干细胞辅助脂肪移植的临床试验进展分析
2014-11-02梁久龙王洪一刘晓燕
常 鹏, 黄 威, 王 飏, 邱 涛, 时 杰, 梁久龙, 王洪一, 张 倩, 陶 凯, 刘晓燕
综 述
干细胞辅助脂肪移植的临床试验进展分析
常 鹏, 黄 威, 王 飏, 邱 涛, 时 杰, 梁久龙, 王洪一, 张 倩, 陶 凯, 刘晓燕
脂肪来源干细胞; 自体脂肪移植; 干细胞辅助脂肪移植; 临床试验
20世纪,自体脂肪组织移植已经应用于人体软组织缺损的重建。在传统的脂肪组织移植中,平均吸收率为25%~80%[1]。影响移植脂肪组织吸收率的因素包括:移植脂肪细胞的活性及纯度、受区的血供情况、移植脂肪组织的数量和体积等。因为脂肪细胞耐受缺氧能力差,所以在移植的初始阶段,受区血液供应(毛细血管系统)没有建立,多数脂肪细胞在最初的48 h内发生变性和坏死。近年的研究发现,脂肪来源干细胞(adipose-derived stem cells, ADSCs)能够耐受缺氧,在缺氧条件刺激下,可分泌多种细胞因子,发挥促血管生成作用和趋化作用,从而提高脂肪细胞的成活率;同时,ADSCs还可以向脂肪细胞分化。因此,应用干细胞辅助脂肪移植(cell-assisted lipotransfer, CAL)可以提高移植脂肪的成活率[2-7]。
动物实验研究证实,在ADSCs辅助下,移植脂肪细胞的成活率可显著提高,而相关的临床试验则开展较少,其主要原因是伦理学方面的限制;另外,试验方法、试验程序、试验条件的不同,也导致结论差别较大。因此,对目前已经开展的为数不多的CAL临床试验进行总结,能够在科研思路、试验设计和试验操作上,为进一步的研究提供有价值的借鉴。笔者以“adipose-derived stem cells”“clinical trial”为检索词,在PubMed数据库模糊检索近5年文献,共23篇,并追踪日本Yoshimura团队和丹麦Kolle团队发表的系列文章。现总结分析如下。
1 日本Yoshimura团队的相关试验
CAL的临床应用必须以试验数据为基础,然而,许多问题还在探索中,如移植的体积、供区的选择、培养ADSCs的最佳浓度、细胞因子的添加等。在相关的临床试验中,日本Yoshimura团队开展的较早且较为系统,而丹麦Kolle团队实施的第1例临床随机双盲对照试验最具说服力。
2006年,Matsumoto等[8]分离由患者腹部吸脂获得的脂肪,提取出基质血管成分(stromal vascular fraction, SVF),与脂肪细胞混合,移植于裸鼠背部一侧皮肤;另一侧移植相同体积的脂肪,4周后,切取两侧脂肪包块进行对比。结果显示,CAL使移植脂肪的成活率提高了35%以上。该实验还应用免疫荧光、组织学检测等方法进行了分析,为下一步临床试验打下了基础。
Yoshimura等[9]以相同技术提取SVF(内含ADSCs),应用于40例隆乳患者。获取的脂肪一半用来提取SVF,与另一半脂肪细胞混合注射到双侧乳腺内,平均注射270 ml,2个月后,MRI和钼靶射线评估存留脂肪的体积为100~200 ml。因该试验的结果受到操作技术的影响,缺乏有效的随机双盲对照,只能初步说明在ADSCs辅助下,移植脂肪有可能获得更高的成活率。
2008年,Yoshimura等[10]选取6例面部脂肪填充患者,3例应用CAL,3例应用传统脂肪移植。随访9~13个月,注射体积50~250 ml,结果表明,应用CAL的患者效果更好。虽然该试验在设计上不够完善,评估的方法也为主观评估,但从技术上进一步验证了从腹部吸脂产物中提取SVF的过程,为后续开展临床试验积累了经验。
2010年,Yoshimura等[11]再次对15例CAL隆乳患者进行了评估,随访时间为12个月,应用新型的3D立体成像技术评估乳腺体积的变化。平均注射体积为264 ml,1年后,左侧乳腺剩余脂肪体积为(143±80) ml;右侧乳腺剩余脂肪体积为(155±50) ml。研究得出结论,CAL是简便、安全、有效的方法。该试验在成熟的CAL技术基础上,引进了新型的3D立体成像技术作为评估手段,其优点是简便、无创,但其精确度与磁共振相比则稍差。同时,与前几次试验相比,其改进之处是延长了随访时间 ,这样能够更加科学地评价移植脂肪体积的变化。但是,本试验在设计上缺乏对照组,未能科学、严谨地反应问题。
Yoshimura团队一直致力于ADSCs相关的基础和临床研究。2011年,Eto等[12]发现了脂肪细胞损伤因子(adipose injury cocktail, AIC)能够激活ADSCs,使其发生定向分化及分泌细胞因子;2013年,Doi等[13]发明了利用黏贴法提取干细胞的装置,并取得成功。该装置含有人造纤维和聚乙烯纤维,能够在吸脂过滤液中,将ADSCs黏附于表面而分离出来。这一技术大大提高了ADSCs的获取率(图1)。虽然其临床试验没有达到严谨的对比,但是仍为其临床应用提供了有价值的数据。
2 丹麦Kolle团队的相关临床试验
2012年,丹麦Kolle团队[14]在查阅大量关于CAL的基础和临床试验数据基础上,撰写了综述。该综述详尽分析了目前已经发表的4篇大鼠脂肪移植实验和3篇人体脂肪移植试验在设计及评价方法上的优点与不足。并于2013年在《Lancet》杂志发表了世界第1例关于CAL的人体单中心、随机双盲对照试验[15]。该试验在丹麦哥本哈根医学中心进行,试验周期为121 d,而选择121 d作为评估期限,是考虑到移植脂肪一般在3个月后体积趋于稳定。 试验流程见图2。
2.1 志愿者入组 共有13名入组的志愿者,男性2名,女性11名。志愿者排除条件包括:慢性疾病、吸烟、腹部手术史(不包括小切口的腹腔镜手术)、孕期(1年内计划怀孕)、哺乳期、常规麻醉药物过敏、拒绝签署知情同意书。志愿者中途退出试验的情形包括:在细胞培养过程中发生污染及其他并发症。每个步骤由2名专家进行评估。
13名志愿者中,3名中途退出,最终10人完成全部试验。试验早期有1名男性和1名女性志愿者退出,原因是细胞培养过程中发生污染;后期有1名女性志愿者退出,原因是移植物过于接近肱二头肌内侧头,影响静脉回流,出现轻度并发症。剩余10名志愿者平均年龄28.4岁,平均BMI 24.7。
2.2 试验设计 选择腹部作为吸脂供区,双侧上臂后部作为移植脂肪受区;一侧上臂注射添加ADSCs的脂肪组织(ADSCs组),另一侧则注射单纯脂肪(对照组),按照随机量表进行分组,并进行严格的随机保密操作。
2.3 试验结果 每名志愿者平均获取7.50 ml(8.58×108)ADSCs,ADSCs组注射的富含ADSCs的脂肪组织容量平均为28.20 ml,对照组注射的单纯脂肪容量平均为28.60 ml。除了1名志愿者,其他志愿者均未在脂肪吸取和移植过程中出现并发症,在移植后的24 h内,所有志愿者均出现轻度红肿,并很快恢复。
图1 干细胞自动分离装置 a.装置外形结构(左图),放大的内部无纺布人造丝和聚乙烯织物结构(右图) b.工作原理及分离液走向(1混合成分流入,ADSCs成分因携带阳极电荷被吸附于纤维结构上,剩余阴极电荷细胞由下口流出;2反向冲洗后获得阳极电荷细胞;3冲洗口冲出杂质)图2 CAL随机双盲对照试验流程图
MRI脂肪体积评估结果显示,ADSCs组最初移植容量平均为28.38 ml,对照组为28.84 ml,这与注射的脂肪组织容量相吻合。脂肪移植后第121天,ADSCs剩余脂肪容量为23.00 ml(80.9%),对照组为4.66 ml (16.3%)。移植脂肪组织切除后,进行组织学评估,包括:移植脂肪组织的分布、连接、新生连接、坏死、新生血管密度及分布,安全性及可行性。结果显示,ADSCs组与对照组所含ADSCs比例分别为 84.3%和67.0%;新形成的连接组织比例分别为5.3%和0.5%;细胞坏死率分别为4.6%和16.1%;正常连接组织比例分别为5.7%和16.4%;血管密度分别为20.86 /mm2和26.32 /mm2。
2.4 结果分析 该试验一经发表,便受到科学界的广泛关注。其结果与目前其他一些试验有较大出入,其原因可能为:在ADSCs提取的过程中,涉及到临床操作和实验室操作两部分,而且没有统一的标准;临床医师操作经验的差异;是否对脂肪细胞做了有效的保护等。但是,这一级别较高的循证医学证据,为下一步的临床应用提供了非常有价值的依据。
3 总结与展望
目前,关于CAL的临床试验,还没有循证医学的荟萃分析证据,只有1篇随机双盲对照试验结论。笔者在PubMed进行模糊检索近5年文献,23篇,并追踪日本Yoshimura团队和丹麦Kolle团队的系列文章8篇,其中还包括2013年在《Lancet》杂志发表的世界第1例CAL随机双盲对照试验[15]。虽然结论上有很大差异,但通过分析发现,部分原因是由于操作及试验条件的差别,从而导致临床结论的差异。但目前的研究结果倾向于ADSCs辅助脂肪移植的效果优于传统的脂肪移植。因此,未来关于CAL的临床试验,应该更加关注试验的设计,实施中应符合公认标准,同时也鼓励进行多中心的随机对照试验,为进一步临床应用提供理论支持。
[1] McArdle A, Senarath-Yapa K, Walmsley GG, et al. The role of stem cells in aesthetic surgery: fact or fiction[J]? Plast Reconstr Surg, 2014,134(2):193-200.
[2] Tiryaki T, Findikli N, Tiryaki D. Staged stem cell-enriched tissue (SET) injections for soft tissue augmentation in hostile recipient areas: a preliminary report[J]. Aesthetic Plast Surg, 2011,35(6):965-971.
[3] Akita S, Akino K, Hirano A, et al. Noncultured autologous adipose- derived stem cells therapy for chronic radiation injury[J]. Stem Cells Int, 2010,12(4):532-704.
[4] Gir P, Oni G, Brown SA, et al. Human adipose-stem cells: current clinical applications[J]. Plast Reconstr Surg, 2012,129(6):1277.
[5] Kamakura T, Ito K. Autologous cell-enriched fat grafting for breast augmentation[J]. Aesthetic Plast Surg, 2011,35(6):1022-1030.
[6] Kim M, Kim I, Lee SK, et al. Clinical trial of autologous differentiated adipocytes from stem cells derived from human adipose tissue[J]. Dermatol Surg, 2011,37(6):750-759.
[7] Rigotti G, Marchi A, Galiè M, et al. Clinical treatment of radiotherapy tissue damage by lipoaspirate transplant: a healing process mediated by adipose-derived adult stem cells[J]. Plast Reconstr Surg, 2007,119(5):1409-1422.
[8] Matsumoto D, Sato K, Gonda K, et al. Cell-assisted lipotransfer: supportive use of human adipose-derived cells for soft tissue augmentation with lipoinjection[J]. Tissue Eng, 2006,12(12):3375.
[9] Yoshimura K, Sato K, Aoi N, et al. Cell-assisted lipotransfer for cosmetic breast augmentation: supportive use of adipose-derived stem/stromal cells[J]. Aesthetic Plast Surg, 2008,32(1):48-55.
[10] Yoshimura K, Sato K, Aoi N, et al. Cell-assisted lipotransfer for facial lipoatrophy: efficacy of clinical use of adipose-derived stem cells[J]. Dermatol Surg, 2008,34(9):1178-1185.
[11] Yoshimura K, Asano Y, Aoi N, et al. Progenitor-enriched adipose tissue transplantation as rescue for breast implant complications[J]. Breast J, 2010,16(2):169-175.
[12] Eto H, Suga H, Inoue K, et al. Adipose injury-associated factors mitigate hypoxia in ischemic tissues through activation of adipose-derived stem/progenitor /stromal cells and induction of angiogenesis[J]. Am J Pathol, 2011,178(5):2323-2331.
[13] Doi K, Kuno S, Kobayashi A, et al. Enrichment isolation of adipose-derived stem/stromal cells from the liquid portion of liposuction aspirates with the use of an adherent column[J]. Cytotherapy, 2014,16(3):381-391.
10.3969/j.issn.1673-7040.2014.10.015
2014-07-17)
辽宁省科学技术计划项目基金资助(2012225014)
110064 辽宁 沈阳,沈阳军区总医院 整形科(常 鹏,黄 威,王 飏,邱 涛,时 杰,梁久龙,王洪一,张 倩,陶 凯,刘晓燕);第二军医大学(常 鹏,刘晓燕)
常 鹏(1982-),男,辽宁沈阳人,主治医师,博士.
陶 凯,110064,沈阳军区总医院 整形科,电子信箱:tkzx123@163.com;刘晓燕,110064,沈阳军区总医院 整形科,电子信箱:lxyzx123@163.com