含量偏低,尤其蛋白酶D,其氨基氮含量只有0.037mg.mL-1,但抑制率就高达92.8%。

ACE抑制肽大约包含2~12个氨基酸残基,有研究表明分子质量小利于肽在体内的吸收利用,但也有极个别的由27个氨基酸组成的降血压肽被发现。降血压肽的抑制活性与其氨基酸结构和组成密切相关。经研究认为ACE抑制肽的抑制活性主要取决于C端氨基酸, C端氨基酸为芳香族氨基酸(包括色氨酸、酪氨酸、苯丙氨酸和脯氨酸)时,其抑制活性较高。而且,C端残基上带正电荷的氨基酸的存在可以显著增强降压肽的抑制活性,如精氨酸(胍基)。此外,ACE抑制肽的疏水性也是影响其活性的重要因素,高亲水性使其无法接近ACE活性部位而导致弱或无活性。这些对ACE抑制肽的结构分析还局限于对已知氨基酸序列的肽进行定性的分析,许多肽并不符合这些研究结果,确切的构效关系模型至今仍未建立,有待进一步的研究[1,15]。

蛋白酶B、C氨基氮含量高,但ACE抑制率偏低,这可能与这两种酶是具有内切蛋白酶和外切蛋白酶两种活性酶有关。内切酶和外切酶同时存在于一个酶解反应体系时,对增加酶解物中氨基酸的量和改善酶蛋白多肽的风味有好处,但可能不利于制备功能活性物质[16]。

蛋白酶A、蛋白酶D和蛋白酶E酶解液的ACE抑制率均很高是由于这些酶的酶切位点均含有芳香族的氨基酸,这些氨基酸都具有ACE抑制活性。例如:蛋白酶D酶切位点所形成的氨基酸残基中苯丙氨酸、色氨酸均是ACE抑制肽的端基组成,并且酶切后形成的丙氨酸残基是疏水性氨基酸,酪氨酸残基是带正电荷的氨基酸残基,这都有利于增强ACE抑制的活性,所以蛋白酶D酶解后的茶粕酶解物ACE抑制性很高。

2.3 茶粕酶解物的分离纯化

2.3.1 离子交换层析分离茶粕酶解物

茶粕经蛋白酶酶解的产物经CM-SephadexC-25阳离子交换层析分离的色谱见图3。从图3中可以看出分离结果只有一个峰A,其220nm的吸光值为0.409。

2.3.2 RP-HPLC分离纯化组分A

将CM-SephadexC-25阳离子交换层析分离得到的A组分进行RP-HPLC进一步分离,分离结果见图4。组分A经RP-HPLC分离得到6个分离组分,分别标记为:A-1、A-2、A-3、A-4、A-5和A-6。测定各分离组分ACE抑制率见表2。

表2 RP-HPLC各分离组分的ACE抑制率

根据表2结果,组分A-2的ACE抑制率最高。将组分A-2进行RP-HPLC二次纯化,结果见图5。由图5可知,组分A-2基本达到色谱纯。

3 结论

5种蛋白酶(蛋白酶A、蛋白酶B、蛋白酶C、蛋白酶D和蛋白酶E)酶解后的茶粕酶解物ACE抑制率和氨基氮含量随酶解时间的变化规律为:氨基氮含量随酶解时间呈现先增加后稳定的变化趋势,而酶解产物的ACE抑制率并没有随氨基氮含量的增加而增加;除了蛋白酶C外,其他4种蛋白酶的酶解液ACE抑制率都是随着时间的延长呈现先增加后减小的变化趋势,蛋白酶C的酶解产物则是随时间呈现波动变化。5种蛋白酶水解产物的ACE抑制活性大小依次为:蛋白酶A>蛋白酶D>蛋白酶E>蛋白酶C>蛋白酶B。其中,经蛋白酶A水解后的酶解产物ACE抑制率最高,达到94.4%,对应的氨基氮含量为0.048mg.mL-1。

采用CM-SephadexC-25阳离子交换色谱和RPHPLC纯化经蛋白酶A酶解的茶粕酶解物。由CMSephadexC-25阳离子交换色谱分离得到一个组分A,通过RP-HPLC进一步分离组分A得到6个组分。对ACE抑制率最高的组分A-2 进行RP-HPLC二次纯化,分离图谱为单峰,说明该分离组分达到色谱纯,其半数抑制浓度(IC50) 为98μg.mL-1。

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Q555

A

1007-550X(2016)01-0043-05

10.3969/j.issn.1007-550X.2016.01.001

2015-11-24

高刚峰(1964-),男,高级工程师。

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