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乳源抗菌-免疫调节融合肽对卵巢癌细胞增殖、凋亡的影响

2014-01-30唐宜桂李小勤秦宜德

安徽医科大学学报 2014年6期
关键词:乳源免疫调节原代

唐宜桂,李小勤,刘 琛,雷 婷,秦宜德

牛乳铁蛋白肽(bovine lactoferricin,LfcinB)来源于牛乳铁蛋白N端的25个氨基酸残基,是一种具有抗菌活性的生物活性肽[1]。乳源免疫调节肽是源于牛乳β-酪蛋白第63~68氨基酸残基上的短肽,其氨基酸序列为PGPIPN,具有抑制肿瘤生长等活性[2-4]。乳源抗菌 -免疫调节融合肽(antibacterial-immunomodulating fusion peptide,AIFP)是通过柔性连接臂将上述两种小分子肽连接形成的融合多肽。该实验室的前期研究[3-4]显示,卵巢癌细胞株转染了该融合肽基因能明显抑制肿瘤细胞生长。该研究将探讨AIFP直接作用于卵巢癌细胞,分析其对卵巢癌细胞增殖的影响及其可能的作用机制。

1 材料与方法

1.1 细胞株、卵巢癌临床原代细胞 卵巢癌细胞株

SKOV3由本实验室保存。卵巢癌样本取自安徽医科大学第一附属医院妇产科手术室,由本实验室进行原代培养。

1.2 药物与试剂 AIFP(上海生工生物工程有限公司合成),纯度>99.8%;紫杉醇购自深圳万乐药业;胰岛素样生长因子(insulin-like growth factor,IGF)、表皮生长因子(epidermal growth factor,EGF)、β-雌二醇(β-Estradiol)购自美国 Peprotech公司;MTT、1640培养基和DMEM培养基购自美国Gibco公司;胎牛血清购自浙江天杭生物科技有限公司;Ⅰ型、Ⅱ型胶原蛋白酶购自美国Life公司;RT-PCR试剂盒购自美国Fermentas公司。

1.3 方法

1.3.1 细胞培养 人卵巢癌细胞株SKOV3培养在含10%胎牛血清RPMI-1640培养基(含100 μg/ml青霉素和100 μg/ml链霉素)中,在37℃、5%CO2的细胞培养箱中培养,用0.25%胰蛋白酶消化传代,取对数生长期的细胞进行试验。从无菌临床手术室取人卵巢癌组织块,放于预先准备的无菌的盛有PBS缓冲液的培养瓶中,在无菌环境中用PBS缓冲液冲洗癌组织块,然后用无菌眼科剪剪成1 mm3左右的小块,放入无菌15 ml离心管中,用0.05%的Ⅰ型胶原酶在37℃消化20~30 min后,取上层细胞悬液,800 r/min离心10 min,收集细胞计数,配制成105个/ml的细胞悬液,并用台盼蓝对细胞活力进行检测,将细胞培养在含有EGF、IGE和β-雌二醇的RPMI-1640+10%胎牛血清的培养基中,37℃、5%CO2中培养,取对数生长期的细胞进行试验。

1.3.2 荧光免疫方法鉴定原代卵巢癌细胞 将无菌的细胞爬片放在6孔板孔底,培养的原代细胞用4%胰蛋白酶消化后,调整细胞浓度至10 000个,每孔加入1 ml细胞悬液,放于37℃、5%CO2中培养培养过夜,第2天,吸尽细胞培养液,加入新鲜配制的2%多聚甲醛固定细胞10 min,PBS洗3次,每次5 min。用0.3%的Triton-100对细胞透化处理10 min,PBS洗3遍,每次5 min。用10%二抗同源血清封闭30 min,PBS洗3遍,每次5 min。加入一抗CK7(1∶200),4℃孵育过夜(大于18 h),PBS洗3遍,每次5 min。加入荧光二抗(1∶100),37℃孵育1 h,PBS洗3遍,每次5 min。加入 Hoechest 33258染色细胞10 min,PBS洗3遍,每次5 min,去除多余的Hoechest 33258。取出细胞爬片,正面向下放在载玻片上封片。在荧光显微镜下观察。上述的试剂均用PBS配制。

1.3.3 MTT法检测细胞增殖 对数生长期细胞配制成细胞悬液,按每孔5 000个细胞种于96孔板中,待细胞贴壁后,以紫杉醇作为阳性药物,每孔加入不同浓度的AIFP,分别培养24、48、72 h后每孔加入 MTT(5 mg/ml)20 μl,继续孵育 4 h 后,终止培养,吸取孔内液体,每孔加入150 μl DMSO,振荡10 min,490 nm波长下测定各孔吸光度(OD),每组5个复孔,计算每组均值。细胞存活率(%)=[(OD实验组- OD空白)/(OD阴性对照组- OD空白)]×100%。

1.3.4 AnnexinV/PI双染检测细胞凋亡 用不含EDTA的0.4%胰蛋白酶消化并收集对数生长期的细胞,调整细胞浓度,接种于6孔板中,每孔接种细胞104个,置37℃、5%CO2中培养至细胞贴壁,每孔加入不同浓度的AIFP,分别培养24、48、72 h后收集细胞。用冷的 PBS洗涤2次,每管加入500 μl Binding Buffer悬浮细胞,每管加入5 μl AnnexinVFITC混匀,然后加入5 μl PI混匀,室温避光反应15 min后,在流式细胞仪上进行检测,并以未处理的细胞为阴性对照,紫杉醇处理的细胞为阳性对照,用Modfit软件进行分析。

1.3.5 RT-PCR检测凋亡相关基因的表达 设计基因 Akt、CDC25C、cyclinB1及内参 β-actin引物序列和片段长度见表1。PCR目的基因引物及内参由上海生工生物工程有限公司合成。TRIzol法提取总RNA,然后分别逆转录合成cDNA,再进行PCR扩增。PCR条件:Akt为94℃ 4 min,94℃ 30 s,59℃退火30 s,72℃ 30 s。CDC25C为94℃ 4 min,94℃ 30 s,56℃退火30 s,72℃ 30 s。cyclinB1为94℃ 4 min,94 ℃ 30 s,59 ℃退火30 s,72 ℃ 30 s。βactin为94 ℃ 4 min,94 ℃ 30 s,56 ℃退火30 s,72℃ 30 s。目的基因与内参均扩增35个循环。

1.4 统计学处理 采用SPSS 13.0统计软件分析,数据以±s表示,用t检验进行差异分析。

2 结果

2.1 免疫荧光法检测原代细胞的纯度 特异性抗体CK7作为一抗,用带有FITC免疫荧光的二抗,对癌细胞膜进行染色,用Hochest 33258对细胞核进行染色。荧光显微镜下,癌细胞膜带有绿色荧光,癌细胞核带蓝色荧光,见图1。从图1可知,培养的细胞是卵巢癌细胞,其纯度为84.61%,可以进行下步实验。

表1 Akt、CDC25C、cyclinB1及内参β-actin引物序列和片段长度

图1 免疫荧光鉴定原代卵巢癌细胞的结果 ×200

2.2 AIFP对SKOV3细胞增殖的影响 不同浓度的融合肽作用于SKOV3细胞不同时间,随着浓度的增加和作用时间的延长,细胞的存活率降低。以不处理作为阴性对照,以0.5 μg/ml紫杉醇处理作为阳性对照,AIFP组对SKOV3细胞增殖的抑制率随AIFP浓度增加和作用时间的延长而增加,与阴性对照组比较差异有统计学意义(P<0.05,P<0.01)。根据数据作出生长抑制曲线,然后根据曲线求出AIFP作用于SKOV3细胞24、48和72 h的ID50分别为2.75 ×10-4、3.96 ×10-5和 3.96 ×10-6mg/ml。见图2。

图2 AIFP对卵巢癌SKOV3细胞增殖的影响

2.3 AIFP肽对原代卵巢癌细胞增殖的影响 不同浓度的AIFP作用于原代卵巢癌细胞24、48、72 h后的细胞存活率,以0.5 μg/ml的紫杉醇做为阳性对照,培养液作为阴性对照。根据数据作出生长抑制曲线,然后根据曲线求出AIFP作用于原代卵巢癌细胞 24、48、72 h 的 ID50分别为 1.74 ×10-4、2.33×10-5和 3.12 × 10-6mg/ml。与阴性对照组比较AIFP各浓度处理原代卵巢癌细胞存活率明显下降,差异有统计学意义(P<0.05,P<0.01),且有时间和剂量依赖性,见图3。

图3 AIFP对原代卵巢癌细胞增殖的影响

图4 AIFP对原代卵巢癌细胞凋亡的影响

2.4 AIFP对原代卵巢癌细胞和SKOV3细胞凋亡的影响 用不同浓度的AIFP作用于原代卵巢癌细胞和SKOV3细胞24、48和72 h后细胞凋亡的结果,培养液作为阴性对照,阳性对照用0.5 μg/ml紫杉醇处理,与阴性对照组比较AIFP组对卵巢癌细胞凋亡的影响随AIFP浓度增加和作用时间的延长而增加,见图 4、5。

图5 AIFP对卵巢癌SKOV3细胞凋亡的影响

2.5 RT-PCR检测卵巢癌相关基因表达水平的变化 AIFP下调 SKOV3细胞中 Akt、CDC25C、cyclinB1基因的表达水平,且随AIFP浓度的增加和作用时间的延长而更加明显,与阴性对照组比较差异有统计学意义(P <0.05,P <0.01),见图6、7。

图6 AIFP对SKOV3细胞凋亡和周期相关基因表达的影响

3 讨论

LfcinB是一类富含色氨酸的小分子抗菌肽,由牛乳铁蛋白在消化道内经胃蛋白酶水解而产生。LfcinB具有抗菌、抑杀肿瘤细胞[5-6]等多种生物学功能,可用于保健食品、化妆品、药品等。乳源免疫调节肽能促进机体的免疫、抗氧化、延缓机体衰老和抗疲劳等多种功能。本实验室前期研究[7-8]显示,将LfcinB和免疫调节肽通过柔性连接臂[9](GGGGS)连接,形成融合肽,并在大肠杆菌表达系统中稳定表达。研究[10]表明融合肽在抑制细胞增殖和抗菌方面有一定的效果,本实验将在前期研究结果中进一步研究融合肽对卵巢癌细胞株SKOV3细胞增殖和凋亡方面的影响。

图7 AIFP对SKOV3细胞凋亡和周期相关基因表达的影响

Akt又称蛋白激酶B(protein kinases B,PKB),是一种丝氨酸/苏氨酸蛋白激酶,是磷脂酰肌醇-3-激酶(phosphatidylinositol 3-kinases,PI3K)下游的靶蛋白,是PI3K/Akt信号途径的中心环节,该信号途径参与调节细胞的存活、凋亡、扩增、恶性肿瘤的发生及化疗耐药等[11]。PI3K/Akt卵巢癌中高表达,与卵巢癌细胞的凋亡相关[12]。

CDC25C即细胞分裂周期蛋白25同源蛋白,是一种细胞分裂周期蛋白,在真核细胞有丝分裂中期重要作用,是调控细胞周期进入M期的关键因子之一。CDC25C是 CDC2/cyclinB的主要激活物,CDC2/cyclinB是一个主要的G2/M期转变在G2期检查点的总开关[13]。当CDC25C磷酸酶活性受到抑制时,CDC2/cyclinB复合物的活性也将受到抑制,G2期检查点的总开关处于“关闭”状态,发生G2/M期阻滞。

cyclinB即细胞周期蛋白B,分为6中亚型,cyclinB1-6,在S期开始表达,在G2/M期达到峰值,到有丝分裂中后期消失[14]。cyclinB的过表达能够促进G2/M期转换,甚至导致细胞增生失控以及恶性转化。研究[15]表明,用 RNA干扰的方法抑制 cyclinB表达,结果造成G2/M期阻滞,细胞生长被抑制,并诱导细胞凋亡。

本实验用MTT法检测显示AIFP作用卵巢癌细胞株SKOV3细胞后,细胞的增殖减少,RT-PCR检测结果显示,AIFP作用后的 SKOV3细胞的 Akt、CDC25C和cyclinB1在一定范围内随时间和剂量的增加表达水平降低,说明AIFP对SKOV3细胞增殖和凋亡的影响可能是通过影响Akt、CDC25C和cyclinB1而发挥作用,为深入研究AIFP抗肿瘤的作用机制提供了可靠的依据。

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