鹅细小病毒感染的诊断与防治

政书涛

中图分类号：S858.33 文献标识码：C 文章编号：1673-1085（2015）06-0031-02

鹅细小病毒感染（Goose parvovirus infection）又称小鹅瘟、鹅肠炎、鹅传染性心肌炎，是雏鹅和番鸭的一种急性、亚急性或慢性的高度接触传染性疾病，以渗出性肠炎为主要病理特征。

1956年中国的江苏省扬州地区首次发生类似疾病，随后此病在江苏、广西、广东、浙江、安徽、山东等省区发生和流行，遍及全国各养鹅地区。匈牙利的Derzsy于1966年分离到病毒，Schettler于1971年证实该病是由细小病毒引起。1978年将该病称鹅细小病毒感染。

1 病原学

该病毒为细小病毒科的一个独立的细小病毒，近期的分子生物学研究表明，鹅细小病毒与人的依赖病毒属关系更密切，与鸡或哺乳动物的细小病毒无抗原相关性。鹅细小病毒属于细小病毒科细小病毒属成员，其生物学特性类似番鸭细小病毒，在电镜下呈晶格排列，完整的病毒粒子直径为20～24nm， 圆形或六角形，衣壳由32个壳粒组成，无囊膜， 20面体对称的单股线性DNA病毒，大小为5～6kb。与一些哺乳动物的细小病毒不同，迄今尚未发现本病毒有凝集红细胞的性能。研究表明，该病毒能凝集黄牛的精子。鹅细小病毒不与本属其它病毒呈交叉血清学反应，而且国内外所有GPV 分离株仅有一个血清型。鹅细小病毒对理化因素的灭活作用有很强的抵抗力，对乙醚、氯仿、胰酶的处理有抵抗力，对紫外线敏感，65℃加热处理30min滴度不受影响。病毒在pH3.0溶液中，37℃条件下作用1h仍稳定。鹅细小病毒初代分离，只能应用鹅胚和番鸭胚或者利用原代胚细胞培养物进行分离，分离的病毒可以在鹅胚成纤维细胞系上培养。该病毒是自主性细小病毒，无需辅助病毒便可自行复制，复制过程在细胞核内完成，并形成大型包涵体。

2 流行病学

自然病例仅见鹅、番鸭和一些杂交品种，对其它禽类和哺乳动物无侵染性。该病毒主要侵害3～20日龄的雏鹅，不同日龄、不同地区、不同免疫情况鹅群发病率与死亡率均不一致，雏鹅的易感性随着年龄的增长而减弱。本病有严格的年龄相关性，1周龄以内的雏鹅死亡率可达100%，而4～5周龄感染造成的损失很小，1月龄以上很少发病。但近年来有发病日龄推迟的报道，虽然较大的鹅感染后不表现临床症状，但有免疫学反应。本病的传染源主要是病雏鹅及带毒鹅，主要通过消化道传染，感染鹅粪便可排出大量的病毒，与病鹅直接接触或间接接触病鹅排泄物污染的饲料、饮水、用具是该病传播的主要途径。易感雏鹅最严重的暴发是由垂直感染引起的。成年鹅呈亚临床或潜伏感染，这些鹅作为病毒携带者，通过卵将病毒传给孵坊中的易感雏鹅。该病毒尚未证实有生物传播媒介。易感雏鹅的潜伏期与年龄有关，1日龄雏鹅实验感染后3～5d表现临床症状，2～3周龄鹅感染的潜伏期为5～10d。

3 临床症状和病理变化

临床表现随感染鹅的日龄不同而不同。1周龄以内雏鹅发病快，2～5d内出现厌食、衰竭和死亡。日龄较大或有一定母源抗体的雏鹅病程则较长，且表现出特征性的临床症状。根据病程可分为最急性、急性、亚急性三种类型。最急性：3～5日龄发病者常为此型，常在1d内，甚至不出现任何前驱症状，突然死亡，死亡雏鹅喙端、爪尖发绀，易感雏发病率可达100%，病死率高达95%以上，病程只有0.5～1d；急性型：5～15日龄所发生的大多数病例常为急性型。病鹅全身委顿，食欲减少或废绝。饮水增加，出现严重下痢，排出灰白色或黄绿色混有气泡或假膜的稀粪。鼻腔有分泌物流出，时时摇头，呼吸用力，喙端变暗。行走困难，常离群独处，嗜睡拒食。临死前出现两腿麻痹或抽搐等神经症状，病程1～2d；亚急性或者慢性：常见于15日龄以上的雏鹅，病鹅精神委顿，消瘦，行动迟缓，站立不稳。排稀粪并杂有大量气泡和未消化的饲料及纤维素碎片，肛门周围绒毛污秽严重。少食或拒食，鼻孔周围沾污大量分泌物和饲料碎片，病程为3～7d。少数幸存者在一段时间内生长不良。

最急性病例可见整个肠道急性卡他性炎症，小肠粘膜尤其前段粘膜肿胀充血，粘膜覆盖有大量浓厚淡黄色粘液，其它器官病变不明显；急性型表现全身败血症变化，全身脱水，皮下显著充血，心尖周围有特征性心肌苍白，肝脏、脾脏和胰腺肿大、充血；亚急性或慢性病例出现典型的浆液-纤维素性肝周炎、心包炎，腹腔有大量淡黄色积液，还可伴发肺水肿、肝萎缩或卡他性肠炎。

组织学病变主要是心肌细胞严重变性、条纹消失和脂肪浸润，并有Cowdrey A型核内包涵体。肝细胞变性，伴有空泡化和脂肪浸润。胰腺腺泡细胞皱缩坏死，并有脂肪浸润。

对于鹅细小病毒的感染机理没有详细的研究。水平传播，主要的是摄入被病毒污染的饲料和饮水。病毒首先在肠壁复制，然后进入血液，最后到达肝脏、心脏。

4 诊断

根据流行病学、临床症状及典型的病理变化进行分析，即可作出初步诊断。确诊须依赖于病原分离鉴定、血清学检测。可利用鹅胚或番鸭胚从多种病料组织中分离病毒。免疫荧光、琼扩试验、免疫电镜、ELISA等方法检测病毒抗原或抗体。针对病毒VP1保守区建立的PCR技术亦可用于病料组织中的鹅细小病毒核酸检测。布日额等首次应用GPV的VP3基因重组原核表达产物建立检测GPV抗体的间接ELISA及Dot-ELISA方法。周春宇等制备了兔抗GPV多克隆抗体， 以人工感染GPV的四川白鹅无母源抗体雏鹅为材料， 建立了检测鹅细小病毒的间接免疫酶组织化学法。邹叔和等报道了ABC-ELISA 法具有较高的特异性和敏感性， 可用于小鹅瘟病毒的定性和定量分析。余兵等利用地高辛标记核酸探针，建立了检测病料中GPV核酸的斑点杂交法。付薇等采用SYBR GreenⅠ荧光染料建立了小鹅瘟病毒荧光定量PCR检测方法。

注意与鸭病毒性肠炎、鹅出血性肾炎、肠炎、鸭疫里默氏杆菌病相区别。

5 预防与治疗

在没有发病的地区和鹅场，必须严密防止病原体的传入。尽量自繁自养，不要购进疫区禽场的种蛋和鹅苗，购买时应了解母鹅是否接种过小鹅瘟疫苗。新购入的鹅苗必须隔离观察，证实无病后才可以混群，或者购买时注射小鹅瘟抗血清。购入的种蛋应熏蒸消毒，孵出的雏鹅也应集中饲养，不可立即分散。

种鹅开产前可以用弱毒疫苗免疫接种1～2次，半年后再免疫一次。使用灭活疫苗亦可产生高水平的免疫力，在适当的时候进行种鹅母源抗体检测，发现母源抗体水平参差不齐的时候，及时采取措施。在雏鹅饲料或饮水中，加适量葡萄糖、维生素B、维生素C，可增强雏鹅的抗病力。病死的雏鹅应焚烧深埋，对病毒污染的场地进行彻底消毒。

疫情发生之后，应立即采取隔离消毒的综合措施，立即停止入孵，进行全面的清洁和消毒，已入孵的种蛋出壳后逐只接种小鹅瘟血清。鹅舍应彻底清扫、消毒。发病的小鹅群应尽早注射鹅血清或蛋黄抗体，并配合使用抗菌药物防止继发感染。已感染过该病的雏鹅不宜留作种用。endprint