临床分离链球菌的耐药性分析

包东武

链球菌是临床常见革兰氏阳性细菌, 为人体或动物呼吸道、表皮共生菌, 多为有益菌, 然而亦存在一定量的致病菌种；细菌可经鼻咽进入呼吸道, 从而导致肺炎、中耳炎、败血症、化脓性脑膜炎等侵袭性感染, 已经成为导致死亡的十大原因之一［1］。临床研究显示, 10%院内感染肺炎及50%社区获得性肺炎是由肺炎链球菌引起, 随着临床抗生素药物药物的广泛使用, 链球菌耐药性呈现出上升趋势, 临床治疗难度加大, 因此对分离链球菌的耐药性进行研究分析有着重要作用。作者对本院近7年来分离出的696株链球菌(均为肺炎链球菌)进行观察, 具体研究报告如下。

1 资料与方法

1.1 一般资料 本院自2006年8月～2013年8月分离的696株链球菌(均为肺炎链球菌), 其中14岁以上分离365株,占52.4%, 14岁以下分离331株, 占47.6%。主要分离部门：门诊52株, 儿科病房325株, 胸外科138株、呼吸内科69株,肿瘤科36株, 重症监护病房25株, 其他病房55株。其中痰标本543份, 咽拭子标本56份, 支气管肺泡灌洗液标本43份,血液标本32份, 脑脊髓液8份, 其他标本14份。

1.2 仪器及方法 英国Oxoid公司生产的药敏试纸对莫西沙星、克林霉素、万古霉素、红霉素、左氧氟沙星、苯唑西林等药物进行检查；采用瑞典AB Biodisk公司生产的E-test条对头孢曲松及青霉素进行观察。5%脱纤维羊血药敏试验培养基, 药敏试验用MH琼脂、optochin纸片及痰液化剂均为英国Oxoid公司生产产品。

采集痰标本行涂片镜检, 其中白细胞/上皮细胞大于2.5即为合格痰；将合格痰筛选出后, l%痰标本消化液消化30min后, 接种含万古霉素巧克力及哥伦比亚平皿, 放入CO2培养箱。采用E-test法及CLSI推荐的K-B方法进行药敏试验, 质控菌株为肺炎链球菌ATCCA9619；如果苯唑西林≤19mm, 则采用E-test对青霉素的MIC进行检测；自2009年采用E-test方法对头孢曲松及青霉素进行直接检测；根据CLSI2009对结果进行判断。非脑膜炎标准来源菌株的青霉素的判断标准：敏感：≤2mg/L；中介：4mg/L；耐药：≥8mg/L；头孢曲松：敏感：≤1mg/L；中介：2mg/L；耐药：≥4mg/L。脑膜炎标本来源菌株青霉素判断标准：敏感：≤0.06mg/L；耐药：≥0.12mg/L；无中介株。头孢曲松：敏感：≤0.5mg/L；中介：1mg/L；耐药：≥2mg/L。

1.3 统计学方法 采用SPSS18.0统计学软件处理, 计量资料采用t检验, 组间对比采用χ2检验, P<0.05为差异具有统计学意义。

2 结果

2.1 非脑膜炎来源肺炎链球菌对抗菌药物敏感度 696株非脑膜炎来源肺炎链球菌对克林霉素及红霉素敏感性相对较低, 仅有9.3%(54/696)、11.2%(78/696)；儿童分离株敏感度约为4.6%(32/696), 相较成人分离株明显较低(P<0.05)；链球菌对左氧氟沙星、莫西沙星具有较好敏感性, 其中成年人明显优于儿童分离株, 比较差异有统计学意义(P<0.05)。具体见表1。

表1 696株非脑膜炎来源肺炎链球菌对抗菌药物敏感度情况

2.2 耐药性变化 近7年来链球菌检测结果显示, 万古霉素敏感性为100%,莫西沙星、左氧氟沙星敏感性无明显变化,其余药物耐药性均明显上升(P<0.05)。

3 讨论

本次研究中肺炎链球菌主要自门诊、儿科及呼吸科内分离出, 其中呼吸道标本仍然为主要标本, 由此可见, 由此引起的中枢神经系统感染及血流感染亦有较大的发生几率。红霉素药物对肺炎链球菌具有较好的抗菌活性, 同时能够对肺炎衣原体、肺炎支原体及军团菌等活性进行抵抗［2］, 然而随着抗菌药物的广泛使用, 药物敏感性明显降低, 药物耐药性明显上升［3］, 本次研究中, 红霉素对链球菌的敏感性为15.1%,而临床显示, 除左氧氟沙星、万古霉素、莫西沙星等药物的敏感性未出现下降外, 其余药物敏感性均明显下降(P<0.05),这与抗生素药物的普遍使用有着直接关系, 因此在临床治疗时, 要严格掌握抗生素使用指征, 对患者病情进行准确判定后选择合适的治疗方法, 合理用药, 减少耐药性, 从而实现患者治疗。

［1］方谷芬.岳阳地区512株泌尿道细菌性感染的耐药分析.实用预防医学, 2007,14(04):1231.

［2］杭菊萍.某院2012年临床优势菌株分布及耐药分析.中国保健营养, 2013,15(06):3340.

［3］赖爱娣.新生儿败血症132例葡萄球菌β内酰胺酶检测与耐药分析.上海医学检验杂志, 2001,16(05):313.