火龙果果皮色素提取工艺及稳定性研究
2013-05-02宋珊珊蔡国跃孙延斌吴天祥
宋珊珊 谭 沙 蔡国跃 孙延斌 吴天祥 朱 威
SONG Shan-shan1 TAN Sha1 CAIGuo-yue1 SUN Yan-bin1 WU Tian-xiang1 WU Wei2
(1.贵州大学生命科学学院,贵州 贵阳 550025;2.浙江大学工业技术研究院,浙江 杭州 310058)
(1.College of life science,Guizhou University,Guiyang,Guizhou 550025,China;2.ChinaZhu Wei,Industrial Technology Research Institute,Zhejiang University,Hangzhou,Zhejiang 310058,China)
火龙果是仙人掌科量天尺属的多年生多浆植物的果实,又叫仙人果、红龙果,有红皮白肉、红皮红肉和黄皮白肉之分[1],原产于巴西、墨西哥等中美洲热带沙漠地区[2],现在中国海南、福建、广东、广西、贵州等地均有一定规模种植[3]。
贵州罗甸因其独特的地理环境和气候成为火龙果的重点种植基地,截止2011年底火龙果种植面积达2 026 hm2[4]。火龙果的大量种植,使其供过于求,降低了火龙果的经济价值,而火龙果酵素产品、天然色素、果酒、低糖果脯、果醋等产品的研究,能扩大火龙果的应用市场,增加火龙果果品的附加值[5-7]。
火龙果果皮富含甜菜苷类色素[8],该色素在1960年被允许用于食品着色,它具有抗氧化、抗辐射和消炎的作用[9]。本试验以火龙果果皮为研究对象,采用溶剂萃取法提取果皮中的天然红色素,并研究其在不同温度、pH和金属离子等环境下的稳定性,为该色素的使用和储存提供科学的依据。
1 材料与方法
1.1 材料与试剂
火龙果:红皮白肉火龙果,购于贵州罗甸;
无水乙醇、甲醇、异丙醇、丙酮、柠檬酸、磷酸氢二钠、磷酸氢钙、氯化钠、硫酸镁、乙酸锌、硫酸铁等:分析纯,重庆茂业化学试剂有限公司。
1.2 仪器与设备
紫外可见光光度计:T6新世纪型,北京普析通用仪器有限公司;
离心机:TDL-40B型,上海安亭科学仪器厂;
电热恒温水浴锅:DK-98-Ⅱ型,天津泰斯特仪器有限公司;
榨汁搅拌机:GW-308A型,佛山市锯华电器有限公司;
恒温摇床:TS-2102C型,上海天呈实验仪器制造有限公司。
1.3 试验方法
1.3.1 色素提取工艺
火龙果→清洗→取皮→绞碎→称重→提取→过滤→滤液→浓缩→色素浓缩液
(1)红色素含量的测定:称取一定量的火龙果果皮,稀释一定倍数,以相应试剂为空白,于534 nm波长下测其吸光值。按照式(1)计算红色素含量[10]。
式中:
C——待测样品中甜菜苷浓度,g/L;
A——最大吸收波长下吸光值;
DF——稀释倍数;
MW——标准甜菜苷摩尔分子质量,550.46;
ε——标准甜菜苷摩尔消光系数,61 600。
(2)确定火龙果果皮色素最大吸收波长:取2 g绞碎后火龙果果皮溶于40 mL蒸馏水中,25℃,200 r/min振荡2 h,4 000 r/min离心5min。过滤,取滤液,用蒸馏水稀释至一定倍数,于波长200~800 nm范围内扫描。
(3)提取剂的选择:分别取2 g绞碎后火龙果果皮溶于40mL蒸馏水、异丙醇、0.25mol/L柠檬酸、50%丙酮、50%甲醇、50%乙醇中,25 ℃,200 r/min振荡 2 h,4 000 r/min离心5min,过滤,取滤液。以相应提取剂为空白,于534 nm波长下测其吸光值。
(4)料液比的选择:取4 g绞碎后火龙果果皮,按料液比为 1∶4,1∶8,1∶12,1∶16,1∶20,1∶24,1∶28(m∶V)加入提取剂。25℃,200 r/min振荡 2 h,4 000 r/min离心 5min。过滤,取滤液。以相应提取剂为空白,于534 nm波长下测其吸光值,按式(1)计算其红色素含量。
(5)提取时间的选择:取2 g绞碎后火龙果果皮,加40mL提取剂,25 ℃,200 r/min 分别振荡 10,20,30,40,50 min 和1,2 h,4 000 r/min离心5min。过滤,取滤液,于534 nm 波长下测其吸光值。
(6)提取温度的选择:取2 g绞碎后火龙果果皮,加40mL提取剂,于 20,30,40,50,60 ℃温度下 200 r/min 振荡提取50min,4 000 r/min离心 5 min,过滤,取滤液,于 534 nm 波长下测其吸光值。
(7)pH的选择:配置一定浓度的色素液,取该色素液10mL,用柠檬酸-磷酸氢二钠缓冲液调节其pH后定容至50mL,于534 nm波长下测其吸光值。
取2 g绞碎后火龙果果皮,加40 mL pH分别为2.0,3.0,4.0,5.0,6.0,7.0,8.0,9.0 的提取剂(用柠檬酸-磷酸氢二钠缓冲液调节pH),25℃,200 r/min振荡提取50 min,4 000 r/min离心5min,过滤,取滤液,于534 nm波长下测其吸光值。
1.3.2 色素的稳定性研究 色素原液:在最佳提取工艺下制备的色素液。
(1)温度对色素稳定性的影响:100 mL色素原液分别置于 5,25,45,65,85,100 ℃温度下,当保温 1,2,3,6,24 h 时,取色素液放置至室温,于534 nm波长下测其吸光值。
(2)光照对色素稳定性的影响 取100 mL色素原液,于不同环境(日光、暗箱)下静置,1,6,24,48,72,120 h 时分别测其色素液在534 nm波长下吸光值。
(3)糖浓度对色素稳定性的影响:取100 mL色素原液,按2%,4%,6%,8%,10%的浓度加入蔗糖。在室温下放置1,6,12,24,48,72,100 h,分别测其色素液在 534 nm 波长下的吸光值。
(4)氧气对色素稳定性的影响:取50mL离心管加入10mL色素原液,通纯氮气 10 min,放置 1,6,12,24,48,72,100 h分别测其色素液在534 nm波长下吸光值。另取10mL色素原液,通纯氧气10min,重复上述操作。
(5)食盐对色素稳定性的影响:取100 mL色素原液,分别加入 3,5,6 g 食盐。在室温下,放置 1,2,12,24,80 h 分别测其色素液在534 nm波长下吸光值。
(6)金属离子对色素稳定性的影响:取100 mL色素原液,分别加入不同浓度 KCl(1.0,1.5,2.0 g/kg)、FeSO4(5,10,15mg/kg)、MgSO4(0.01,0.03,0.05 g/kg)、CaCl2(1,3,5 g/kg)、醋酸锌(0.002,0.004,0.006 g/L),常温放置 1,2,12,24,80 h 时分别测其色素液在534 nm波长下吸光值。
(7)pH对色素稳定性的影响:用柠檬酸-磷酸氢二钠缓冲溶液调节色素原液的 pH 至 3.0,4.0,5.0,6.0,7.0,8.0,9.0;在室温下,放置2,4,6,8 d分别测其色素液在534 nm波长下吸光值。
1.4 数据分析
IBM SPSSStatistics v19.0.0:数据显著性分析;Microsoft Office Excel 2007:作图。
2 结果与分析
2.1 色素提取
2.1.1 确定火龙果果皮色素最大吸收波长 由图1可知,火龙果果皮色素的最大吸收波长为534 nm。
2.1.2 确定提取剂 由图2可知,蒸馏水对色素的提取效果最好,所以选择蒸馏水为提取剂。
图1 火龙果果皮色素紫外—可见光谱图Figure1 UV-visible spectra ofpigment from pitaya peel
2.1.3 确定料液比 由图3可知,增加料液比可显著性的提高红色素的单位浓度,提高提取效果;当料液比为1∶20(m∶V)时,继续增加料液比不能带来提取效果的显著性增加。所以从色素提取效果和节约成本两方面考虑,确定料液比为1∶20(m∶V)。
图2 提取剂对提取效果的影响Figure2 Effectofdifferentextratanton extracting pigment
图3 料液比对色素提取效果的影响Figure3 Effectofdifferentsolid-liquid ratioonextractingpigment
2.1.4 确定提取时间 由图4可知,色素提取效果随提取时间的加长有所提高,当提取时间为50min时,继续延长提取时间不能带来提取效果的显著性增加。因此确定提取时间为50min。
图4 提取时间对提取效果的影响Figure4 Effectof timeon extracting pigment
2.1.5 提取温度的确定 由图5可知,当提取温度为30℃时,色素提取效果最好,继续增加提取温度,色素提取效果呈显著性下降。因此选择30℃为提取温度。
2.1.6 确定提取pH 由图6可知,相同浓度的色素液在不同pH下其吸光值无差异,因此图7中色素吸光值的改变是色素浓度不同导致的,不同pH的提取剂对色素提取效果有影响;由图7可知,当pH为6时,色素提取效果最好。
图5 提取温度对色素提取效果的影响Figure5 Effectof temperatureon extracting pigment
图6 pH对色素的影响Figure 6 EffectofpH on pigment
图7 提取pH对色素提取效果的影响Figure 7 EffectofpH on extracting pigment
2.1.7 火龙果果皮色素提取最佳提取工艺 提取剂:蒸馏水;料液比:1∶20(m∶V);提取时间:50min;提取温度:30 ℃;提取pH 6。
2.2 色素的稳定性研究
2.2.1 温度对色素稳定性的影响 由图8可知,当温度为5,25℃时,24 h内色素变化不显著;当温度为45℃时,24 h后色素吸光值下降了0.408,为原液色素吸光值的56%;当温度为65℃时,24 h后色素吸光值下降了0.797,为原液色素吸光值的15%;当温度为85,100℃时,6 h后色素液红色褪去变为无色。因此常温以下利于色素的储存。
2.2.2 光照对色素稳定性的影响 由图9可知,48 h内,光照对色素稳定性的影响不大,随着时间的增加,日光条件下色素吸光值下降更显著。
2.2.3 糖浓度对色素稳定性的影响 由图10可知,蔗糖的加入并没有改变色素变化的趋势。在1~12 h内,蔗糖浓度越高,色素分解越快,说明蔗糖在此期间对色素有消色作用,在48~100 h时,加糖对色素的稳定性并没有显著性的影响。所以在色素的储存或使用中,蔗糖对色素稳定性的影响可忽略。
图8 温度对色素稳定性的影响Figure 8 Impactofdifferent temperature on the stability of the pigment
图9 光照对色素稳定性的影响Figure9 Impactofdifferent lighton thestabilityof thepigment
图10 糖浓度对色素稳定的影响Figure10 Impactofdifferentsuger concentration on the stability of the pigment
2.2.4 氧气对色素稳定性的影响 由图11可知,纯氧环境会加速色素的分解,无氧环境会增强色素的稳定性。因此提高色素的稳定性,可以添加抗氧化剂或将色素放在无氧条件下。
2.2.5 食盐对色素稳定性的影响 由图12可知,加入食盐后1 h,吸光度急剧下降,即对色素的消色作用明显(P<0.05)。但随着时间的增加,食盐对色素稳定性影响不显著(P>0.05)。所以在色素的储存或使用中,食盐对色素稳定性的影响可忽略。
2.2.6 金属离子对色素稳定性的影响 由图13~17可知,不同浓度K+、Fe2+、Mg2+对色素稳定性的影响不显著;而Ca2+能加快色素的降解,降低色素的稳定性;Zn2+有护色作用,0.002 g/L Zn2+护色作用最佳。
图11 氧对色素稳定性的影响Figuee11 Impactofoxygen on the stability of the pigment
图12 食盐对色素稳定性的影响Figuee12 Impactof table salton the stability of the pigment
图13 K+对色素稳定性的影响Figuee 13 ImpactofK+on the stability of the pigment
图14 Fe2+对色素稳定性的影响Figuee14 Impactof Fe2+on thestabilityof thepigment
2.2.7 pH对色素稳定性的影响 由图18可知,当pH在5~6时,色素保留率最高,色素稳定性最好;酸性环境比碱性环境利于色素稳定。
3 结论
(1)火龙果果皮色素提取最佳工艺为以蒸馏水为提取剂,料液比1∶20(m∶V),提取时间50 min,提取温度30℃,提取pH 6。与舒娜[11]的火龙果色素提取工艺相比,提取时间节约了30min,提取温度降低了10℃。
图15 Mg2+对色素稳定性的影响Figure 15 ImpactofMg2+on the stability of the pigment
图16 Ca2+对色素稳定性的影响Figure16 ImpactofCa2+on the stability of the pigment
图17 Zn2+对色素稳定性的影响Figure17 Impactof Zn2+on the stability of the pigment
图18 pH对色素稳定性的影响Figure18 ImpactofpH on the stability of the pigment
(2)火龙果红色素热稳定性差,常温以下能较好的保持色素的稳定,与杜志坚等[12]研究的火龙果红色素在80℃下较为稳定有差别;pH在5~6时色素最稳定,酸性环境(pH<7)比碱性环境(pH>7)利于色素稳定,该色素可用于低酸食品的着色。日光和氧气都可降低色素的稳定性,最好避光、避氧储存;2%~10%的糖和食盐对色素稳定性影响不显著,可用于饮料、冰淇淋等加糖食品的着色;金属离子对色素稳定性的影响:Ca2+可降低色素的稳定性,K+、Fe2+、Mg2+对色素的作用不显著,Zn2+有护色作用。
本课题研究了一些物理、化学因素对火龙果果皮色素稳定性的影响,找出了利于火龙果果皮色素使用和储存的条件,但就如何护色,降低色素的降解率有待进一步研究。
1 徐慧,王秋玲,韦刚,等.火龙果的保健功效及其研究进展[J].广西科学院学报,2010,26(3)383~385.
2 梁彬霞,赵文红,白卫东,等.火龙果果皮色素提取工艺研究[J].中国食品添加剂,2011(6):103~108.
3 邓仁菊,范建新,蔡永强.国内外火龙果研究进展及产业发展现状[J].贵州农业科学,2011,39(6):188~192.
4 刘朝英,谭清波,石延娅,等.罗甸县种植火龙果的气候适应性分析[J].南方农业,2012,6(3):16~18.
5 董银卯,何聪,芬王领.火龙果酵素生物活性的初步研究[J].食品科技,2009,34(3):192~196.
6 王蕊,高翔.火龙果低糖果脯的加工[J].食品与机械,2004,20(4):48~49.
7 宁恩创,刘小玲,林钦.火龙果果醋及其醋饮料的工艺研究[J].中国酿造,2008(3):82~84.
8 刘小玲,许时婴,王璋.火龙果色素的基本性质及结构鉴定[J].无锡轻工大学学报,2003,22(3):62~66.
9 Kirsten M Herbach,Florian C Stintzing,Reinholod Carle.Betalain stability and degradationstructural and chromatic aspects[J].Journal of Food Science,2006,71(4):41~48.
10 烟利亚.红龙果红色素稳定性及生物活性研究[D].福建:集美大学,2011.
11 舒娜.火龙果色素的提取、分离及其稳定性和结构判定研究[D].广州:华南理工大学,2003.
12 杜志坚,于新.火龙果红色素稳定性研究[J].华南农业大学学报(自然科学版),2003,24(4):79~83.