APP下载

补体旁路激活致内皮细胞纤溶凝血相关分子表达变化及干预研究

2015-02-26路青瑜孙黔云

中国药理学通报 2015年8期
关键词:白藜芦醇补体纤溶

路青瑜,李 敏,孙黔云

(1.贵州大学药学院,贵州贵阳 550025;2.贵州省中国科学院天然产物化学重点实验室,贵州贵阳 550002;3.贵州省人民医院干医科,贵州贵阳 550002)

补体旁路激活致内皮细胞纤溶凝血相关分子表达变化及干预研究

路青瑜1,2,李 敏3,孙黔云2

(1.贵州大学药学院,贵州贵阳 550025;2.贵州省中国科学院天然产物化学重点实验室,贵州贵阳 550002;3.贵州省人民医院干医科,贵州贵阳 550002)

中国图书分类号:R322.12;R284.1;R329.2;R341;R392.11;R973.2

摘要:目的 研究补体旁路激活致微血管内皮细胞纤溶凝血相关分子表达的变化及干预。方法 采用眼镜蛇毒因子激活血清补体旁路途径。将旁路活化的血清作用于人微血管内皮细胞,通过ELISA检测多个时间点细胞培养上清中P-selectin、VWF、t-PA、PAI-1、TF、TM的表达,采用NO试剂盒检测NO水平,并进一步研究吡咯烷二硫氨基甲酸(PDTC)、白藜芦醇对以上指标变化的影响。结果 微血管内皮细胞经补体旁路活化产物刺激后,P-selectin、VWF的表达快速上调,其高峰时间为15 min,而纤溶功能分子t-PA、PAI-1也随后出现持续上调表达,与凝血功能相关的组织因子TF的表达水平持续上调,而血栓蛋白TM及NO的表达下降。PDTC、白藜芦醇对P-selectin、VWF、t-PA、PAI-1、TF上调表达具有抑制作用,对NO下调表达具有干预作用。而白藜芦醇能使TM的表达进一步下调。结论 补体旁路活化产物会导致微血管内皮细胞纤溶凝血功能相关分子表达的变化,而PDTC、白藜芦醇对此种变化具有一定的影响。

关键词:补体;补体旁路活化;内皮细胞;纤溶;凝血;PDTC;白藜芦醇

网络出版时间:2015-7-22 10:42 网络出版地址:http://www.cnki.net/kcms/detail/34.1086.R.20150727.0901.025.html

在脓毒症、急性肺损伤、缺血/再灌注损伤、多器官功能衰竭等临床急危重症与病理损伤中往往伴随有纤溶凝血功能的改变和失调以及广泛的微血栓形成。而这些病理变化与内皮细胞(endothelial cells,EC)功能受损密切关联。近年来研究表明,补体在上述临床急危重症与病理损伤中扮演了重要的角色[1-2]。补体旁路活化会造成微血管内皮细胞的活化,表达黏附分子和炎症介质,从而可能导致炎症和组织损伤[3-4]。本文研究了补体旁路激活对微血管内皮细胞纤溶凝血功能相关分子表达的变化及PDTC、白藜芦醇的干预作用。

1 材料与方法

1.1材料 人微血管内皮细胞(human microvascu-lar endothelial cells,HMEC)由本实验室传代培养;RPMI 1640培养基购自Gibco;胎牛血清(fetal bovine serum,FBS)为天津灏洋生物制品科技有限公司产品;人P-selectin检测ELISA试剂盒购自武汉博士德生物工程有限公司;人VWF(von Willebrand factor)、

t-PA(tissue plasminogen activator)、PAI-1(plasmino-gen activator inhibitor)、TF(tissue factor)检测ELISA试剂盒购自美国Assaypro公司;人TM(thrombomod-ulin)试剂盒购自上海鑫乐生物科技有限公司;NO (nitric oxide)试剂盒购自碧云天生物技术公司;吡咯烷二硫氨基甲酸(pyrrolidine dithiocarbamate,PDTC)、白藜芦醇(resveratrol,Res)购自美国Sigma公司;正常人血清(normal human serum,NHS)由本实验室多名健康志愿者献血制备而成,分装后冻存于-80℃,经补体活性检测正常,备用;灭活人血清(inactivated normal human serum,INHS)由NHS于56℃孵育30 min而得;眼镜蛇毒因子(cobra venom factor,CVF)的制备和激活补体活性测定同文献[5];其余试剂均为符合实验要求的分析纯。

1.2仪器 Forma 3111型CO2培养箱(美国Ther-mo公司);Nikon TS100倒置相差显微镜(日本Ni-kon公司);Milli Q超纯水系统和Elix纯水系统(美国Millipore公司);Molecular Devices Spectra MAX-190酶标仪(美国MD公司);5810R冷冻离心机(德国Eppendorf公司);Revco超低温冰箱(美国Thermo公司)。

1.3方法

1.3.1内皮细胞培养 人微血管内皮细胞株HMEC由本实验室传代培养,用含20%胎牛血清的RPMI 1640培养基在37℃、5%CO2饱和湿度培养箱内培养,收集对数生长期细胞进行实验。

1.3.2血清活化 参照前期已发表文献[3]的方法,将NHS与CVF(6.5×104U·L-1)等体积混合,在37℃水浴孵育30 min制成CAC(CVF-actived complement)备用。实验以INHS与CVF的孵育混合物作为对照。

1.3.3CAC对HMEC纤溶凝血相关蛋白分子表达的影响 将HMEC以1×104cells·well-1,接种于96孔细胞培养板,培养24 h后弃上清,加入140 μL无血清RPMI 1640培养基,再加入60 μL CAC至200 μL,分别孵育不同时间,取5、15、30、60 min上清测定P-selectin、VWF,取1、6、12、24 h上清测定t-PA、PAI-1、TF、TM,上述各指标的测定均按照试剂盒说明书进行。实验同时设置灭活血清对照组及血清本底对照组(negative control,NC)。

1.3.4CAC对HMEC表达NO的影响 将HMEC 以1×105cells·well-1,接种于24孔细胞培养板,培养24 h后弃上清,后续操作同“1.3.3”,分别孵育12、24、48 h,取上清按试剂盒说明书步骤测定NO。

1.3.5PDTC、Res对CAC刺激HMEC表达P-selec-tin、VWF、t-PA、PAI-1、TF、TM变化的影响 将HMEC以1×104cells·well-1,接种于96孔细胞培养板,培养24 h后弃上清,分别加入含不同浓度PDTC、Res的无血清RPMI 1640培养基140 μL预处理细胞1 h,再加入60 μL CAC,37℃孵育不同时间取上清检测P-selectin、VWF、t-PA、PAI-1、TF、TM。

1.3.6PDTC、Res对CAC刺激HMEC表达NO的影响 将HMEC以1×105cells·well-1,接种于24孔细胞培养板,培养24 h后弃上清,后续操作同1.3.5,37℃孵育48 h,取上清测定NO。

2 结果

2.1CAC对HMEC纤溶凝血相关分子表达的影响

2.1.1CAC对HMEC表达P-selectin、VWF的影响补体旁路活化产物CAC刺激HMEC后能使P-se-lectin、VWF的表达瞬时上调。P-selectin的表达变化与之前研究结果[3]类似,在5 min即有明显上调,15 min时达到峰值(数据未列出)。而VWF的表达高峰在15 min,但在5 min时基本没变化(Fig 1)。

2.1.2CAC对HMEC表达t-PA、PAI-1的影响CAC刺激HMEC后,t-PA、PAI-1的表达均持续上调(数据未列),与之前研究结果[6]类似。其中,24 h时间点刺激组t-PA为(1.941±0.468)μg·L-1,对照组t-PA为(1.185±0.179)μg·L-1,两者的差异具有统计学意义(P<0.05)。刺激组t-PA/PAI-1比值在1 h时间点有一个明显的上调(P=0.06)(Fig 2)。

Fig 1 Expression of VWF after HMEC exposure to CAC(n=4)

Fig 2 Expression of t-PA and PAI-1 after HMEC exposure to CAC(n=4)

2.1.3CAC对HMEC表达TF、TM、NO的影响CAC刺激HMEC后,TF的表达持续上调,TM的表达在6 h时间点后下调(Fig 3)。而刺激组NO的表达下调(数据未列),与之前研究结果[3]类似。其中,48 h刺激组NO浓度为(2.297±0.650)μmol· L-1,对照组NO浓度为(4.966±1.823)μmol·L-1,两者的差异具有统计学意义(P<0.05)。

2.2PDTC和Res对HMEC纤溶凝血相关分子表达变化的影响

2.2.1PDTC和Res对HMEC表达P-selectin、VWF的影响 PDTC和Res对CAC刺激HMEC表达P-se-lectin、VWF均具有干预作用(Fig 4)。其中,高浓度的PDTC和3个浓度的Res对P-selectin的表达具有明显抑制作用(P<0.05或P<0.01),而低剂量的PDTC对VWF表达具有明显抑制作用(P<0.05)。

Fig 3 Expression of TF and TM after HMEC exposure to CAC(n=4)

Fig 4 Effect of PDTC and Res on expressions of P-selectin and VWF after HMEC exposure to CAC(n=4)

Fig 5 Effect of PDTC and Res on expressions of t-PA and PAI-1 after HMEC exposure to CAC(n=4)

2.2.2PDTC和Res对HMEC表达t-PA、PAI-1的影响 PDTC和Res对补体活化产物CAC刺激HMEC表达t-PA、PAI-1均具有干预作用(Fig 5)。其中,Res对t-PA表达的上调具有明显的抑制作用(P<0.01),中、高剂量的PDTC对PAI-1上调表达具有明显的抑制作用(P<0.05),Res能明显抑制t-PA/PAI-1比值的上调(P<0.01)(Fig 5)。

2.2.3PDTC和Res对HMEC表达TF、TM和NO的影响 PDTC和Res对CAC刺激HMEC上调表达TF具有抑制作用。低剂量的Res能明显促进TM的下调表达(P<0.05)。高剂量的PDTC及3个浓度的Res对NO的下调表达有明显干预作用(P<0.01)(Fig 6)。

3 讨论

本研究采用CVF激活补体旁路途径来刺激微血管内皮细胞。CVF是从眼镜蛇毒中分离纯化出来的一种高度特异的补体旁路激活蛋白,与补体C3b有高度的同源性,其在血清中能与B因子特异结合,经过D因子识别和酶切,进而形成的C3/C5转化酶CVF·Bb可持续激活补体旁路,产生C3a、C3b、C5a以及攻膜复合物等多种活化产物。

Fig 6 Effect of PDTC and Res on expressions of TF,TM and NO after HMEC exposure to CAC(n=4)

研究结果显示,内皮细胞受到CAC刺激后,P-selectin、VWF表达瞬时上调,且均在15 min时达到峰值,但P-selectin的表达在5 min时明显上调,而此时VWF的表达基本未变化。P-selectin、VWF分别作为内皮细胞活化及内皮细胞受损的标志,均位于内皮细胞的Weibel-Palade内,以上结果提示两者的释放调控机制存在差异。纤溶功能相关指标t-PA、PAI-1明显上调,t-PA/PAI-1比值在1 h明显升高,提示纤溶功能的改变,而我们之前的研究也表明补体旁路的激活会导致内皮细胞纤溶功能分子的变化[6]。生理条件下,t-PA与PAI-1按1∶1形成稳定的复合物,当受到炎症分子等的刺激时,纤溶局部功能失调,引起血栓形成。因此,上述实验结果提示了CAC刺激HMEC可能会导致纤溶功能的失调。组织因子TF是凝血因子VII/VIIa的受体和辅助因子,具有激活凝血因子、促进血小板聚集等功能。在本研究中,TF的表达持续上调,提示了细胞表面凝血功能的变化。TM是细胞表面蛋白C抗凝血系统的重要组成成份,可作为血管内皮损伤的分子标记物[7-9]。有研究表明低密度脂蛋白、同型半胱氨酸处理内皮细胞后TM的表达会上调[10-11]。而本实验中TM的表达下调,这提示了内皮细胞表面抗凝血功能的下降。同时,内皮细胞分泌NO明显减少。NO是体内重要的信号及功能分子,与炎症、凝血密切相关,其表达的变化是内皮细胞功能失调的重要标志[12]。以上结果表明,补体旁路激活会导致内皮细胞纤溶凝血相关分子表达的变化,从而可能导致微血管内皮细胞纤溶凝血功能的失调。

PDTC和Res的干预实验表明,其对P-selectin、 VWF、t-PA、PAI-1、TF上调表达具有抑制作用,对NO下调表达具有干预作用。值得注意的是,Res对TM的下调表达具有促进作用。PDTC是NF-κB的特异抑制剂,能够通过阻止Iκb的磷酸化降解,阻碍NF-κB的p65、p50亚基向细胞核内转移等多种途径抑制NF-κB的活化,进而抑制炎症分子的表达。而Res对NF-κB及NADPH氧化酶的活化具有抑制作用[13],从而能够明显对抗氧化应激造成的损伤。本研究中,PDTC、Res对微血管内皮细胞纤溶凝血相关分子的表达变化具有一定的影响,总体上评价,Res的作用优于PDTC。上述研究结果为深入开展相关的调控机制及干预研究提供了线索和参考。

本研究表明,补体旁路激活会导致微血管内皮细胞纤溶凝血相关分子的表达变化及潜在的功能失调,而PDTC、白藜芦醇对此种变化具有一定的干预作用,这有助于进一步认识炎症情况下纤溶凝血功能改变的发生机制,并能为临床治疗新策略及新药的筛选和研发提供参考依据和适宜的细胞模型。

(致谢:本文实验是在贵州省中国科学院天然产物化学重点实验室药理与活性筛选中心孙黔云研究员实验室完成。)

参考文献:

[1] Karpman D,Tati R.Complement activation in thrombotic microan-giopathy[J].Hamostaseologie,2013,33(2):96-104.

[2] Ricklin D,Hajishengallis G,Yang K,Lambris J D.Complement:A key system for immune surveillance and homeostasis[J].Nat Immunol,2010,11(9):785-97.

[3] 孙黔云,李 敏,叶巧玲,李红玲.补体旁路激活导致内皮细胞的活化和损伤[J].中国药理学通报,2012,28(7):925-9.

[3] Sun Q Y,Li M,Ye Q L,Li H L.Endothelial cell activation and injury induced by complement alternative pathway[J].Chin Phar-ma Bull,2012,28(7):925-9.

[4] 李红玲,孙黔云,李 敏,石京山.补体旁路激活产物刺激内皮细胞NF-κB、p38MAPK、JAK2通路活化及抑制剂的干预研究[J].中国细胞生物学学报,2013,35(6):836-41.

[4] Li H L,Sun Q Y,Li M,Shi J S.Activation of NF-κB,p38MAPK,and JAK2 in endothelial cells induced by activated complement alternative pathway and intervention by inhibitors[J].Chin J Cell Biol,2013,35(6):836-41.

[5] 孙黔云,叶巧玲,闫银萍.小鼠血清补体替代途径溶血活性测定的新方法[J].中国药理学通报,2011,27(11):1619-22.

[5] Sun Q Y,Ye Q L,Yan Y P.A new method for measurement of the alternative pathway activity of mouse serum complement[J].Chin Pharmacol Bull,2011,27(11):1619-22.

[6] 蒿雨露,孙黔云,李 敏.补体旁路激活对内皮细胞纤溶功能的影响[J].中国药理学通报,2012,28(12):1272-3.

[6] Hao Y L,Sun Q Y,Li M.Effect of complement alternative path-way activation on the fibrinolytic activity of endothelium cells[J].Chin Pharmacol Bull,2012,28(12):1272-3.

[7] Aso Y,Inukai T,Takemura Y.Mechanisms of elevation of serum and urinary concentrations of soluble thrombomodulin in diabetic patients:possible application as a marker for vascular endothelial injury[J].Metabolism,1998,47(3):362-5.

[8] Boffa M C,Karmochkine M.Thrombomodulin:an overview and po-tential implications in vascular disorders[J].Lupus,1998,7 (Suppl 2):S120-5.

[9] Wenzel J,Assmann J C,Schwaninger M.Thrombomodulin-a new target for treating stroke at the crossroad of coagulation and inflam-mation[J].Curr Med Chem,2014,21(18):2025-34.

[10]胥学伟,李小鹰,郑延松,詹晓蓉.低密度及氧化低密度脂蛋白对内皮细胞表达血栓调节蛋白的影响[J].中国微循环,2004,8(3):143-5.

[10]Xu X W,Li X Y,Zheng Y S,Zhan X R.Effect of low density lipoprotein and oxidized low density lipoprotein on the synthesis of thrombomodulin in cultured endothelial cells[J].Chin Microcir-cul Jun,2004,8(3):143-5.

[11]郑延松,郑秋甫,胥学伟,詹小荣.同型半胱氨酸对血管内皮细胞表达血栓调节蛋白的影响[J].军医进修学院学报,2004,25(4):272-4.

[11]Zheng Y S,Zheng Q P,Xu X W,Zhan X R.Effects of homocys-teine on the expression of thrombomodulin in human endothelial ECV 304 cells[J].Acad J PLA Postgrad Med Sch,2004,25 (4):272-4.

[12]Gkaliagkousi E,Ferro A.Nitric oxide signalling in the regulation of cardiovascular and platelet function[J].Front Biosci(Land-mark Ed),2011,16:1873-97.

[13]Ma T,Tan M,Yu J,Tan L.Resveratrol as a therapeutic agent for alzheimer's disease[J].Biomed Res Int,2014,2014:350516.

Expression of coagulation-and fibrinolysis-related molecules of endothelial cells induced by activated complement alternative pathway and intervention

LU Qing-yu1,2,LI Min3,SUN Qian-yun2
(1.College of Pharmacy,Guizhou University,Guiyang 550025,China;2.Key Laboratory of Chemistry for Natural Products,Guizhou Province and Chinese Academy of Sciences,Guiyang 550002,China;3.General Ward,Guizhou Provincial People’s Hospital,Guiyang 550002,China)

Abstract:Aim To investigate the change of molecu-lar expression related to coagulation and fibrinolysis in human microvascular endothelial cells(HMEC)in-duced by activated complement alternative pathway and effect of pyrrolidine dithiocarbamate(PDTC)and res-veratrol on intervention.Methods Normal human se-rum was activated by cobra venom factor(CVF).After exposure of HMEC to activated complement for various times,supernatant was removed and assayed for ex-pressions of P-selectin,VWF,t-PA,PAI-1,TF,TM,and NO by using reagent kits.The expressions of the above molecules in HMEC pretreated with PDTC and resveratrol were also investigated.Results P-selectin and VWF were rapidly released by endothelial cells and the expression reached the peak at the time point of 15 min.The expressions of t-PA,PAI-1,and TF were continuously upregulated,whereas NO and TM were decreased.PDTC and resveratrol inhibited the upregulation of P-selectin,VWF,t-PA,PAI-1 and TF,and intervened the downregulation of NO.Res-veratrol further downregulated the expression of TM.Conclusion Activated complement alternative path-way can influence the expression of molecules related to coagulation and fibrinolysis in HMEC,and PDTC and resveratrol can affect this change.

Key words:complement;activation of the complement alternative pathway;endothelial cells;fibrinolysis;co-agulation;PDTC;resveratrol

作者简介:路青瑜(1988-),女,硕士生,研究方向:天然药物成分及生理活性,E-mail:756291505@qq.com;孙黔云(1968-),男,博士,研究员,硕士生导师,研究方向:生化药理学与新药发现,通讯作者,Tel:0851-83805095,Fax:0851-83805081,E-mail:sunqy@hotmail.com

基金项目:国家自然科学基金资助项目(No 31060124、81260494);贵州省优秀科技教育人才省长专项资金项目(黔省专合字2006-65号和2012-9号)

收稿日期:2015-05-29,修回日期:2015-06-27

文献标志码:A

文章编号:1001-1978(2015)08-1142-05

doi:10.3969/j.issn.1001-1978.2015.08.023

猜你喜欢

白藜芦醇补体纤溶
纤维蛋白原联合D二聚体检测对老年前列腺增生术后出血患者纤维蛋白溶解亢进的应用价值
白藜芦醇改善高糖引起肾小球系膜细胞损伤的作用研究
补体因子H与心血管疾病的研究进展
抗dsDNA抗体、补体C3及其他实验室指标对于诊断系统性红斑狼疮肾损伤的临床意义
不同疾病活动度系统性红斑狼疮患者血清β2-微球蛋白、肌酐、白蛋白、补体C3及补体C4水平变化及临床意义
加热酶催化法提取葡萄皮中白藜芦醇的改进研究
流感患儿血清免疫球蛋白及补体的检测意义
白藜芦醇,到底是何方神圣?
骨折患者术前凝血及纤溶功能对术后血栓栓塞症的风险预测
肌动蛋白清除系统与凝血—纤溶系统在子痫前期患者外周血中的变化