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HPLC 法测定黄芩不同部位中黄芩苷和野黄芩苷的含量

2013-12-09李晓芳吴荣叶喜德江西省中医院南昌330006江西省余干县人民医院余干33500江西中医学院南昌330004广州中医药大学广州50006

江西中医药 2013年11期
关键词:容量瓶黄芩甲醇

★ 李晓芳 吴荣 叶喜德 (. 江西省中医院 南昌330006;. 江西省余干县人民医院 余干33500;3.江西中医学院 南昌330004;4.广州中医药大学 广州50006)

黄芩(Scutelalria baicalensis Georgi)来源于唇形科植物黄芩的干燥根,为多年生草本,主根粗壮,茎高约30 -120 cm,自基部多分枝。黄芩又被称为黄金茶、山茶根或者烂心草,是临床上十分常用的中药,具有良好的泻火解毒、止血凉血、安胎除热的作用。现代研究表明,黄芩富含黄酮类化学成分,其中主要是黄芩苷(baicalin),黄芩甙药理作用广泛,临床主要用于抗菌、消炎和抗感染[1,7]等。而其茎叶为黄芩药材的地上部分,主要含有野黄芩苷(scutellarin),该成分具有清热解毒,扩张心脑血管,改善体内微循环等作用[2]。为了黄芩资源的合理利用和生药(或制剂)的质量控制,我们建立了黄芩苷和野黄芩苷的HPLC 分析方法,对黄芩不同部位的主要成分黄芩苷和野黄芩苷的含量进行了测定。

1 材料

HPLC 仪器:LC -20AT 高效液相色谱仪(岛津公司,日本),包括SPD-M20A 二极管阵列检测器,SIL-20A 自动进样器,LC -solution 液相色谱工作站。其它仪器:电子分析天平FA2004,上海天平仪器厂;TDL-5 -A 型低速台式离心机,上海安亭科学仪器厂;QN -99 粉碎机,韩国日进精工有限公司;8002 型恒温水浴控制器,余姚明伟仪表厂。

甲醇、乙腈为色谱纯,乙醇、醋酸、磷酸为分析纯,水为自制重蒸水。黄芩苷对照品,购于中国药品生物制品检定所(批号:110715 -201016);野黄芩苷对照品,购于北京亚希尔科技有限公司。黄芩根、茎、叶均采购于市场。

2 方法与结果

2.1 色谱条件 黄芩苷检测参考药典方法,并稍作改动:色谱柱为Texra C18 柱(4.6 mm × 200 mm,5 μm),流动相为甲醇-水(53∶47),水用磷酸调pH值约为3(磷酸∶水=2∶500,V/V),流速为0.9 mL/分,检测波长280 nm,柱温30℃,进样量20 μL。

野黄芩苷检测:色谱柱同黄芩苷检测,流动相以甲醇-0.2%醋酸溶液进行梯度洗脱,0 -30 分钟甲醇由40%增加到70%;洗脱流速为0.9 mL/分,检测波长334 nm,柱温为30℃,进样量10 μL。

2.2 对照品溶液制备 黄芩苷:精密称取在60℃干燥恒重的黄芩苷对照品6.00 mg,加甲醇定容至100 mL 的容量瓶,配成60 μg/mL 浓度的对照品溶液,用时稀释至60、24、12、6、3 μg/mL 共5 个浓度梯度。

野黄芩苷:精密称取在P2O5干燥器中干燥24小时的野黄芩苷对照品10.00 mg,加甲醇定容至25 mL 的容量瓶,配成0.4 mg/mL 浓度的对照品溶液。

2.3 供试品溶液制备 黄芩苷提取[3]:分别精密称取样品粉末(过60 目筛)1.00 g,加70%乙醇100 mL,回流提取4 小时,提取液过滤,除去残渣定容至100 mL 容量瓶中,即得供试样品。

黄芩苷提取[2]:称取样品粉末(过60 目筛)1.00 g,精密称定,置索氏提取器中用石油醚(60 -90)洗脱至无色,取出,晾干,在索氏提取器中用80 mL甲醇连续洗脱至无色,使野黄芩苷提取完全,放冷,滤过,滤液置100 mL 容量瓶中,用少量甲醇分数次洗涤容器,洗液滤入同一容量瓶中,用甲醇稀释至刻度,摇匀,即得。

2.4 标准曲线的制备 黄芩苷对照品溶液进样20 μL,按上述色谱条件进行测定,对照品色谱图见图1(a)。以峰面积积分值(Y)为纵坐标,黄芩苷浓度(X)为横坐标进行线性回归,得回归方程Y = 0.73×105X -1.5 ×105(r =0.999 8)。结果表明,进样体积20μL,检测波长λ280 nm,黄芩苷在1.5 -60 μg/mL 范围内线性关系良好[4]。

取浓度为0.400 mg/mL 的野黄芩苷对照品溶液5、10、15、20、25 μL 依次进样,在本文2.1 色谱条件下,测定色谱峰面积,对照品色谱图见图1(b)。以对照品质量x (μg)为横坐标,峰面积Y 为纵坐标,回归得直线方程为Y =1.36 ×106X -2.07 ×106(r=0.999 5)。

图1 对照品色谱图

2.5 精密度试验 取2.2 项下对照品溶液黄芩苷(6 μg/mL)20 μL 和野黄芩苷(0.4 mg/mL)10 μL,分别连续进样5 次,结果黄芩苷的平均峰面积为225601 (RSD =0.35%);野黄芩苷的平均峰面积为3043702 (RSD=0.57%)。

2.6 稳定性试验 取2.3 项下样品溶液,室温放置0、4、8、12、16、20、24 小时后测定,结果测得的黄芩苷和野黄芩苷面积基本不变,RSD 分别为0.59%、0.82%,表明样品溶液在24 小时之内稳定。

2.7 加样回收率试验 取已知黄芩苷和野黄芩苷的黄芩茎部样品100.0 mg 共5 份,各精密加入黄芩苷对照品10.05 mg、野黄芩苷对照品8.05 mg,按样品溶液制备方法制备,依上述方法测定,结果黄芩苷、野黄芩苷平均回收率分别为100.04%(RSD=0.75%)和99.26%(RSD=1.21%)。

2.8 样品测定 按2.3 项,黄芩根、茎、叶配制样品溶液各3 份[5],依法测定,黄芩苷、野黄芩苷含量及色谱峰出峰时间。结果见表1。

表1 样品测定结果(含量%,n=3)

3 讨论

中药黄芩的药用部位为植物黄芩的根,根据HPLC 分析的结果,黄芩根中黄芩苷的含量较高,因此可能是黄芩的主要活性成分。本实验测定的结果符合2010 年版药典中规定黄芩苷含量不得少于9.0%的标准,实际含量为10.872%,说明市场购买的黄芩药材质量尚可[6]。与文献[2]中黄芩茎、叶所含的野黄芩苷相比(0.641%),本文所购茎、叶材料中含量更高(分别为2.257%和3.316%),这可能与产地有关系,不同产地的黄芪药材中有效成分存在一定的差异[3]。另外,从实验结果来看,黄芩根、茎和叶不同的药理作用在化学成分的差异上得到了体现。黄芩茎、叶中黄芩苷的含量较低,主要成分为野黄芩苷,因此茎、叶部位虽然亦可药用,但不可代替黄芩药材。

[1]张永钦,周井炎,徐辉碧. 黄芩苷的抗氧化作用[J].华中理工大学学报,1999,27 (4):110 - 112.

[2]李守拙,李沈明,范书铎. 黄芩茎叶中野黄芩苷含量测定[J]. 中草药,2000,31(12):910 - 912.

[3]刘美兰,杨立新,万元浩,等.RP -HPLC 法测定7 种药用黄芩中黄芩苷和汉黄芩苷的含量[J]. 药物分析杂志,2002,22(2):99- 102.

[4]张威,白雁,雷敬,等.卫近红外光谱法测定黄芩提取物中黄芩苷含量[J].计算机与应用化学,2010,27(12):1 697 -1 699.

[5]聂鑫,罗佳波,吕本,等.高效液相色谱法定量分析黄芩酱粗晶中4 种黄酮类成分[J]. 中国医院药学杂志,2007,27(2):191 -193.

[6]方婧,付梅红,杨洪军,等.微波协助提取在中药饮片含量测定中的应用(1)——微波法与药典法测定黄芩中黄芩苷含量比较研究[J].中国实验方剂学,2011,17(21):46 -48.

[7]魏述永.黄芩有效成分提取物对沙门氏菌的抑菌活性比较研究[J].中国医药杂志,2008,6(5):40 -41.

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