肠神经胶质细胞在胃肠道的新功能
2015-03-21杨艳华戴迟兵
杨艳华,戴迟兵
(三峡大学仁和医院消化内科,湖北 宜昌 443002)
肠神经胶质细胞在胃肠道的新功能
杨艳华,戴迟兵
(三峡大学仁和医院消化内科,湖北 宜昌 443002)
肠神经胶质细胞19世纪被发现是肠神经系统的主要组成部分,其形态类似于中枢神经系统中的星状胶质细胞,被称为雪旺式细胞,特异性表达星状胶质细胞同样的标记如:中间丝胶质纤维酸性蛋白GFAP、钙结合蛋白S100B。以及新的标记物核转录因子Sox8/9/10,有支持神经元的功能。在过去的观念中,肠神经胶质细胞被认为仅仅只是肠神经元的支持细胞。近年来的研究发现,在胃肠道内,肠神经胶质细胞是一个独特的外周神经胶质细胞类,分布于肠道全层,其分布不同的亚群代表其独特的不同功能,在消化系统疾病以及非消化系统疾病中发挥重要作用。尤其是在上皮屏障、神经保护、介导肠道炎症免疫中发挥重要作用。研究肠神经胶质细胞的多向性作用有助于揭示其重要特征,进而发现众多针对胃肠道疾病的靶向治疗方法。
肠神经系统;肠神经胶质细胞;胃肠道;肠上皮屏障;神经保护作用
稳态是由克劳德和沃尔特卡农提出的新概念,稳态是生命的基本原则,是指机体器官在应对环境挑战维持其功能的能力。胃肠道的稳态是一个复杂的相互作用的结果,由内腔(例如养分、微生物)和细胞(上皮细胞、免疫、肌肉、血管内皮)因子之间作为一种调节的神经内分泌机制以控制胃肠道稳态,肠道神经系统(Enteric nervous system,ENS)是人体的第二大神经系统,控制着肠道平衡,调节肠道功能如运动、营养吸收、免疫反应、血运等。肠神经系统包含超过1亿个神经元和4~10倍的神经胶质细胞,在过去几十年的研究,肠神经元控制胃肠道功能在健康和疾病状态的进展取得了重大进展,而近年来研究显示,肠神经胶质细胞在胃肠道疾病以及肠道稳态中发挥着核心作用。
1 肠神经系统概述
肠神经系统(ENS)来源于神经嵴细胞(NCC)[1]。在胚胎形成和发育过程中,通过众多信号通路的分子、转录因子、神经营养因子和细胞外基质成分控制下,沿着胃肠道广泛迁移,增殖、分化成胃肠神经元和神经胶质细胞[2-3]。肠神经系统主要由纵行肌、环形肌组成的神经丛及环形肌、黏膜层之间的黏膜下丛组成,ENS作为肠道固有的神经系统,因为其复杂性和自治性,独立控制胃肠功能而不依赖于中枢神经系统,常常被称为“二次脑功能”。ENS单独或与外源性神经元(如交感神经或非交感神经)共同作用,调节肠道的几乎所有功能,包括运动、营养物质的吸收、免疫反应及血运。因此,ENS功能的改变可影响肠道稳态进而导致肠道及肠道外疾病[4]。
2 EGCs概述
肠神经胶质细胞(EGCs)是肠神经系统的主要组成部分之一,EGCs分布于肠道全层、黏膜、黏膜下神经丛、肌间神经丛和肌层。主要在肠神经系统(ENS)的肌间和黏膜下丛的肠道神经节,与神经节交织成团并与节间神经束相互连接。近年来也发现在肠外,如圆形肌和胃黏膜固有层,这些不同的细胞群可能代表了独特种类和其不同的功能[5-7],黏膜的EGCs主要参与上皮屏障功能,神经节内的EGCs主要作用于神经修复,与神经元的密切互动,支持这些细胞和胶质细胞的分化、参与神经的发生和形成。而肌肉的肠神经功能未能发现,可能与神经纤维顺利通过平滑肌相关。研究发现EGCs在肠道微环境中呈现不同的形态特征,迄今为止分为四种形态类型[8-10]:Ⅰ型或“原浆“肠胶质细胞是星形神经节内胶质细胞,短,不规则分枝过程类似中枢神经系统的星形胶质细胞在中枢神经系统;Ⅱ型或“纤”的EGCs是细长神经胶质在神经节内纤维束,类似纤维性星形胶质细胞在中枢神经系统白质;Ⅲ型或黏膜的EGCs是上皮下的神经胶质细胞,有几个长分枝过程;Ⅳ型或肌肉的EGCs是细长的神经胶质细胞运行在肌肉组织的神经纤维。
3 黏膜的EGCs在肠上皮屏障功能的作用
肠上皮细胞构成天然的屏障功能在外部环境和宿主之间,它是由一个连续的单层肠上皮细胞保持形成通过细胞间的连接复合体在一起,包括紧密连接(TJ)、缝隙连接、粘附连接和桥粒[11],限制病原体,毒素和外源性化学物质对宿主肠道组织的侵犯。一旦这个屏障的完整性被破坏,炎症和组织损伤发起和延续。黏膜的EGCs位于上皮细胞的边缘,EGCs可以延伸细胞质侵入基底膜和渗透到上皮细胞与内分泌细胞尾肢接触[12]。黏膜的EGCs分泌的胶质源性物质如:proEGF、S-nitrosoglutathione、15d-PGJ2、TGF-β,以及神经营养因子GDNF对上皮细胞具有重要的意义,影响肠上皮细胞分化、粘附、迁移和增殖[13-17]。如同星状胶质细胞控制血管内皮细胞的粘附功能形成血脑屏障,EGCs也在上皮屏障功能中发挥着重要的作用[18-21]。
LPS是众所周知的是与肠道密切相关的病理过程可导致肠屏障破坏或慢性炎症,有研究发现在EGCS与肠上皮单层细胞共培养在LPS刺激下,EGCS通过上调肠上皮细胞紧密连接蛋白和TJ蛋白的表达与上皮细胞紧密连接在维持肠黏膜屏障中发挥着重要的作用。同时LPS显著促进EGCs表达iNOS,选择性iNOS抑制剂能明显提高在LPS刺激下的EGCS通过阻断EGCs衍生的iNOS活性发挥的屏障保护功能[22]。
目前实验和临床研究表明各种急性病理刺激如严重的创伤、失血性休克和内脏的缺血再灌注,可以诱导肠黏膜损伤及肠屏障功能的损失[23]。随着各种大手术、使用体外循环心脏手术、胸腹部血管手术、小肠移植的开展,急性肠IR刺激已经成为一个经常发生的现象,有很高的发病率和死亡率[24]。在肠道缺血缺氧再灌注的大鼠模型研究中,研究者发现缺血再灌注后,肠道高表达胶质细胞的特异标记物(GFAP)和胶质细胞源性神经营养因子(GDNF)促进肠上皮屏障的修复、高表达iNOS,同时选择性iNOS抑制剂也能显著提高EGCs通过阻断EGCs衍生的iNOS活性发挥的屏障保护功能。在缺血再灌注后,肠黏膜的EGCs同样通过上调肠上皮细胞紧密连接蛋白和TJ蛋白的表达与上皮细胞紧密连接在维持肠黏膜屏障中发挥着重要的作用[21]。
肠黏膜的EGCs在生理和病理(炎性刺激、应激刺激等)的微环境下,可以通过上调肠上皮细胞紧密连接蛋白和TJ蛋白的表达或是分泌神经源性物质来保护肠上皮屏障。
4 神经节内的EGCs神经保护或修复作用
近年来研究发现,EGCs中参与很多重要的作用如:释放神经活性物质(还原谷胱甘肽、ATP、15d-PGJ2),参与神经递质的前体的合成(L-精氨酸、谷氨酰胺合成酶、γ-氨基丁酸)和表达神经递质受体(P2Y1,2,4、α2-AR、mGLuR5、PAR1/2),隔离和降解细胞外神经活性物质(PEPT2、GAT2),参与神经胶质的活化与形成等,从而有助于神经元-胶质细胞的对话和神经传递。EGCs具有免疫特性[25],参与上皮屏障功能[13-17]和产生神经保护作用[26-27]。
EGCs在肠道介导的保护作用涉及不同的机制,包括:(1)谷胱甘肽依赖的途径。在神经元的胞外环境,EGCS通过合成和释放GSH调节的抗氧化反应(例如,清除H2O2)。在神经元的胞内环境,EGCS通过介导的部分L-PGDS和释放15d-PGJ2,增加了Nrf2和GCLC的释放表达,从而提高肠神经元GSH水平的表达。因此,EGCS直接或间接作用在肠道神经元调节中发挥核心作用。(2)EGCS释放肠道保护介质GDNF,通过磷脂酰肌醇-3-激酶/丝氨酸/苏氨酸蛋白激酶介导的(PI3K/AKT)减少细胞凋亡。(3) EGCS在细胞外环境阻碍兴奋性毒性去除GABA和Glu,通过不同的转运蛋白(GAT2;GLT1)去除GABA和Glu[28]。此后,谷氨酰胺合成酶(GS)在EGCS转换为谷氨酰胺谷氨酸(Gln),与半胱氨酸谷胱甘肽酶底物通过GCLC。最后,GABA能被转化为谷氨酸GABA转氨酶,参与神经递质前体的合成。
近几十年来的研究通过体内和体外实验来证实EGCs在神经元的保护作用。在体内研究中,在转基因小鼠敲除EGCs引发爆发性回肠炎,其联合产生机制可能是由于肠道运动受损(神经元丢失)、上皮细胞屏障的改变(EGCS直接敲除)和内腔的因素(如细菌过度生长)[29]。在GFAP-HA,CL4-TCR基因改造模型中,EGCs的选择性凋亡通过肠道炎症机制参与CD8+T细胞介导的细胞毒免疫反应[30]。在线粒体转录因子A基因敲除动物模型(TFAM),类似于人类假性肠梗阻,发生严重的肠道运动功能障碍与随之发生肠道神经元和EGCs的缺失。提示线粒体功能障碍在神经元和胶质细胞变性中起到了主要的作用[31]。这些研究结果表明,神经胶质细胞在调节ENS的可塑性和功能的发挥重要的作用。体外研究中,在神经元细胞系与EGCs的共培养模型中,用腺病毒转染大鼠的肠神经系统,肠神经元的特异性烯醇化酶的释放显著增加,并减少胡阳性神经元的表达。确定的GFAP和SOX10标记的EGCs出现了混乱和缺失[32]。这些数据表明EGCs参与了神经的形成与存活。EGCs释放的多种营养因子在神经元发育、存活和分化中起着重要的神经保护作用。EGCs介导多元化的保护机制在肠道中起着神经保护的作用。
5 肌肉层的EGCs
目前对肌肉的EGCs的研究比较有限,其形态细长运行在肌肉组织的神经纤维,可能与神经纤维顺利通过平滑肌层相关。嘌呤P2X7受体表达肌肉层。在TNBS造成的溃疡性结肠炎模型研究中,在溃疡性结肠炎组肌间神经丛免疫组化显示神经元P2X7受体密度下降,P2X7受体的存在EGCs,表明P2X7受体在胶质细胞发育的作用。在IBD患者中,肠神经元细胞死亡通过激活神经信号复杂的由P2X7受体(p2x7rs)-pannexin 1(Panx1)通道,随后肠动力异常,代表了一种新的保护策略在改善IBD相关运动功能障碍的进展[33-34]。
6 展望
尽管EGCs有不同的胚胎起源,且位于肠道不同的区域,但它们都有许多共同的特点,形态大部分类似于中枢神经系统中的星状胶质细胞,表达星状胶质细胞一样的特定标记物GFAP和S100B。在肠道不同分布的EGCs代表了其不同的亚群和所不同的独特功能,都在肠道内坏境稳态(运动、吸收、分泌、肠屏障功能)中发挥核心的作用,EGCs能差异性的应答不同微生物(益生菌、有害菌)的刺激,表达微生物的模式识别受体(如TLR2、TLR4等)提示EGCs是肠道菌群的主要靶细胞,在控制肠道微生物动力学,EGCs是直接或是中间作用细胞是未知的[35,37]。EGCs在响应于有害菌刺激,可以表达主要组织相容性复合体MHC classⅡ类分子和共刺激分子(cd80、Cd86)等,提示EGCs在介导肠道免疫发挥着重要的作用[25,36]。深入研究了解微生物和EGCs间的相互影响和作用,揭示共生微生物与人类宿主的神经和免疫系统的联系,有助于阐明其发病机制和致病性,为胃肠道疾病提供新的治疗策略。
[1]Lake JI,Heuckeroth RO.Enteric nervous system development:migration,differentiation,and disease[J].Am J Physiol Gastrointest Liver Physiol,2013,305:G1-G24.
[2]Watanabe Y,Broders-Bondon F,Baral V,et al.Sox10 and Itgb1 interaction inentericneural crestcellmigration[J].Dev Biol,2013,379 (1):92-106.
[3]Akbareian SE,Nagy N,Steiger CE,et al.Entericneural crest-derived cells promote theirmigrationby modifying their microenvironment through tenascin-C production[J].Dev Biol,2013,382(2): 446-456.
[4]Goldstein AM,Hofstra RM,Burns AJ.Building a brain in the gut: developmentof theenteric nervous system[J].Clin Genet,2013,83 (4):307-316.
[5]D Dulac C,Le Douarin NM.Phenotypic plasticity of Schwann cells and enteric glial cells in response to the microenvironment[J].Proc NatlAcad Sci USA,1991,88(14):6358-6362.
[6]Jessen KR,Mirsky R.Astrocyte-like glia in the peripheral nervous system:an immunohistochemical study of enteric glia[J].J Neurosci,1983,3(11):2206-2218.
[7]De Giorgio R,Giancola F,Boschetti E,et al.Enteric glila and neuroprotection:basic and clinical aspects[J].Am J Physiol Gastrointest Liver Physiol,2012,303(8):G887-893.
[8]Hanani M,Reichenbach A.Morphology of horseradish peroxidase (HRP)-injected glial cells in the myenteric plexus of the guinea-pig [J].Cell Tissue Res,1994,278(1):153-160.
[9]Chen H,Redelman D,Ro S,et al.Selective labeling and isolation of functional classes of interstitial cells of Cajal of human and murine small intestine[J].Am J Physiol Cell Physiol,2007,292(1):C497-507.
[10]Gulbransen BD,Sharkey KA.Novel functional roles for enteric glia in the gastrointestinal tract[J].Nat Rev Gastroenterol Hepatol, 2012,9(11):625-632.
[11]Groschwitz KR,Hogan SP.Intestinal barrier function:molecular regulation and disease pathogenesis[J].J Allergy Clin Immunol, 2009,124(1):3-20.
[12]Bohórquez DV,SamsaL A,Roholt A,et al.An enteroendocrine cell-enteric glia connection revealed by 3D electron microscopy[J]. PLoS One,2014,9(2):e89881.
[13]Savidge TC,Newman P,Pothoulakis C,et al.Enteric glia regulate intestinal barrier function and inflammation via release of S-nitrosoglutathione[J].Gastroenterology,2007,132(4):1344-1358.
[14]Bach-Ngohou K,Mahé MM,Aubert P,et al.Enteric glia modulate epithelial cell proliferation and differentiation through 15-deoxy-12, 14-prostaglandin J2.J[J].J Physiol,2010,588(Pt 14):2533-2544.
[15]Neunlist M,Aubert P,Bonnaud S,et al.Enteric glia inhibit intestinal epithelial cell proliferation partly through a TGF-β1-dependent pathway[J].Am J Physiol Gastrointest Liver Physiol,2007,292(1): G231-241.
[16]Van Landeghem L,Chevalier J,Mahé MM,et al.Enteric glia promote intestinal mucosal healing via activation of focal adhesion kinase and release of proEGF[J].Am J Physiol Gastrointest Liver Physiol,2011,300(6):G976-987.
[17]Van Landeghem L,Mahé MM,Teusan R,et al.Regulation of intestinal epithelial cells transcriptome by enteric glial cells:impact on intestinal epithelial barrier functions[J].BMC Genomics,2009,10:507.
[18]Jiang S,Khan MI,Lu Y,et al.Acceleration of blood-brain barrier formation after transplantationof enteric glia into spinal cords of rats[J].Exp Brain Res,2005,162(1):56-62.
[19]Abbott NJ,Rönnbäck L,Hansson E.Astrocyte-endothelial interactions at the blood-brain barrier[J].Nat Rev Neurosci,2006,7(1): 41-53.
[20]Savidge TC,Sofroniew MV,Neunlist M.Starring roles for astroglia in barrier pathologies of gut and brain[J].Lab Invest,2007,87(8): 731-736.
[21]Xiao W,Wang W,Chen W,et al.GDNF is involved in the barrier-inducing effect of enteric glial cells on intestinal epithelial cells under acuteischemia reperfusion stimulation[J].Mol Neurobiol,2014,50 (2):274-289.
[22]Xiao WD,Chen W,Sun LH,et al.The protective effect of enteric glial cells on intestinal epithelial barrier function is enhanced by inhibiting induciblenitric oxide synthase activity under lipopolysaccharide stimulation[J].Mol Cell Neurosci,2011,46(2):527-534.
[23]Lu YZ,Wu CC,Huang YC,et al.Neutrophil priming by hypoxic preconditioning protects against epithelial barrier damage and enteric bacterial translocation in intestinal ischemia/reperfusion[J].Lab Investig,2012,92(5):783-796.
[24]Lenaerts K,Ceulemans LJ,Hundscheid IH,et al.New insights in intestinal ischemia-reperfusion injury:implications for intestinal transplantation[J].Curr OpinOrgan Transplant,2013,18(3):298-303.
[25]da Silveira AB,de Oliveira EC,Neto SG,et al.Enteroglial cells act as antigen-presenting cells in chagasic megacolon[J].Hum Pathol, 2011,42(4):522-532.
[26]Korsak K,Dolatshad NF,Silva AT,et al.Ageing of enteric neurons: oxidative stress,neurotrophic factors and antioxidant enzymes[J]. Chem Cent J,2012,6(1):80.
[27]Steinkamp M,Gundel H,Schulte N,et al.GDNF protects enteric glia from apoptosis:evidence for an autocrine loop[J].BMC Gastroenterol,2012,12:6.
[28]De Giorgio R,Giancola F,Boschetti E,et al.Enteric glia and neuroprotection:basic and clinical aspects[J].Am J Physiol Gastrointest Liver Physiol,2012,303(8):G887-893.
[29]Bush TG,Savidge TC,Freeman TC,et al.Fulminant jejuno-ileitis following ablation of enteric glia in adult transgenic mice[J].Cell, 1998,93(2):189-201.
[30]Cornet A,Savidge TC,Cabarrocas J,et al.Enterocolitis induced by autoimmune targeting of enteric glial cells:a possible mechanism in Crohn's disease?[J].Proc Natl Acad Sci USA,2001,98(23): 13306-13311.
[31]Viader A,Wright-Jin EC,Vohra BP,et al.Differential regional and subtype-specific vulnerability of enteric neurons to mitochondrial dysfunction[J].PLoS One 6:e27727.
[32]Abdo H,Derkinderen P,Gomes P,et al.Enteric glial cells protect neurons from oxidative stress in part via reduced glutathione[J]. FASEB J,2010,24(4):1082-1094.
[33].Silva MV,Marosti AR,Mendes CE,et al.Differential effects of experimental ulcerative colitis on P2X7 receptor expression in enteric neurons[J].Histochem Cell Biol,2015,143(2):171-184.
[34]Gulbransen BD,Bashashati M,Hirota SA,et al.Activation of neuronal P2X7 receptor-pannexin-1 mediates death of enteric neurons during colitis[J].Nat Med,2012,18(4):600-604.
[35]Turco F,Sarnelli G,Cirillo C,et al.nteroglial-derived S100B protein integrates bacteria-induced Toll-like receptor signalling in human enteric glialcells[J].Gut,2014,63(1):105-115.
[36]Cirillo C,Sarnelli G,Turco F,et al.Proinflammatory stimuli activates human-derived enteroglial cells and induces autocrine nitric oxide production[J].Neurogastroenterol Motil,2011,23(9):e372-382.
[37]Kabouridis PS,Lasrado R,McCallum S,ea tl.Microbiota controls the homeostasis of glial cells in the gut lamina propria[J].Neuron, 2015,85(2):289-295.
R338
A
1003—6350(2015)24—3665—04
10.3969/j.issn.1003-6350.2015.24.1321
2015-04-12)
三峡大学人才基金(编号:KJ2012B087)
戴迟兵。E-mail:dchibingi@126.com