两种多糖对齐口裂腹鱼生长、体组成及血清生化指标的影响

2015-01-03夏晓杰邬应龙曾丽萍王洪杰汤浩澜

食品科学 2015年17期

关键词：腹鱼粗脂肪抗性

夏晓杰，邬应龙*，冯姣，曾丽萍，王洪杰，汤浩澜

（四川农业大学食品学院，四川雅安 625014）

两种多糖对齐口裂腹鱼生长、体组成及血清生化指标的影响

夏晓杰，邬应龙*，冯姣，曾丽萍，王洪杰，汤浩澜

（四川农业大学食品学院，四川雅安 625014）

目的：研究水溶性氧化魔芋葡甘露聚糖（oxidized konjac glucomannan，OKGM）及水不溶性抗性淀粉（resistant starch，RS）RS4对齐口裂腹鱼生长性能、体组成及血清生化指标的影响。方法：选取平均体质量为（87.58±5.16）g的健康齐口裂腹鱼450尾，随机分为5组，每组3个重复，每个重复30尾。各组分别饲喂在基础饲料中添加0%（质量分数，下同）的OKGM及RS4型抗性淀粉（C组）、1.6%的OKGM（OKGM1.6组）、3.2%的OKGM（OKGM3.2组）、1.6%的RS4型抗性淀粉（RS41.6组）、3.2%的RS4型抗性淀粉（RS43.2组）的饲料，饲喂60 d后，测定齐口裂腹鱼的生长指标、体组成及血清生化指标。结果：与C组相比，OKGM1.6组齐口裂腹鱼的体质量增加率、特定生长率、蛋白质效率最高，饵料系数最低（P＜0.05），RS41.6组和RS43.2组齐口裂腹鱼的体质量增加率、特定生长率、蛋白质效率变化不大，RS43.2组饵料系数降低（P＜0.05）；OKGM组肌肉粗蛋白含量增加（P＞0.05），OKGM3.2组齐口裂腹鱼的肌肉和肝胰脏粗脂肪含量最低（P＜0.05），鱼体肌肉水分、粗灰分含量不受OKGM及RS4添加量的影响（P＞0.05）；OKGM1.6组齐口裂腹鱼的血清甘油三酯水平显著降低（P＜0.05），高密度脂蛋白胆固醇水平升高（P＜0.05）；RS43.2组齐口裂腹鱼的血清总胆固醇、甘油三酯水平均降低（P＜0.05），高密度脂蛋白胆固醇含量升高（P＜0.05）。结论：当OKGM添加量为1.6%时，能改善齐口裂腹鱼生长状况，提高蛋白质效率，降低肌肉及肝胰脏粗脂肪含量，调节血脂水平。

齐口裂腹鱼；氧化魔芋葡甘露聚糖；RS4型抗性淀粉；生长；体组成；血清生化指标

魔芋葡甘露聚糖（konjac glucomannan，KGM）是从魔芋块茎中提取出的一种水溶性天然高分子化合物，由葡萄糖和甘露糖以β-1,4吡喃糖苷键连接而成，其物质的量比为1.6∶1，属于理想的膳食纤维。选择适当的氧化反应体系，将KGM进行氧化，可制得洁白度、稳定性、溶解性等均高于KGM的氧化魔芋葡甘露聚糖（oxidized KGM，OKGM），其分子质量及糊浆黏度降低。Grisdale-Helland等[1]对大西洋鲑鱼的研究结果表明，适量添加甘露聚糖能改善大西洋鲑鱼的生长状况；Sajilata等[2]认为魔芋多糖能降低总胆固醇（total cholesterol，TC）、甘油三酯（triglyceride，TG）、低密度脂蛋白胆固醇（low density lipoprotein-cholesterol，LDL-C）水平及体质量等，但对高密度脂蛋白胆固醇（high density lipoprotein-cholesterol，HDL-C）水平的影响不显著；解万翠等[3]研究发现KGM能够改善冷冻虾仁的持水品质。1993年欧洲抗性淀粉研究协会将抗性淀粉（resistant starch，RS）定义为：不被健康人体小肠所吸收的淀粉及其降解产物的总称。根据抗性淀粉产生抗性的原理不同，可将其分为4种：RS1型为物理包埋淀粉、RS2型为抗性淀粉颗粒、RS3型为老化淀粉、RS4型为化学改性淀粉。其中，RS4型淀粉是经物理或化学变性后，因淀粉分子结构的改变及化学官能团的引入而产生的抗酶解淀粉，如柠檬酸淀粉酯、淀粉磷酸酯。研究表明，RS能改善血脂和血糖水平，增强肠道短链脂肪酸含量，预防结肠癌的发生，促进矿物质吸收，还有利于脂肪氧化，具有一定降脂作用[4]。近年来，国内外学者对OKGM的研究多集中在工艺优化及理化性质方面，在生理功能上的研究目前仅见于免疫及肠道微生态环境，而对RS4型抗性淀粉的研究主要集中在哺乳动物上，两种多糖在鱼类上的应用研究鲜见报道。

齐口裂腹鱼（Schizothorax prenantiTchang）是长江上游的一种底层冷水性鱼类，隶属鲤科、裂腹鱼亚科，主食着生于岩石上的藻类及一些水生昆虫或植物，喜生活在水温较低、水流湍急、含氧量高的山间河流中。其肉色雪白、肉质细嫩、肉味鲜美、营养价值及学术研究价值较高，是产区名贵的经济鱼类[5]。本实验探讨OKGM及RS4型抗性淀粉对齐口裂腹鱼生长、体组成及血清生化指标的影响，旨在为OKGM及RS4型抗性淀粉在水产饲料中的合理应用提供理论依据。

1 材料与方法

1.1 材料

齐口裂腹鱼购自四川雅安天全养鱼场，为2012年孵化的同一批鱼种，平均体质量（87.58±5.16）g，购回后用20 mg/L的KMnO4消毒15 min，适应性饲养；OKGM及RS4型抗性淀粉为四川农业大学食品学院实验室自制[6-7]；菜油、面粉购自雅安农贸市场；鱼粉、豆粕、玉米、麸皮、鱼用多种维生素、矿物质添加剂、Ca(H2PO4)2由四川农业大学动物营养研究所提供。

表1 饲料组成及营养水平Table1 Ingredients and nutrient levels of experimental diets

饲料以食用菜油为脂肪源，鱼粉为动物蛋白源，豆粕为植物蛋白源，参照美国NRC（National ResearchCouncil）（1994）所建议的鱼类营养需要和段彪等[8]的齐口裂腹鱼饲料设计配方，实验用饲料配方及营养水平见表1。在基础饲料中分别添加0%（质量分数，下同）的OKGM及RS4（C组）、1.6%的OKGM（OKGM1.6组）、3.2%的O K G M（O K G M3.2组）、1.6%的R S 4（RS41.6组）、3.2%的RS4（RS43.2组），配制成5组等氮等能量的饲料。饲料原料过40目筛，各组饲料逐级混合均匀，再加水拌匀，用制粒机挤压成直径1 mm硬颗粒饲料，25℃风干后置于4℃冰箱内贮存备用。

1.2试剂与仪器

TC试剂盒、TG试剂盒、LDL-C试剂盒、HDL-C试剂盒、葡萄糖（glucose，Glu）试剂盒南京建成生物工程研究所；其他试剂均为国产分析纯。

T124S型电子天平北京赛多利仪器系统有限公司；HHS-9S型恒温水浴锅上海光地仪器设备有限公司；BWFJ7200型分光光度计上海尤尼柯仪器有限公司；高速冷冻离心机美国Thermo公司。

1.3方法

1.3.1实验设计与管理

适应性饲养14 d后，挑选健壮无伤的齐口裂腹鱼450尾随机分为5组，每组3个重复，每个重复30尾，以重复为单位投放于1～15号规格为70.00 cm×50.00 cm×50.00 cm的鱼缸中，按照1.1节方法将5个组分为对照组（C组）、OKGM1.6组、OKGM3.2组、RS41.6组、RS43.2组。按每缸齐口裂腹鱼每天平均体质量的2.5%投喂饲料，每天3次（9：00、13：30、19：30），每天换水1次，换水量占鱼缸总体积1/3，并清除缸内粪便。饲养期为60 d，每天记录水温，溶氧量，24 h不间断充气，保证水体溶氧量稳定。实验期间保持微流水，平均水温为18～22℃，pH 7.4～7.6，自然光周期，透明度50 cm以上，溶氧量5.5 mg/L以上。实验结束禁食1 d，进行各指标测定。

1.3.2样品采集

饲养实验结束后，禁食24 h，每缸随机取出18尾齐口裂腹鱼，尾静脉取血，于室温放置1 h后，4℃冰箱过夜，3 500 r/min离心15 min，收集上清液即血清置于-20℃冰箱保存备用。取血后解剖鱼体，迅速取出肝胰脏、肌肉（第1根背鳍至最后1根背鳍之间，侧线以上及以下白肌）置于-20℃冰箱保存备用。

1.3.3指标测定与方法

1.3.3.1生长性能测定

饲养60 d后，禁食24 h，以缸为单位称量齐口裂腹鱼体质量，每缸取出剩余的齐口裂腹鱼12尾，测量体长、体高，解剖后称肝胰脏及肠系膜脂肪质量，按以下公式计算各项指标。

式中：m0为实验开始时齐口裂腹鱼的体质量/g；mt为实验结束齐口裂腹鱼的体质量/g；F为饲料摄入量/g；P为饲料中粗蛋白含量/（g/100 g）；t为实验养殖时间/d。

1.3.3.2鱼体营养成分含量测定

取1.3.2节所采集的肌肉样品对各种营养成分含量测定：水分含量的测定采用GB 5009.3—2010《食品中水分的测定》中的105℃干燥法；粗脂肪含量的测定采用GB/T 5009.6—2003《食品中脂肪的测定》索氏提取法；肌肉粗蛋白含量的测定采用GB 5009.5—2010《食品安全国家标准食品中蛋白质的测定》中的凯氏定氮法；粗灰分含量的测定采用GB 5009.4—2010《食品中灰分的测定》中的马弗炉（550℃）灼烧法。

1.3.3.3血清生化指标测定

取1.3.2节所采集的齐口裂腹鱼血清样品，对TC、TG、LDL-C、HDL-C、Glu含量进行测定，均按照试剂盒说明书方法操作。

1.4数据统计分析

2 结果与分析

2.1日粮中添加OKGM及RS4型抗性淀粉对齐口裂腹鱼生长性能的影响

由表2可知，经60 d养殖实验后，与C组相比，OKGM3.2组、RS41.6组、RS43.2组齐口裂腹鱼的体质量增加率无显著差异（P＞0.05），OKGM1.6组的体质量增加率则显著升高（P＜0.05），OKGM1.6组齐口裂腹鱼的体质量增加率显著高于RS41.6组（P＜0.05），其余组之间无显著差异（P＞0.05）；与C组相比，OKGM1.6组齐口裂腹鱼的特定生长率显著升高（P＜0.05），OKGM3.2组、RS41.6组、RS43.2组则无显著差异（P＞0.05），OKGM1.6组的特定生长率显著高于RS41.6组（P＜0.05）；与C组相比，OKGM1.6组齐口裂腹鱼的蛋白质效率显著升高（P＜0.05），OKGM3.2组、RS41.6组、RS43.2组则无显著差异（P＞0.05），其余组之间差异不显著（P＞0.05）；与C组相比，OKGM1.6组、RS43.2组齐口裂腹鱼的饵料系数显著降低（P＜0.05），其余各组无显著差异（P＞0.05）；各组齐口裂腹鱼的存活率之间差异不显著（P＞0.05）。

表2 日粮中添加OKGM及RS4型抗性淀粉对齐口裂腹鱼生长性能的影响（xTable2 Effects of dietary OKGM and resistant starch on growth of Schizothorax prenanti Tchang ((x ± s

注：同列小写字母不同表示差异显著（P＜0.05）。表3、5同。

组别初始体质量/g末体质量/g体质量增加率/%特定生长率/（%/d）蛋白质效率/%饵料系数/%存活率/% C组88.87±3.45 104.43±4.93ab17.49±1.47b0.27±0.02b73.77±3.02b3.63±0.11a98.67±0.58 OKGM1.6组84.52±5.17 102.96±8.37b21.66±2.47a0.33±0.03a82.00±2.22a3.15±0.11b100.00±0.00 OKGM3.2组87.88±2.52 105.46±2.58ab20.01±0.50ab0.30±0.00ab78.19±3.44ab3.34±0.15ab99.33±0.58 RS41.6组85.00±7.40 107.86±0.11ab17.93±1.08b0.27±0.02b76.54±2.52ab3.41±0.11ab99.33±1.15 RS43.2组91.60±6.00 113.58±4.03a19.65±0.47ab0.30±0.01ab78.89±6.20ab3.32±0.26b99.67±0.58

2.2日粮中添加OKGM及RS4型抗性淀粉对齐口裂腹鱼形体指标及内脏指数的影响

表3 日粮中添加OKGM 及RS4型抗性淀粉对齐口裂腹鱼形体指标及内脏指数的影响（xTable3 Effects of dietary OKGM and resistant starch on body indexes and visceral indexes of Schizothorax prenanti Tchang ((x ± ss

组别肥满度/（g/cm3）体长/体高肝体比/%肠脂比/% C组1.50±0.02ab4.55±0.031.41±0.19 0.72±0.05abOKGM1.6组1.49±0.02ab4.54±0.011.45±0.24 0.77±0.09abOKGM3.2组1.50±0.03ab4.55±0.031.35±0.000.88±0.10aRS41.6组1.61±0.09a4.51±0.031.60±0.26 0.71±0.11abRS43.2组1.45±0.13b4.50±0.041.69±0.190.68±0.06b

由表3可知，RS43.2组齐口裂腹鱼的肥满度显著低于RS41.6组（P＜0.05），与C组、OKGM1.6组、OKGM3.2组相比无显著差异（P＞0.05），其余各组之间无显著差异（P＞0.05）；RS43.2组齐口裂腹鱼的肠脂比显著低于OKGM3.2组（P＜0.05），与C组、OKGM1.6组、RS41.6组相比无显著差异（P＞0.05），其余各组之间无显著差异（P＞0.05）；各组齐口裂腹鱼的体长/体高及肝体比均无显著差异（P＞0.05）。

2.3日粮中添加OKGM及RS4型抗性淀粉对齐口裂腹鱼营养成分含量的影响

由表4可知，在肌肉营养成分组成方面，与C组相比，OKGM1.6组、OKGM3.2组齐口裂腹鱼肌肉的粗蛋白含量显著增加（P＜0.05），RS41.6组、RS43.2组则无显著差异（P＞0.05），OKGM组的粗蛋白含量显著高于RS4组（P＜0.05）；与C组相比，OKGM3.2组、RS41.6组、RS43.2组齐口裂腹鱼肌肉的粗脂肪含量差异不显著（P＞0.05），OKGM1.6组则显著降低（P＜0.05），其余各组无显著差异（P＞0.05）。各组齐口裂腹鱼肌肉的水分及灰分含量均无显著差异（P＞0.05）。在肝胰脏营养成分组成方面，与C组相比，OKGM1.6组、OKGM3.2组、RS41.6组、RS43.2组齐口裂腹鱼肝胰脏的粗脂肪含量显著降低（P＜0.05），OKGM及RS4组内无显著差异（P＞0.05），OKGM1.6组的粗脂肪含量显著低于RS41.6组（P＜0.05）；各组齐口裂腹鱼肝胰脏的水分含量差异不显著（P＞0.05）。

表4 日粮中添加OKGM及RS4型抗性淀粉对齐口裂腹鱼营养成分含量的影响Table4 Effects of dietary OKGM and resistant starch on body compositions of Schizothorax prenanti Tchang (x ± ss

注：同行小写不同字母表示差异显著（P＜0.05）。

g/100 g指标C组OKGM1.6组OKGM3.2组RS41.6组RS43.2组肌肉水分含量79.00±0.07 78.89±0.16 78.97±1.22 79.15±0.35 79.52±0.09粗蛋白含量15.54±0.04b16.14±0.20a16.09±0.55a15.38±0.13b15.30±0.17b粗脂肪含量2.56±0.25a2.02±0.12b2.32±0.07ab2.38±0.43ab2.14±0.28ab粗灰分含量1.27±0.05 1.34±0.09 1.35±0.04 1.33±0.11 1.26±0.07肝胰脏水分含量68.03±7.54 71.27±3.82 71.05±1.66 72.84±4.25 75.87±3.92粗脂肪含量10.33±0.96a5.29±0.92c6.24±0.32bc7.00±0.85b6.05±0.55bc

2.4日粮中添加OKGM及RS4型抗性淀粉对齐口裂腹鱼血清生化指标的影响

表5 日粮中添加OKGM及RS4型抗性淀粉对齐口裂腹鱼血清生化指标的影响Table5 Effects of dietary OKGM and resistant starch on serum biochemical indexex of Schizothorax prenanti Tchang (x ± ss,

注：同列大写字母不同表示差异极显著（P＜0.01）。

mmol/L组别TCTGLDL-CHDL-CGlu C组6.23±0.48ab1.57±0.30a3.24±0.94 1.66±0.44c3.84±0.25 OKGM1.6组5.55±0.68bc0.67±0.16c3.06±0.15 2.54±0.54b4.19±0.41 OKGM3.2组5.21±0.46bc0.56±0.04c3.05±0.87 1.26±0.21cC3.92±0.46 RS41.6组7.12±0.98a1.06±0.15b2.90±0.23 3.42±0.20aA3.68±0.56 RS43.2组4.63±0.34c0.90±0.25bc2.98±0.42 2.26±0.31b3.77±0.12

由表5可知，与C组相比，RS43.2组齐口裂腹鱼血清的TC含量显著降低（P＜0.05），RS41.6组的血清TC含量显著高于OKGM1.6组、OKGM3.2组、RS43.2组（P＜0.05），其余各组无显著差异（P＞0.05）；与C组相比，OKGM1.6组、OKGM3.2组、RS41.6组、RS43.2组齐口裂腹鱼血清的TG含量显著降低（P＜0.05），OKGM及RS4组内无显著差异（P＞0.05），RS41.6组的TG含量显著高于OKGM1.6组、OKGM3.2组（P＜0.05）；与C组相比，OKGM1.6组、RS41.6组、RS43.2组齐口裂腹鱼血清的HDL-C含量显著增加（P＜0.05），OKGM3.2组则无显著差异（P＞0.05），RS41.6组的血清HDL-C含量显著高于OKGM1.6组、RS43.2组（P＜0.05），极显著高于OKGM3.2组（P＜0.01），OKGM3.2组的血清HDL-C含量显著低于OKGM1.6组、RS43.2组（P＜0.05），OKGM1.6组与RS43.2组之间无显著差异（P＞0.05）。各组齐口裂腹鱼的血清LDL-C、Glu含量差异不显著（P＞0.05）。

3 讨论

3.1两种多糖对齐口裂腹鱼生长性能的影响

OKGM是天然魔芋葡甘露聚糖经H2O2氧化而得到的一种多糖，其分子质量介于KGM与甘露寡糖之间，具有与甘露寡糖和葡聚糖相同的结构单元，因而其生理功能与前两者可能有一定的相似性。研究表明，甘露寡糖能影响后肠微生物的多样性并改善肠道吸收面积，显著增加肠道微绒毛长度和密度[9]。Reza等[10]认为水产饲料中添加适量的益生菌或不消化物质能选择性地促进肠道益生菌生长并加速其新陈代谢，从而对鱼类产生积极影响。van Hai等[11]研究了益生元对西方幼对虾的影响，结果表明0.5%甘露寡糖和0.2% β-1,3葡聚糖改善了西方幼对虾的生长状况。Zhang Liao等[12]研究了OKGM对齐口裂腹鱼生长性能的影响，结果表明与对照组相比，0.8%OKGM添加量组齐口裂腹鱼的体质量增加率、蛋白质利用率均升高，饵料系数降低。向世琼等[13]研究发现，适当添加抗性淀粉能够增加齐口裂腹鱼的摄食量及特定生长率。本实验结果表明，OKGM1.6组齐口裂腹鱼的体质量增加率、特定生长率、蛋白质效率最高，饵料系数最低。此结果与Ye等[14]对牙鲆、Xu Chengxiao等[15]对红沼泽鳌虾的研究结果一致。这可能与OKGM促进齐口裂腹鱼肠道乳酸菌的生长有关[16]，也可能是OKGM提高了齐口裂腹鱼的免疫功能，从而促进了其生长，但当OKGM添加量为3.2%时，其促生长作用反而不明显；RS4可刺激肠道运动加剧，增加细胞膜渗透压，加速营养物质的扩散，提高齐口裂腹鱼摄食量并强化肠道对营养物质的吸收，促进齐口裂腹鱼生长。但也有一些报道认为在饲料中添加多糖对鱼类生长和饲料系数并无影响，如Gültepe等[17]通过给金头鲷饲喂甘露寡糖发现与对照组相比，实验组金头鲷的体质量增加率、特定生长率、饵料系数均无显著变化；Enes等[18]研究发现，玉米淀粉对金头鲷的特定生长率、饲料利用率及蛋白质效率均无显著影响。这表明多糖对鱼类生长的作用效果可能受品种、生长阶段、饲料组成与营养水平、饲养方式、季节等影响。

Gatesoupea等[19]研究了抗性淀粉及糯米淀粉对鲈鱼幼鱼生长的影响，结果发现抗性淀粉组和糯米淀粉组的鲈鱼幼鱼与纤维素组相比肝体比增加，尤其是抗性淀粉组。本实验中，与对照组相比，各实验组齐口裂腹鱼的体长/体高差异均不显著（P＞0.05），RS4组齐口裂腹鱼的肝体比升高，但差异不显著（P＞0.05），与Enes等[20]对鲈鱼的研究结论相似。

3.2两种多糖对齐口裂腹鱼体营养成分组成的影响

多糖对鱼类生长影响的报道虽不完全一致，但在降低鱼体脂肪含量方面取得了较为一致的结果。S☒rensen等[21]对虹鳟的研究证实，非淀粉多糖会阻碍脂质在胃肠道形成乳糜微粒，减少脂肪的吸收，从而降低鱼体脂质含量。Genc等[22]发现，1.5～4.5 g/kg添加量的甘露寡糖能够提高虹鳟鱼体粗蛋白含量。Akrami[23]通过对鲤鱼幼鱼饲喂不同剂量的甘露寡糖发现，当甘露寡糖添加量为1 g/kg时，鱼体粗蛋白含量最高，粗脂肪含量最低。本实验结果表明，日粮中添加OKGM能提高鱼体肌肉粗蛋白含量（P＜0.05），降低肌肉和肝胰脏粗脂肪含量，肌肉水分和灰分含量均无显著变化（P＞0.05）。与Thongprajukaew[24]、Yilmaz[25]等的研究结论相似。造成以上结果的可能原因是一方面OKGM的黏滞性阻碍脂质在胃肠道形成乳糜微粒，因此减少了鱼体对脂肪的消化吸收；另一方面OKGM被微生物分解，从而改善了胃肠道环境，加快了肝脏脂质代谢转化[14]。任鸣春[26]研究了纤维素与生玉米淀粉对军曹鱼体组成的影响，结果表明与生玉米淀粉组相比，纤维素组军曹鱼的肌肉粗脂肪含量降低，粗蛋白及灰分含量无显著变化。本实验结果表明，日粮中添加RS4型抗性淀粉可降低齐口裂腹鱼肝胰脏和肌肉中的粗脂肪含量（P＜0.05），而肌肉水分、粗蛋白及灰分含量未发生显著变化（P＞0.05）。可能是RS4型抗性淀粉在后肠发酵产生了短链脂肪酸，从而减少了鱼体对脂肪的消化吸收，也可能是一部分吸收的葡萄糖在参与脂肪合成前已经被排出了体外所致。

3.3两种多糖对齐口裂腹鱼血清生化指标的影响

胆固醇在肝脏中的主要代谢途径是转化为胆汁酸，然后胆汁酸盐进入肠道帮助肠内脂类物质的消化，其中85%～95%的胆汁被肠道重新吸收入血液返回肝脏，剩余少部分在肠道细菌的作用下被转化为类固醇直接排出体外。可溶性非淀粉多糖能与胆固醇、脂肪相结合，显著降低血清胆固醇含量，使脂肪的消化吸收显著下降[27]。研究发现，抗性淀粉由于具有抗消化的特征，在小肠不被吸收但能在结肠发酵产生大量短链脂肪酸，而这些短链脂肪酸被结肠上皮细胞利用并经过肛门静脉进入血液循环，影响脂质代谢，且增加类固醇的排泄量，从而降低血清中胆固醇的含量[28]。张振龙[29]在黄颡鱼日粮中添加8%果胶，养殖8周后发现实验组黄颡鱼的血清TC及LDL含量均显著低于对照组，而血清TG含量与对照组差异不显著。孙立威等[30]通过给吉富罗非鱼饲喂壳寡糖发现，当壳寡糖添加量为1%时，罗非鱼的血清TC、TG含量均最低。Gatesoupe等[19]研究了抗性淀粉及糯米淀粉对鲈鱼幼鱼TG及血糖水平的影响，结果表明抗性淀粉组鲈鱼幼鱼的血清TG含量变化不大，血糖含量显著增加，而糯米淀粉组鲈鱼幼鱼的血清TG含量则显著升高，血糖含量变化不大。本实验结果表明，与对照组相比，OKGM1.6组齐口裂腹鱼的血清TC、TG及LDL-C水平均降低，HDL-C水平升高（P＜0.05）；RS43.2组齐口裂腹鱼的血清TC、TG及LDL-C水平均降低，HDL-C水平升高（P＜0.05），与肌肉及肝胰脏粗脂肪含量测定结果相符。造成上述结果的可能原因是OKGM吸附肠道中的胆汁酸盐，阻碍了胆汁酸盐的重吸收，促使多余的胆固醇在肝胰脏内加速转化为胆汁酸，从而大大减少进入血液中的胆固醇量，达到调节血脂的作用；RS4型抗性淀粉可能因其独特的物理性质而降低了肝肠胆汁酸循环量及脂肪吸收，最终增加了胆汁酸的排泄，减少胆固醇的合成，但当RS4型抗性淀粉添加量较低（1.6%）时，其降血脂的效果不明显。Enes等[31]研究了瓜尔得胶对重牙鲷血清生化指标的影响，结果表明与对照组相比，实验组重牙鲷的血糖含量升高。血糖生成指数（glycemic index，GI）可反映食物最初消化和葡萄糖吸收的应答关系。王竹等[32]的研究表明，RS不能被直接吸收，其GI值较低，使餐后血糖水平维持在相对较低的状态，此外，RS可以减少对胰岛素分泌的刺激作用。本实验结果表明，与对照组相比，实验组齐口裂腹鱼的Glu水平差异不显著（P＞0.05）。这与上述OKGM及RS4型抗性淀粉调节机体葡萄糖的研究结果基本一致，OKGM可能影响葡萄糖的吸收，从而延长血糖峰值。OKGM及RS4型抗性淀粉调节血脂水平的机制目前还不清楚，进一步分析应在分子水平上进行，从而研究完善其主要作用机理。

综上所述，日粮中添加1.6%的OKGM能改善齐口裂腹鱼的生长性能，降低鱼体粗脂肪含量，调节血脂水平。

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Effect of Two Kinds of Polysaccharides on Growth Performance, Body Compositions and Serum Biochemical Indices of Schizothorax prenanti Tchang

XIA Xiaojie, WU Yinglong*, FENG Jiao, ZENG Liping, WANG Hongjie, TANG Haolan
(College of Food Science, Sichuan Agricultural University, Ya’an 625014, China)

Objective∶ To investigate the effects ofwater-soluble oxidized konjac glucomannan (OKGM) and water-insoluble RS4-type resistant starchon growth performance, body composition and serum biochemical indices ofSchizothorax prenantiTchang (SPT). Methods∶ A total of four hundred and fifty healthy SPT with average body weight of (87.58±5.16) g were randomly divided into 5 groups with each group including 3 replicates of 30 fish. The control group (C) was fed with a basal diet without OKGM or RS4-type resistant starch, and the treatment groups OKGM1.6, OKGM3.2, RS41.6, and RS43.2were fed with the same basal diet supplemented with 1.6%and 3.2%of OKGM, and 1.6%and 3.2%of RS4-type res istant starch, respectively. The experiment lasted for 60 days. Growth performance, body composition and serum biochemical indices were measured. Results∶ Compared with the control group, the highest weight gain ratio (WGR), specific growth ratio (SGR) and protein efficiency ratio (PER) and the lowest feed conversion ratio (FCR) were obtained by dietary supplementation with 1.6%OKGM (P＜ 0.05). These four paramers were not significantly changed by dietary RS4-type resistant starch. The FCR was moderately reduced by dietary supplementation with 3.2%RS4-type resistant starch (P＜ 0.05). The crude protein content of muscle was increased by adding OKGM to the diet. The crude lipid content of muscle and hepatopancreas were minimized by 3.2%dietary OKGM (P＜ 0.05). The moisture and crude ash contents of muscle were not significantly affected by dietary OKGM or RS4-type resistant starch (P> 0.05). The serum concentration of triglyceride was significantly decreased and serum high density lipoprotein cholesterol (HDL-C) was significantly increased in OKGM1.6group (P＜ 0.05). Similarly, the serumconcentrations of total cholesterol and triglyceride were significantly decreased and serum HDL-C was increased in RS43.2group (P＜ 0.05). Conclusion∶ Dietary supplementation with 1.6%OKGM could ameliorate the growth performance of SPT, increase the PER, decrease the levels of crude lipid in muscle and hepatopancreas, and regulate serum biochemical indexes.

Schizothorax prenantiTchang;oxidized konjac glucomannan; RS4-type resistant starch; growth; body composition; serum biochemical indices

TS241.1

1002-6630（2015）17-0240-07

10.7506/spkx1002-6630-201517045

2014-10-29

四川农业大学“211”工程双支计划项目（2013）

夏晓杰（1988—），女，硕士研究生，研究方向为功能性食品。E-mail：472269396@qq.com

*通信作者：邬应龙（1963—），男，教授，博士，研究方向为功能性食品。E-mail：wuyinglong99@163.com