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EBV-CTL治疗异基因造血干细胞移植后难治性EB病毒感染的分析*

2015-01-07缪晓娟孙浩平范方毅何光翠赖思含侯严堂李业成

重庆医学 2015年29期
关键词:难治性外周血淋巴细胞

缪晓娟,杨 慧,孙浩平,付 利,范方毅,王 译,何光翠,赖思含,侯严堂,李业成,易 海,苏 毅

(成都军区总医院血液科,成都 610083)

·经验交流·

EBV-CTL治疗异基因造血干细胞移植后难治性EB病毒感染的分析*

缪晓娟,杨 慧,孙浩平,付 利,范方毅,王 译,何光翠,赖思含,侯严堂,李业成,易 海△,苏 毅

(成都军区总医院血液科,成都 610083)

目的研究EB病毒特异性细胞毒T淋巴细胞(EBV-CTL)治疗异基因造血干细胞移植后难治性EBV感染的疗效。方法报道4例EBV-CTL治疗异基因造血干细胞移植后难治性EBV感染病例并结合文献分析。结果3例取得了较好疗效,分别于治疗后1、2、3个月转阴,分别随访8、12、6个月未复发,仅有1例在EBV-DNA转阴后第6个月复发,再次EBV-CTL治疗后,迅速进展为移植后淋巴细胞增殖性疾病(PTLD),治疗无效死亡。结论EBV-CTL是治疗难治性EBV感染的一种有效手段,但仍有部分病例治疗无效,值得进一步探讨和研究。

疱疹病毒4型,人;特异性细胞毒T淋巴细胞;异基因造血干细胞移植

EB病毒(EBV)感染是异基因造血干细胞移植(allo-HSCT)后常见并发症,通常采用减停免疫抑制剂、抗病毒药物和CD20单克隆抗体(利妥昔单抗)治疗,部分病例病情可以得到有效控制,但仍有部分病例病情进展,成为难治性EBV感染,甚至可发展成移植后淋巴细胞增殖性疾病(post-transplantlymphoproliferativedisease,PTLD)[1]。因此,如何治疗常规治疗无效的难治性EBV感染仍是亟待解决的问题。近年来EBV特异性细胞毒T淋巴细胞(EBV-CTL)为这一感染提供了新的治疗手段[2]。本文采用EBV-CTL治疗4例allo-HSCT后难治性EBV感染,获得了较好的疗效,现报道如下。

1 资料与方法

1.1 一般资料 收集2012年1月至2014年12月共4例患者,其中男1例,女3例;平均年龄(14.0±11.6)岁;1例再生障碍性贫血,2例复发难治急性髓系白血病,1例复发难治急性淋巴细胞白血病。

1.2 EBV-CTL的制备方法 主要试剂与仪器:RPMI1640细胞培养基、重组人粒细胞巨噬细胞集落刺激因子(rhGM-CSF)、重组人白细胞介素(rhIL)4、rhIL-7、rhIL-12、rhIL-15购于PEPROTECH公司,rhIL-2购于江苏金丝利公司,淋巴分离液(Ficoll1.077)购于天津斯坦姆生物科技有限公司,PepMix.EBV购于JPT公司,PGE2购于SIGMA公司,血细胞分离机购于费森尤斯公司。制备方法:(1)常规使用血细胞分离机分离血细胞悬液。(2)将分离好的血细胞悬液与生理盐水按照1∶1等量混匀,2 000 r/min离心15 min,弃去上清液。(3)抽取适量淋巴分离液(Ficoll1.077),将弃去上清液的细胞液与生理盐水按照1∶1等量混匀,再缓缓加入Ficoll上层,2 000 r/min离心20 min。(4)弃上清液,收集PBMC层液至离心管中,加入生理盐水30 mL混匀,1 500 r/min离心5 min,弃去上清液,重复3次后计数。(5)用RPMI1640完全培养基重悬细胞于75 cm2培养瓶,放置37 ℃,5% CO2孵箱内培养24 h,将悬浮细胞(制备CTL)与贴壁细胞(制备DC)分开培养,悬浮细胞内加入rhIL-2、rhIL-15、rhIL-7、rhIL-12,贴壁细胞内加入GM-CSF、rhIL-4。D6:DC内加入PGE2,D7:DC内加入Pepmix.EBV,4 h后加入CTL中并继续培养3~5 d,后收集细胞,台盼蓝染色,并做流式检测,输注前常规进行微生物学送检,确保无污染后输注患者。

1.3 EBV-CTL输注 输注CTL前给予地塞米松2.5 mg静推;EBV-CTL输注总量为(5.0~11.5)×106/kg,输注时间为0.5 h,共4 d,1次/月。

1.4 患者随访 监测EBV-DNA定量(通过实时荧光定量PCR方法检测外周血EBV-DNA,拷贝数小于103为阴性),1次/2周。

2 结 果

2.1 EBV-CTL制备产品的检测 采用流式分析所得EBV-CTL CD3+细胞中位数为92.9%(88.4%~94.6%),其中CD8+细胞占83.6%(76.5%~95.2%),CD4+细胞占8.8%(2.6%~11.7%),而CD56+的NK细胞占6.3%(3.2%~10.9%),CD19+的B细胞占0.4%(0.2%~0.8%)。

2.2 治疗结果 病例1,女,7岁。诊断:重型再生障碍性贫血。移植前外周血EBV情况:阴性。预处理方案:氟达拉滨+ATG+环磷酰胺。移植方式:母供女(7/10)半相合allo-HSCT。移植后给予常规口服环孢素预防移植物抗宿主病(GVHD)。84 d后,患者出现反复低热,体温38 ℃左右,伴咳嗽咳痰,外周血查EBV-DNA定量:4.23×104copy/mL,考虑移植后EBV感染。立即将环孢素减量,给予阿昔洛韦200 mg 8 h 1次静脉滴注及人免疫球蛋白5 g 每周1次静脉滴注,2周后无好转,给予利妥昔单抗(美罗华)100 mg静脉滴注 1次/周,4周后患者仍间断低热,咳嗽咳痰症状无明显好转,复查EBV-DNA进行性升高至2.35×105copy/mL。考虑为难治性EBV感染,给予EBV-CTL治疗1次/月,输注1次后患者体温基本恢复正常,咳嗽咳痰基本缓解,EBV-DNA明显下降,输注第2次后,EBV-DNA转为阴性。该例患者随访13个月,EBV-DNA始终为阴性。

病例2,女,31岁。诊断:复发难治性急性髓系白血病(M5型)。移植前外周血EBV情况:阴性。预处理方案:白消安+环磷酰胺+氟达拉滨+ATG。移植方式:父供女(5/10)半相合allo-HSCT。移植后给予口服环孢素预防GVHD,出现血压升高、伴眼痛及头痛,故改用他克莫司口服预防GVHD。56 d之后,外周血查EBV-DNA:2.22×103copy/mL。将他克莫司减量,给与阿昔洛韦350 mg 8 h 1次静脉滴注及人免疫球蛋白10 g 1次周静脉滴注,2周后EBV-DNA进行性升高,故给予美罗华500 mg静脉滴注1次/周,4周后复查EBV-DNA进行性升高至7.84×103copy/mL。考虑为难治性EBV感染,给予EBV-CTL治疗1次/月,输注1次后EBV-DNA转为阴性。该例患者随访至今已8个月,EBV-DNA始终为阴性。

病例3,男,12岁。诊断:复发难治性急性淋巴细胞白血病(L2型)。移植前外周血EBV情况:阴性。预处理方案:白消安+环磷酰胺+氟达拉滨+ATG。移植方式:父供子(6/10)半相合allo-HSCT。移植后给予口服环孢素预防GVHD。34 d之后,患儿出现发热,体温39 ℃左右,伴咳嗽咳痰、呼吸困难,EBV-DNA定量:1.52×105copy/mL。肺CT提示双肺弥漫磨玻璃样改变,考虑移植后EBV感染。立即停用环孢素,给予膦甲酸钠300 mg 1/天静脉滴注及人免疫球蛋白10 g 1次/周静脉滴注,2周后患者体温无明显下降,呼吸困难进行性加重,复查EBV-DNA定量:7.81×105copy/mL。给予美罗华400 mg静脉滴注1次/周,4周后患者体温仍无明显下降,呼吸困难进行性加重,复查EBV-DNA进行性升高至1.42×106copy/mL。考虑为难治性EBV感染,给予EBV-CTL治疗1次/月,输注2次后患者体温逐渐恢复正常,呼吸困难症状逐渐缓解。输注第4次后EBV-DNA转为阴性。该例患者随访至第10个月时,再次出现发热,体温38 ℃左右,伴咳嗽咳痰,EBV-DNA 6.20×105copy/mL。考虑EBV感染复发。再次给予EBV-CTL治疗2次后,患者体温及呼吸道症状进行性加重,且出现双侧颈部及腋窝淋巴结无痛性肿大,大者约2 cm×3 cm,疾病进展为PTLD。给予美罗华联合EBV-CTL治疗后,患者病情继续进展,最终因多器官功能衰竭死亡。

图1 4例患者输注EBV-CTL后外周血EBV-DNA变化曲线

病例4,女,6岁。诊断:复发难治性急性髓系白血病(M2型)。移植前外周血EBV情况:阴性。预处理方案:白消安+环磷酰胺+氟达拉滨+ATG。移植方式:非血缘全相合allo-HSCT。移植后静滴环孢素预防GVHD,患者出现抽搐、失语、意识短暂丧失,考虑环孢素所致,改用他克莫司小剂量口服预防GVHD。23 d之后,患儿低热,颈部可触及数个黄豆大串珠样排列状肿大淋巴结。EBV-DNA:5.23×103copy/mL。外周血(流式法)PTLD筛查:B细胞占有核细胞2.28%,Kappa/Lambda比值偏高,其中0.46%(占有核细胞)可疑为单克隆B细胞。考虑:(1)EBV感染;(2)PTLD可疑。立即停用他克莫司,给予阿昔洛韦200 mg 1/8 h及人免疫球蛋白10 g 1次/周抗病毒治疗,2周后无明显好转,给予美罗华100 mg静脉滴注1次/周,4周后,患儿仍偶有低热,伴咳嗽咳痰,颈部淋巴结无明显缩小,复查EBV-DNA进行性升高至2.34×105copy/mL。给予EBV-CTL治疗1次后,患儿体温恢复正常,EBV-DNA下降,治疗3次后,患儿颈部淋巴结缩小,EBV-DNA转阴。该病例随访至今已6个月,EBV-DNA始终为阴性。

4例患者使用EBV-CTL治疗后的EBV-DNA具体变化见图1。

3 讨 论

EBV感染是allo-HSCT后特别是接受T细胞去除移植物或免疫重建延迟的患者常见并发症之一。van Esser等[3]报道EBV再激活发生率在非去除T细胞的移植患者中为31.0%,而在去除T细胞移植的患者中为65.0%。曹新辉等[4]报道allo-HSCT后EBV再激活的累积发生率42.27%,EBV再激活发生的危险因素有HLA配型不合、应用抗胸腺细胞球蛋白、Ⅲ~Ⅳ度急性移植物抗宿主病及年龄小于20岁。

根据2008年欧洲移植-感染会议制定的指南定义:在血液中检测出EBV-DNA,且无临床症状的患者可诊断为EBV血症。部分EBV感染的患者最终可发展成严重致死性疾病PTLD,死亡率极高。PTLD最常见的临床表现是发热、淋巴结肿大,其他还包括肝脾肿大、咽炎及中枢神经系统症状等。

EBV感染主要治疗措施有:(1)免疫抑制剂减量,是治疗EBV血症的首选方法。而对于HSCT后EBV感染患者,因为免疫功能尚未重建,减停免疫抑制剂并不能恢复T细胞功能,并有可能诱发严重GVHD[1,5]。(2)抗病毒治疗,但抗病毒药物是否能够降低PTLD危险性并不确定。(3)抗CD20单克隆抗体(利妥昔单抗)。PTLD患者B淋巴细胞稳定高表达CD20抗原,为单克隆抗体治疗提供理想靶点。美罗华常规剂量为375 mg/m2,每周1次,一般1个疗程不超过4次。大部分患者在接受利妥昔单抗治疗后,血液中EBV-DNA定量水平可出现大幅下降。Milpied等[6]报道,应用美罗华治疗32例PTLD患者,患者年龄3~67岁:20例患者取得了完全缓解,2例取得部分缓解,有效率达68.75%;其中6例骨髓移植患者中5例完全缓解,完全缓解率为83.00%。尽管利妥昔单抗具有良好的安全性,但它会导致B细胞6~8个月的缺乏以及一些未知的长期的不良反应[7]。虽然罕见,使用利妥昔单抗导致CD20阴性淋巴瘤的复发已报道[8]。

EBV原发感染后,EBV潜伏于B细胞中,能启动细胞增殖程序,最终可发展为恶性增殖的淋巴组织。在正常人体内,T细胞可控制B细胞增殖从而阻止这一进程的发生。当感染EBV的宿主是已接受allo-HSCT的患者时,由于该类患者免疫功能低下,并缺乏有效的免疫监视,可导致EBV出现再激活,病毒大量复制,同时大量表达EBV相关基因,其中一些癌基因可引起B细胞异常增生,最终可能发展为PTLD[9-10]。而EBV-CTL通过过继细胞免疫,可重建T细胞免疫反应,不仅可直接清除受感染B淋巴细胞,抑制B淋巴细胞扩增治疗PTLD,还可以产生长期记忆效应,防止疾病复发。Bollard等[11]报道了一项为期7年的临床研究,56例患者年龄9个月至20岁,均行去T细胞HSCT,所有患者预防性输注了供者来源的EBV-CTL;输注CTL的中位时间为移植后88 d,其中26例输注的CTL标记有新霉素抵抗基因;56例患者均未发生PTLD,而对照组的PTLD发生率为11.50%;应用实时定量PCR方法检测,发现患者外周血中新霉素抵抗基因持续时间最短为69个月;有3例因不适合预防性输注而发展为PTLD的患者,接受了EBV-CTL输注治疗,2例患者病情得以缓解,治疗无效的患者淋巴瘤细胞中发现了抗原逃逸变异。Heslop等[12]进行的一项单中心研究中,114例患者在接受HSCT后使用供者来源的EBV-CTL进行预防或治疗PTLD,结果显示,所有患者均可很好地耐受治疗,无一例患者在输注淋巴细胞后发生GVHD。其中101例血清EBV-DNA阳性的患者,最终没有发展为PTLD,而11例疑似PTLD患者治疗后均达到完全缓解,并且无复发。

结合本研究这4个病例,发生EB病毒感染后,先后给予了抗病毒药物、人免疫球蛋白、利妥昔单抗(美罗华)治疗,均未取得疗效,发展成难治性EBV感染。给予EBV-CTL后,4例患者中,其中3例取得了较好疗效,仅有1例患者在EBV-DNA转阴后第6个月复发,在EBV-CTL治疗后,迅速进展为PTLD治疗无效死亡。4例患者无一例出现治疗相关不良反应或GVHD。

综上所述,EBV-CTL是治疗常规治疗无效的EBV感染的一种有效手段,为难治性EBV感染提供了新的治疗策略。部分病例反应良好,但在长期随访过程中仍有部分病例EBV-DNA再次升高,再次给予美罗华及EBV-CTL治疗仍然无效,最终发展为PTLD,治疗无效死亡,说明EBV-CTL治疗移植后难治性EBV感染仍然有很多未解之谜。本研究虽然取得了一定疗效,但因病例数较少,后期仍需扩大病例数量,对该方法进行进一步探讨和研究。

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10.3969/j.issn.1671-8348.2015.29.007

成都军区总医院院管项目(2013YG-B045)。

:缪晓娟(1985-),硕士,住院医师,主要从事血液方面的研究。△

,Tel:13699418229;E-mail:yihaimail@163.com。

R457.7

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1671-8348(2015)29-4051-03

2015-04-12

2015-06-19)

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