小反刍兽疫病原学及疫苗研究进展

卯岭+张靖+潘庆庆

摘要：小反刍兽疫（PPR）是一种急性病毒性传染病，2013年12月份以来，我国多个省（区）相继发生小反刍兽疫疫情，严重影响了养羊业生产发展和羊肉产品有效供给，充分认识小反刍兽疫研究进展具有十分重要的意义。文章综述了小反刍兽疫病原学和疫苗的研究进展，为小反刍兽疫防控机理提供参考。

关键词：小反刍兽疫；病毒；疫苗

中图分类号：S851.2 文献标识码：B 文章编号：1007-273X（2014）07-0063-02

收稿日期：2014-06-14

作者简介：卯 岭（1988-），男，贵州威宁人，助理兽医师，主要从事农业技术推广工作。

小反刍兽疫（Pestedes petits ruminants，PPR） 俗称羊瘟，是由小反当兽疫病毒Pestedes petits ruminantsvirus，PPRV）引起的一种急性病毒性传染病，主要感染小反刍动物，以发热、口炎、腹泻、肺炎为特征[1]。羊高度易感，牛、猪等动物也可以感染带毒，野生动物偶有发生。该病具有高发病率和死亡率，对畜牧业构成严重的威胁。世界动物卫生组织（OIE）将其列为A类传染病，在我国列为一类动物疫病。

1 病原学研究

1.1 病毒的生物学特性

小反刍兽疫病毒（PPRV）属于副粘病毒科（Paramyxoviridae）麻疹病毒属，该病毒属于囊膜病毒，病毒颗粒外被厚约8.5～14.5 nm的囊膜，囊膜上有两种纤突糖蛋白。病毒核衣壳由核蛋白（N）和磷蛋白（P）组成，呈螺旋对称，螺旋直径约为18 nm，螺距为5～6 nm，总长度约为1 000 nm。另外还有囊膜基质蛋白（M）、纤突糖蛋白（F）和H蛋白[2]。PPRV可以在MDBK、BHK21、Vero细胞上繁殖，同时也可以在山羊或绵羊的胎肾、人羊膜、犊牛肾和猴肾的原代或传代细胞上生长繁殖，并且会出现细胞病变（CPE），一般会在接种细胞后1～2周才会看到病变。

1.2 病毒分子生物学特性

PPRV的基因组为不分节段的单股负链RNA， 分别编码 6 种结构蛋白和 2 种非结构蛋白，依次是核衣壳蛋白（N）、磷蛋白（P）、基质蛋白（M）、融合蛋白（F）、血凝素蛋白（HN）、大蛋白（L）和 C、V 非结构蛋白。

N 蛋白由 N 基因含有的惟一1个开放阅读框编码的 525 个氨基酸残基组成，分子质量大小约为 57.7 kU，在病毒中含量最高，是核衣壳的主要组成蛋白。N蛋白有4个主要的区域：氨基末段和蛋白中部I、Ⅲ的保守区以及易变异的Ⅱ区、Ⅳ区（C端）。N蛋白的主要作用是保护病毒RNA免受核糖核酸酶I的破坏，与RNA结合作为病毒转录的模板，被认为在病毒的复制和转录中起主要的作用[3]。

P 基因含有 3 个开放阅读框，编码的蛋白分子质量约为 54.9 kU，含有 509 个氨基酸， 它能与 N 和 L 蛋白连接，作为分子伴侣使 N 蛋白保持可溶状态与 RNA 相连，同时是转录复合物的辅助因子。由于 P 蛋白属于酸性蛋白并且具有较多的苏氨酸和丝氨酸，能为转录后磷酸化提供较多的潜在位点，而这种磷酸化作用能增加整个分子的负电荷和分子大小，因此会造成 P 蛋白在聚丙烯凝胶电泳中的异常迁移。

M 蛋白位于病毒囊膜的内侧，序列具有高度的保守性，分子质量约为 38 kU。M 蛋白在成熟病毒粒子从细胞内释放的过程中起着关键性的作用，病毒缺失 M蛋白后就失去了感染细胞的能力。有研究表明 M 蛋白是以蛋白中部的 C 端和病毒囊膜相结合的.

F 蛋白又称融合蛋白，是病毒表面的一种糖蛋白，属于一型糖蛋白，含有 546个氨基酸，分子质量约为 59.31 Ku。F 蛋白能够诱导细胞病变，导致细胞产生溶血素、细胞融合和启动病毒感染，决定病毒感染的成功与否。

H 蛋白又称吸附蛋白，是 PPRV 表面的另一种糖蛋白，由 609 个氨基酸组成，分子质量为 70 Ku，是最不保守的蛋白。H 蛋白具有血凝素，含有 T 细胞决定簇，与宿主细胞的特异性有关。

L 蛋白主要是通过 P 蛋白与病毒的转录、复制模板复合体 N-RNA 相互作用，从而构成核蛋白复合体，用来形成病毒的mRNA。

C 和 V的形成是由于 P 基因的阅读框经移码后造成的非结构蛋白。C 蛋白是最小的蛋白，V 蛋白可在干扰素通路和转录过程中发挥作用。

1.3 病毒致病机理

该病毒先通过口、咽上呼吸道上皮或扁桃体进入体内，在局部淋巴结增殖，减弱淋巴细胞的免疫力，进而扩散到淋巴组织中，之后经血液循环到达全身各处淋巴结、肠黏膜、呼吸道黏膜 ，导致淋巴组织坏死，免疫功能下降，最终引起继发感染和支气管肺炎。病毒粒子在 H 和 F 蛋白的协助下将核衣壳注入靶细胞，最终使病毒粒子与靶细胞融合。在病毒复制过程中需要多种聚合酶和复制酶，这些复制酶对病毒自身的 L 蛋白或其他多种新的蛋白有依赖作用，同时病毒的复制过程还包括 mRNA翻译病毒多肽或蛋白的过程[4]。

2 小反当兽疫疫苗研究进展

目前该病尚无有效治疗方法，发现病例应严密封锁疫区，扑杀患畜，隔离消毒。对PPR的控制主要依靠疫苗，现有疫苗及免疫方法很多，效果差异也很大。

2.1 牛瘟弱毒疫苗

由于 PPRV 和牛瘟病毒（RPV） 之间的抗原相关性很强[5]，可用牛瘟 （RP） 组织培养的弱毒疫苗对绵羊、山羊进行免疫，产生的抗 RP 抗体能够很好的抵抗 PPR 野毒株的攻击，但是这种方法不利于全球牛瘟消灭计划的实施。其主要缺点是：免疫动物仅产生抗 RPV 的中和抗体，而没有抗 PPRV 的中和抗体。RPV和 PPRV H 基因序列分析表明，两种病毒 H 蛋白氨基酸的同源性不足 60%，而相对比较保守的 F 蛋白同源性为 80%。因此，RPV 弱毒疫苗抗 PPR 的保护作用，可能由 F 蛋白提供，而该蛋白主要诱导细胞免疫应答。此外，RPV 弱毒疫苗免疫动物，用 PPRV 攻击感染后，抗 PPRV 中和抗体呈升高态势。这表明 PPRV 在免疫动物体内有短暂的复制过程，存在散毒可能性。

2.2 PPRV 弱毒疫苗

通过 Vero 细胞的连续传代，成功研制了 Nigeria 75/1 PPR弱毒疫苗，该苗无任何副作用。由于 PPRV 对热高度敏感，致使 Nigeria 75/1 疫苗的稳定性很差，不利于基层的运输和使用。

2.3 PPR 灭活疫苗

用感染山羊的病理组织可制备同源的PPR灭活疫苗。但是，甲醛灭活的疫苗效果不佳，而用氯仿灭活制备的疫苗免疫山羊后血清抗体可以持续8个月。

2.4 重组亚单位疫苗

利用疹病毒属的表面糖蛋白具有良好的免疫原性，重组杆状病毒表达的 HN 蛋白能刺激机体产生体液和细胞介导的免疫应答，产生的抗体能中和 PPRV 和 RPV。国外学者在大肠杆菌中分别过表达了 PPRV 和 RPV的 N 蛋白，在无病毒 RNA 存在的情况下，能装配成类似于病毒的核衣壳。纯化的重组病毒核衣壳单剂量、无佐剂时即可诱导小鼠产生很强的抗原特异性 CTL免疫应答，而且 PPRV 和 RPV 间可交叉反应。

2.5 嵌合体疫苗

应用反向遗传技术制备RP/PPRV嵌合体疫苗，即用PPRV的糖蛋白基因替代RPV疫苗表面相应的糖蛋白基因。这种疫苗不仅对PPRV具有良好的免疫原性，而且免疫动物血清中无特异的RP病毒ELISA抗体。

2.6 活载体疫苗

国外学者将 PPRV 的 F 基因插入羊痘病毒的 TK 基因编码区，构建了重组羊痘病毒疫苗 recCapPPR/F，该重组病毒可抵抗 PPRV 强毒的攻击感染，同时也能预防羊痘病毒的感染。重组羊痘活载体疫苗应是小反刍兽疫疫苗新的发展方向。

2.7 RNA 干涉技术

通过合成的小干扰 RNA（siRNA）作用于 N 蛋白基因的两个区，导致病毒复制减少了 80%以上，通过实时定量 PCR 检测病毒 RNA、流式细胞仪测定病毒蛋白的产生、CPE 评价病毒粒子的产生和测定病毒滴度评价 siRNA 对PPRV 复制的影响，证明 siRNA 分子有发展为 PPRV 和 RPV 治疗剂的潜力[5]。

3 小结

PPRV 主要感染山羊和绵羊等小反刍兽，但是不同品种的羊敏感性有显著差别。山羊比绵羊更易感，幼龄动物易感性较高，哺乳期的动物抵抗力较强。另外，猪和牛也可以感染 PPRV，但通常无临床症状，也不能够将其传染给其他动物。一直以来小反刍兽疫的防治问题都没有得到很好地解决，目前，我国的羊群的疫情监测及防治技术与发达国家相比还有很大的差距，很多疫苗和标准化试剂盒还是沿用国外产品，因此要求加强对PPR免疫机理和PPR疫苗的研究工作，加强PPR的防治与疫情监测技术的研究工作，开发出安全、有效、实用的疫苗及建立快速标准化检测手段显得十分重要。

参考文献：

[1] 印春生，支海兵.小反刍兽疫研究进展[J].中国兽药杂志，2007，41（8）：22.

[2] 刘玉洪，徐自忠，花群义，等.小反刍兽疫病毒分子生物学研究进展[J].动物医学进展，2006，27（12）： 1-6.

[3] 井 波，赵玉军，袁 远.小反当兽疫病毒研究进展[J].畜牧与兽医，2004，36（6）： 40-43.

[4] 李井春，赵凤菊，赵玉军.小反刍兽疫[J].黑龙江畜牧兽医，2004（12）：63-64.

[5] SERVAN DE ALMEIDAl R，KEITA D，Libeau G，et al.Control of ruminant morbilli- virus replication by small interfering RNA[J].General Virology，2007，88（8）：2307-2311.