山核桃饼粕蛋白提取工艺的优化
2015-12-31刘双凤王华生
刘双凤 王华生
(湖南省农林工业勘察设计研究总院,湖南 长沙 410007)
山核桃(Carya cathayensis Sarg.)是胡桃科山核桃属植物,主要分布在浙、皖两省交界的天目山一带,是中国特产的优良干果、油料树种[1,2]。目前,山核桃大部分被用于油脂榨取,压榨后的饼粕基本被直接丢弃[3]。研究[4,5]发现,山核桃饼粕中约含有20%的蛋白质,其蛋白的效价与动物蛋白相近,含有多种人体必需氨基酸,尤其是精氨酸、谷氨酸、组氨酸、酪氨酸的含量非常高,且必需氨基酸的含量比例合理,接近联合国粮农组织和世界卫生组织规定的标准氨基酸配比,具有很高的食用价值和保健功能。
目前用于蛋白提取的方法主要有十六烷基三甲基溴化铵法、尿素法、脂肪酸盐法、碱提酸沉法等[6],其中碱提酸沉法因为操作简单、提取率高,被广泛应用于实际生产中[7],其在山核桃饼粕上的应用也倍受关注。赵见军等[8]曾对核桃粕中蛋白的提取工艺进行优化,但其采用的超声波辅助浸提法,由于设备的限制离实际生产应用还有一定距离。杨瑾等[9]曾优化了碱提酸沉法提取山核桃饼粕的工艺,但其是以冷冻干燥后的粗蛋白为评价指标,有失偏颇。
本课题汲取前人[8,9]的研究经验并做适当调整,以山核桃为原料,借助二次正交旋转组合试验设计,对碱提酸沉法提取山核桃饼粕蛋白工艺进行优化,以期为山核桃资源的充分利用提供理论依据。
1 材料与方法
1.1 材料与试剂
冷榨山核桃饼粕:河北黄金龙食用油有限公司;
牛血清白蛋白:≥98.5%,上海金穗生物科技有限公司;
石油醚(60~90℃)、氢氧化钠、盐酸:分析纯,国药集团化学试剂有限公司。
1.2 主要仪器设备
摇摆式粉碎机:DFY-500D型,温岭市林大机械有限公司;
智能型蒸馏器:HR-1000型,上海华睿仪器有限公司;
数显定时消化炉:HR-08型,上海华睿仪器有限公司;
台式高速离心机:TG16-WS型,湖南湘仪科学设备有限公司;
数显恒温水浴锅:HH-8型,江苏省金坛市环宇科学仪器厂;
冷冻干燥机:FD-2A型,上海争巧科学仪器有限公司;
台式精密酸度计:TP310型,上海雷磁新泾仪器有限公司;
可见分光光度计:722N型,上海圣科仪器设备有限公司。
1.3 方法
1.3.1 工艺流程
山核桃饼粕→粉碎(过30目筛)→干燥(50℃,24h)→脱脂(索氏抽提8h)→调至碱性(NaOH)→恒温浸提→离心(3 000r/min,20min)→上清液→调至酸性(HCl)→离心(3 000r/min,20min)→沉淀→洗至中性(蒸馏水)→真空冷冻干燥(-10℃预冻12h,-30℃干燥24h)→山核桃蛋白
1.3.2 山核桃饼粕蛋白等电点的测定 准确称取山核桃饼粕20.0g于烧杯中,按料液比1∶15(m∶V)加入蒸馏水,用1mol/L的NaOH溶液调节体系pH至9.0,于50℃的恒温水浴锅内浸提120min。浸提完成后,3 000r/min离心20min,获取上清液。取1mL待测液(将1mL的提取上清液定容至100.0mL)用分光光度计测吸光度值(在595nm波长下),并根据标准曲线(详见1.3.6)计算出蛋白质含量;另取7份15mL的上清液,以1mol/L的HCl溶液调节体系pH 分别为 3.0,3.5,4.0,4.5,5.0,5.5,6.0,分别离心(3 000r/min,20min)并取1mL稀释了100倍的上清液用可见分光光度计测吸光度值(在595nm波长下),根据标准曲线(详见1.3.6)计算出蛋白质含量。以式(1)计算山核桃饼粕蛋白质的沉淀率,最大时的pH值即为其等电点。
式中:
R1——山核桃蛋白质的沉淀率,%;
m1——酸沉前的蛋白质含量,mg/mL;
m2——酸沉后的蛋白质含量,mg/mL。
1.3.3 单因素试验设计
(1)提取时间:在提取温度为50℃、料液比为1∶15(m∶V)、pH 为9.0的条件下,考察提取时间(30,60,90,120,150,180min)对山核桃饼粕蛋白提取率的影响。
(2)提取温度:在提取时间为120min、料液比为1∶15(m∶V)、pH 为9.0的条件下,考察提取温度(40,45,50,55,60,65℃)对山核桃饼粕蛋白提取率的影响。
(3)料液比:在提取时间为120min、提取温度为55℃、pH为9.0的条件下,考察料液比(1∶10,1∶15,1∶20,1∶25,1∶30,m∶V)对山核桃饼粕蛋白提取率的影响。
(4)pH值:在提取时间为120min、提取温度为55℃、料液比为1∶20(m∶V)的条件下,考察pH(8,9,10,11,12)山核桃饼粕蛋白提取率的影响。
1.3.4 二次正交旋转组合优化试验 根据单因素试验的结果,并考虑到TP310型台式精密酸度计灵敏度的实际情况,固定浸提的pH为9.0不变,以提取时间、提取温度、料液比为试验因素,山核桃粕蛋白提取率为响应值,采用二次正交旋转组合试验设计对提取工艺进行优化。
1.3.5 山核桃饼粕中蛋白质含量的测定 按GB 5009.5—2010执行。
1.3.6 上清液中蛋白含量的测定 采用考马斯亮蓝法。
(1)绘制标准曲线:参照文献[10]的方法,以蛋白质含量(X,mg/mL)为横坐标,吸光度(A)为纵坐标,绘制标准曲线得线性回归方程A=4.951 4X-0.013 5(R2=0.998)。
(2)对样品的测定:将离心分离后的山核桃饼粕蛋白提取液定容至100mL,静置后取出1mL稀释100倍待测。测定时,取待测液1mL参照文献[10]测吸光度A值,并计算蛋白含量。
1.3.7 蛋白质提取率的测定 蛋白质提取率按式(2)计算:
式中:
R2——蛋白沉淀率,%。
m3——上清液蛋白含量,mg/mL;
m4——脱脂后山核桃饼粕中的蛋白含量,mg/mL。
1.4 数据处理
每次试验重复3次,结果以珚x±s表示。运用SPSS 17.0进行统计分析,显著水平取P<0.05(差异显著);借助DPS 7.05进行二次正交旋转组合优化试验。
2 结果与分析
2.1 山核桃饼粕蛋白等电点分析
由图1可知,在浸提液pH为3.0~6.0时,随着pH的增加,蛋白的沉淀率呈先增后减的趋势,在pH为5.0时,沉淀率最大(P<0.05)。这与文献[8]报道的当pH 值在5.0时蛋白质沉淀迅速,离心后上清液清亮,效果较好的情况一致,故山核桃蛋白的等电点是pI为5.0。
图1 pH对蛋白沉淀率的影响Figure 1 Ettects of pH values on protein deposition rate
2.2 单因素试验结果
2.2.1 提取时间对山核桃饼粕蛋白质提取率的影响 由图2可知,随着提取时间的延长,山核桃饼粕蛋白的提取率逐渐增加;当提取时间为120min时,蛋白的提取率增幅趋于平缓(与150min时没有显著性差异,P>0.05)。故提取时间宜控制在120min左右。
图2 提取时间对提取率的影响Figure 2 Ettects of different extraction time on protein yield
2.2.2 提取温度对山核桃饼粕蛋白提取率的影响 由图3可知,随着提取温度的升高,蛋白质提取率呈先增后减的趋势,当提取温度为55℃时提取率达到最大值(P<0.05)。可能与蛋白质分子构象随着提取温度的升高而发生改变有关,提取温度的升高,促进了山核桃蛋白立体结构的伸展,使其在水分子的热运动下更易溶解[11];当提取温度过高时,使得维持蛋白质空间构象的次级键断裂,天然构象解体,蛋白变性,提取率降低[12]。故提取温度宜控制在55℃左右。
图3 提取温度对提取率的影响Figure 3 Ettects of different extraction temperature on protein yield
2.2.3 料液比对山核桃饼粕蛋白提取率的影响 由图4可知,当料液比≤1∶20(m∶V)时,蛋白提取率随其增大而增加(P<0.05),之后趋于稳定。可能是在较低料液比时,由于溶液的黏度较大,分子扩散速率较低,体系分散不均匀,导致体系中的蛋白溶出困难;随着液料比的增大,蛋白质更易溶出,因而提取率增加,直至其完全浸出,体系保持动态平衡,提取率不再改变[13]。故料液比宜控制在1∶20(m∶V)左右。
图4 料液比对提取率的影响Figure 4 Ettects of different extraction solid-liquid ratio on protein yield
2.2.4 pH值对山核桃饼粕蛋白质提取率的影响 由图5可知,当pH值为9.0时蛋白提取率最高(P<0.05),过高或者过低的pH值都不利于蛋白的提取。可能是蛋白的基本结构中含有氨基和羧基两种官能团,不同的pH环境会影响其存在的方式,进而改变溶出效果。并考虑到TP310型台式精密酸度计灵敏度的实际情况,确定后续试验提取液的pH 值为9.0。
图5 pH值对提取率的影响Figure 5 Ettects of different extraction pH on protein yield
2.3 二次正交旋转组合试验结果
二次正交旋转组合设计的因素水平安排及试验结果分别见表1、2。
表1 二次正交旋转组合设计因素水平表Table 1 Factors and code levels of quadratic orthogonal rotation combination design
表2 二次正交旋转组合试验结果Table 2 The test results of quadratic orthogonalrotation combination design
对试验结果进行拟合得到回归方程:
由表3可知,回归方程的失拟性检验F1=2.598 20<F0.01(5,8)=3.69不显著(P=0.076 8>0.05),说明所选的二次回归模型适当;回归显著性检验F2=6.253 04>F0.01(9,13)=4.17极显著(P=0.004 7<0.01),说明模型的预测值与实测值接近,模型成立[9]。在α=0.10显著水平剔除不显著项后,得到简化后的回归方程:
由式(4)的各项系数可知,对山核桃饼粕蛋白提取率影响较大的因素依次为X1(提取时间)>X3(料液比)>X2(提取温度),且这3因素之间不存在差异显著性(P<0.05)的两两交互作用,故未列出等高线及交互作用图。
由表4可知,在95%的置信区间内当提取时间为124~130min,提取温度为53~57℃,料液比为1∶22~1∶26(m∶V),pH值9.0时,山核桃蛋白的提取率较高。为节约生产成本,在实际应用中选定各因素的最低值,即提取时间124min,提取温度53℃,料液比1∶22(m∶V),并进行5次验证实验,其山核桃蛋白的平均提取率为(67.94±0.05)%,与预测最高值67.98%不存在显著性差异(P<0.05),说明拟合所得的回归方程能较好地指导山核桃蛋白的提取。
表3 试验结果方差分析Table 3 Variance analysis of test results
表4 各因素的频率分布Table 4 The probability distribution of values of each variable
3 结论
(1)山核桃蛋白的等点电为pI 5.0,这与文献[6]报道的(pI 4.5~5.5)结果相近,但在该等电点下的最大沉淀率仅为89.8%,要低于文献[6]报道的94.5%,可能是试验原料及蛋白质检测方法的差异造成的。由于本试验选用的考马斯亮蓝法极易受到样品中多糖等成分的干扰,所以其检测线性范围和结果的准确性均比文献[8]所用的双缩脲法差,下一步将针对此进行对比试验,以明确山核桃蛋白的等电点。
(2)山核桃蛋白的最佳提取条件为:pH 9.0,提取时间124min,提取温度53℃,料液比1∶22(m∶V),在该条件山核桃饼粕蛋白的平均提取率为(67.94±0.05)%,与预测的最高值67.98%不存在显著性差异(P<0.05)。考虑到考马斯亮蓝法仅能检测水溶性蛋白[14],故推测山核桃中的实际蛋白含量要高于该值,未来将借助于液相色谱等技术对其进行精确测定。
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