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肝豆灵对铜负荷肝纤维化大鼠肝星状细胞凋亡的影响

2014-03-08谢道俊鲍远程童建兵丁伟军

安徽中医药大学学报 2014年2期
关键词:青霉纤维化肝脏

张 娟,谢道俊,韩 辉,沈 斌,鲍远程,童建兵,周 磊,杨 波,丁伟军

(1.安徽中医药大学第一附属医院神经内科,安徽合肥 230031;2.湖北中医药大学,湖北武汉 430065)

肝豆灵对铜负荷肝纤维化大鼠肝星状细胞凋亡的影响

张 娟1,谢道俊1,韩 辉1,沈 斌2,鲍远程1,童建兵1,周 磊1,杨 波1,丁伟军1

(1.安徽中医药大学第一附属医院神经内科,安徽合肥 230031;2.湖北中医药大学,湖北武汉 430065)

目的 观察肝豆灵对铜负荷肝纤维化大鼠肝星状细胞(hepatic stellate cells,HSC)凋亡的影响,探讨肝豆灵防治Wilson病肝纤维化的作用机制。方法 将75只大鼠分成空白组、模型组、肝豆灵组、青霉胺组及肝豆灵+青霉胺组,采用喂食硫酸铜饮食复制铜负荷大鼠模型,采用TUNEL法检测HSC的凋亡。结果 模型组可见大量HSC增生;与模型组比较,各治疗组HSC数量显著降低(P<0.01),HSC凋亡指数显著升高(P<0.01);肝豆灵+青霉胺组AI显著高于肝豆灵组和青霉胺组(P<0.01)。讨论 肝豆灵可促进铜负荷大鼠HSC的凋亡,其与青霉胺联合用药的作用更显著。

肝豆状核变性;肝纤维化;铜负荷;肝星状细胞;肝豆灵;青霉胺

Wilson病(Wilson's disease,WD)作为铜代谢障碍性疾病,其发生肝脏病变的根本原因是肝细胞中ATP7B酶功能缺陷,不能将多余的铜离子从细胞内转运出去,造成游离铜在肝组织内缓慢蓄积。肝脏是铜代谢的中心器官,过度沉积的铜损害肝细胞,引起肝细胞变性坏死、炎性改变及肝纤维化,临床表现为活动性坏死后肝硬化或代偿性肝硬变。研究证实肝星状细胞(hepatic stellate cells,HSC)的激活是肝纤维化发生的主要环节,激活的HSC大量增殖,发生表型改变、分泌过多的细胞外基质(extra cellular matrix,ECM)沉积于肝脏是肝纤维化形成的关键[1]。WD肝纤维化引起的肝功能衰竭通常是WD患者死亡的主要原因。因此,重视对WD肝纤维化的早期干预,对于改善WD患者的肝功能及预后都具有十分重要的意义。本实验采用肝豆灵治疗WD大鼠肝纤维化,旨在研究此方对HSC凋亡的影响,以探讨其治疗WD肝纤维化的作用机制。

1 材料

1.1 动物 实验用清洁级Wistar大鼠75只,雌雄各半,月龄均为3个月,平均体质量(200±20)g,购于南京医科大学实验动物中心,实验动物生产许可证号:SCXK(苏)2008-0004。动物房为普通级饲养室,实验前先适应性饲养1周。

1.2 主要仪器 切片机(Leica RM2135):德国;切片漂烘仪(科力飞QP-B):安徽合肥电子研究所;石蜡包埋机(亚光YB-7B):湖北孝感;图像采集及图像分析系统:美国Bio-Rad生物仪器设备公司。

1.3 试剂和药物 二氨基联苯胺(diaminobenzidine,DAB):北京中山生物技术公司;末端脱氧核苷酸转移酶介导的dUTP缺口末端标记(terminal dexynucleotidyl transferase(TdT)-mediated dUTP nick end labeling,TUNEL)试剂盒:美国Roche公司;硫酸铜:天津巴斯夫化工公司;肝豆灵成药(院药制字Z20050071):每片0.3g,安徽中医药大学第一附属医院制剂室提供;阳性药物青霉胺(国药准字H31022286):每片0.125g,上海信谊药厂有限公司生产。

2 方法

2.1 模型复制和分组 75只大鼠随机分为5组,每组15只,分别为空白对照组、模型对照组、肝豆灵组、肝豆灵加青霉胺组、青霉胺组。从实验第1天开始,除空白对照组予以普通饲料,其余4组均参照文献[2]复制铜负荷大鼠模型,即给予含硫酸铜1g/kg的饲料和0.185%硫酸铜的水,饲养12周。各组大鼠每天每只进食相等,并自由饮水。从第7周第1天开始各治疗组大鼠均予以相应药物灌胃。肝豆灵组大鼠按受肝豆灵0.486g/kg(相当于成人临床用量的6.3倍)灌胃,肝豆灵加青霉胺组大鼠接受肝豆灵0.486g/kg和青霉胺0.09g/kg(相当于成人临床用量的6.3倍)灌胃,青霉胺组大鼠仅接受青霉胺0.09g/kg灌胃,空白组和模型组大鼠接受等容量生理盐水灌胃。均每日1次,共6周。在第13周实验结束后,共死亡大鼠26只,剩余49只,各组动物禁食12h,在2%戊巴比妥钠腹腔麻醉下,分别留取血清、肝组织标本。

2.2 指标检测 采用TUNEL法检测细胞凋亡。结果判定:胞质棕黄色的细胞为HSC,凋亡的HSC为胞质、胞核均呈棕黄色的梭型细胞。随机取5个

不同高倍视野观察,计数胞质为棕黄色的HSC的数量和胞质、胞核均呈棕黄色的梭型凋亡细胞的数量,并计算凋亡细胞百分比,取5个视野的平均数,得到凋亡指数(apoptosis index,AI)。AI=凋亡细胞数/HSC数。

2.3 统计学方法 采用SPSS 19.0进行统计学分析。连续型变量用“均数±标准差(±s)”进行统计学描述。采用Kruskal-Wallis检验比较多组间HSC中位数,采用Mann-Whitney检验比较两组间HSC中位数;采用单因素方差分析比较5组间AI均数,采用Dunnett's T3检验比较两组间AI均数。P<0.05为差异具有统计学意义。

3 结果

空白组未见HSC表达,模型组可见大量HSC表达,各治疗组可见棕黄色、梭形、凋亡的HSC,增生的HSC数量较模型组明显减少。见图1。

与空白组比较,模型组HSC数量及AI显著升高(P<0.01);与模型组比较,各治疗组HSC数量显著降低(P<0.01),AI显著增高(P<0.01);其中肝豆灵+青霉胺组AI显著高于肝豆灵组和青霉胺组(P<0.01)。见表1。

注:红色箭头示凋亡的HSC。图1 各组HSC细胞凋亡情况比较

4 讨论

肝脏是动物体内储存铜的重要器官,同时也是进行铜代谢的重要场所,WD患者自出生后铜就开始不断地在肝脏内蓄积,所以即使是青少年WD患者,其肝脏铜的积蓄量也往往超过正常人的10倍以上[3]。研究认为在WD的早期(无症状期),肝脏内已经出现线粒体明显形态异常。动物实验证实铜过载能诱发多种动物肝损害,当蓄积超过各种细胞器含铜蛋白质负载能力时,就会对细胞产生毒性,引起脂质过氧化、谷胱甘肽耗竭、线粒体损伤、溶酶体破裂,引起肝硬化。

表1 各组HSC数、AI比较(±s)

表1 各组HSC数、AI比较(±s)

注:a.中位数(四分位距)为101.50(29.72);与空白组比较,**P<0.01;与模型组比较,##P<0.01;与肝豆灵+青霉胺组比较,△△P<0.01。

组 别n HSC细胞数AI空 白8 4.37±1.85 0.03±0.02模 型10 96.00±22.95**a0.21±0.10**肝豆灵+青霉胺11 76.18±16.31##0.56±0.04##肝豆灵10 57.80±10.76##△△0.41±0.06##△△青霉胺10 63.00±15.60##0.43±0.05##△△

蓄积的铜本身毒性很强,并且可作为氧化物前体促进自由基和有害的脂质及蛋白氧化物形成。铜通过氧自由基活化HSC,导致肝损伤修复时ECM的合成与降解不平衡,特别是后期ECM降解减少是导致WD发生肝纤维化或肝硬化的主要机制。HSC的激活和增殖是肝纤维化形成的中心环节,因而采用不同途径减少HSC的增殖并加速HSC的凋亡成为肝纤维化治疗的切入点。

中医学无肝纤维化病名,依据其肝硬化、腹水等表现,可属于“癥瘕”“瘀血”“积聚”“臌胀”等范畴。中医学认为先天不足、肝脾肾亏虚是引起本病的根本原因,情志失调、饮食不节、劳倦内伤等可诱发和加重本病。铜毒入里,脏腑功能失调致运化失常,蓄积体内,经过量变到质变,复感毒邪,外受内化而使铜毒加重。发病以青少年多见,多起病缓慢,逐渐加重。早期以气血亏虚、肝脾肾不足为主,临床期多以湿热蕴结、痰瘀阻络为主要表现。本病为本虚标实证,早期多虚,中后期多实,虚实夹杂。毒邪为害,铜毒、湿热、痰浊、瘀血为标,而变生诸症。现代医学已证实WD患者的铜中毒,主要是内在遗传缺陷,即先天禀赋不足,致机体阴阳失和,脏腑功能失调和气血运行不畅,导致胆汁不泌,铜毒不泄,蕴积体内而化生铜毒。WD肝纤维化因铜浊毒邪蓄积于肝,致肝之疏泄失常,胆汁排泄不畅,湿热铜毒内聚,外溢肌肤而为病,痰浊阻碍气机,血行不畅,痰浊与瘀血相结,则成“积聚”,毒邪日久不去,留着体内,则可损伤络脉。故WD肝纤维化的主要病机为铜毒内蕴、痰瘀阻络。

通腑利湿、化瘀散结的中药专方肝豆灵是针对以上病机研制的,该方由大黄、丹参、金钱草、黄连、姜黄、莪术等药物组成。肝豆灵注重标本同治,不仅以通腑利湿之法促进铜毒的排出,同时佐以化瘀散

结法以治“积聚”“癥瘕”。前期研究[4]发现肝豆灵可干预铜负荷大鼠肝纤维化的作用。

研究表明,大黄素通过多种途径发挥抗肝纤维化作用。体外实验显示大黄素可通过抑制蛋白酪氨酸激酶活性而发挥抑制HSC增殖的作用[5]。大黄素能浓度依赖地抑制细胞内胶原合成,降低胶原mRNA表达,促使ECM降解[6]。黄连具有抗氧化的作用,同时抑制胶原生成,促进病理沉积胶原的降解。黄连通过以上途径而发挥抑制HSC增殖和诱导HSC凋亡的作用。李欣等[7]研究发现,丹参素能明显抑制HSC的增殖活性和胶原表达,改善实验动物肝脏纤维化程度。赖文芳等[8]研究结果提示,丹参具有改善肝脏血液循环,抑制胶原生成,促进胶原降解,干预细胞内信号传导,抑制HSC活化的作用。丹参酸B能够通过抑制细胞外信号调节激酶磷酸化,抑制HSC的增殖及活化。郑元义等[9]研究结果提示,丹参素通过明显抑制HSC增殖而防治大鼠免疫性肝纤维化,抑制转化生长因子β、过氧化氢等诱导的HSC增殖,促其调亡。栾希英等[10]研究结果提示,三棱、莪术可降低肝纤维化大鼠白介素-1、白介素-6、肿瘤坏死因子-α的产生,抑制HSC的激活。李娟等[11]研究结果提示,三棱、莪术联用可调节细胞凋亡相关蛋白bax、bcl-2表达,而起到抗肝纤维化作用。何雅军等[12]研究结果提示,姜黄素可降低活化的HSC数量,增加HSC凋亡。

本研究表明,具有通腑利湿、化瘀散结作用的肝豆灵可促进HSC的凋亡,且以肝豆灵和青霉胺联合用药的效果为优,这可能是肝豆灵防治WD肝纤维化的作用机制之一。

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Effect of Gandouling on Apoptosis of Hepatic Stellate Cells in Copper-Overloaded Rats with Hepatic Fibrosis

ZHANG Juan1,XIE Dao-jun1,HAN Hui1,SHEN Bin2,BAO Yuan-cheng1,TONG Jian-bing1,ZHOU Lei1,YANG Bo1,DING Wei-jun1
(1.Department of Neurology,The First Affiliated Hospital of Anhui University of Chinese Medicine,Anhui Hefei 230031,China;2.Hubei University of Chinese Medicine,Hubei Wuhan 430065,China)

Objective To observe the effect of Gandouling on the apoptosis of hepatic stellate cells(HSCs)in copper-overloaded rats with hepatic fibrosis and to investigate the action mechanism of Gandouling in the prevention and treatment of hepatic fibrosis in Wilson's disease.Methods Seventy-five rats were divided into blank group,model group,Gandouling group,penicillamine group,and Gandouling plus penicillamine group.All rats except those in blank group were given copper sulfate-containing feed to induce a copper-overloaded

Wilson's disease;hepatic fibrosis;copper overload;hepatic stellate cell;Gandouling;penicillamine

R575.2+4

A

10.3969/j.issn.2095-7246.2014.02.023

2013-07-07)

国家自然科学基金项目(81202692);安徽高校省级自然科学研究项目(KJ2012Z223)

张娟(1975-),女,博士,主治医师

rat model.The apoptosis of HSCs was detected by terminal deoxynucleotidyl transferase-mediated dUTP nick end labeling.Results The model group had extensive proliferation of HSCs.Compared with the model group,all treatment groups had significantly reduced numbers of HSCs(P<0.01)and significantly increased apoptotic indices(AIs)(P<0.01);the Gandouling plus penicillamine group had a significantly higher AI than the Gandouling group and penicillamine group(P<0.01).Conclusion Gandouling can promote the apoptosis of HSCs in copper-overloaded rats,and it has better efficacy when used in combination with penicillamine.

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