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猪场蚊子中乙型脑炎病毒的RT-PCR检测

2012-04-29魏燕鸣

湖北农业科学 2012年14期
关键词:蚊子猪场

魏燕鸣

摘要:收集湖北省与安徽省部分猪场的蚊子样本,用RT-PCR检测蚊子样本是否携带有乙型脑炎病毒,并对猪群乙型脑炎病毒抗体进行了检测。结果表明,53份蚊子样品中乙型脑炎病毒阳性样品为44份,表明这些猪场的蚊子广泛携带有乙型脑炎病毒。从阳性PCR产物中随机选出8个,并将其克隆到pEASY-T1载体中,得到5个阳性重组质粒,进行序列测定和进化树分析,结果表明阳性蚊子样本携带的都是基因Ⅲ型乙型脑炎病毒。猪场的1 401份血清样品的乙型脑炎病毒抗体阳性率为57.7%,说明这些猪场猪群的乙型脑炎病毒感染率较高。

关键词:猪场;蚊子;乙型脑炎病毒;RT-PCR

中图分类号:S852.65+9.6文献标识码:A文章编号:0439-8114(2012)14-3104-03

Detection of Encephalitis Virus in Mosquitoes from Pig Farms by RT-PCR

WEI Yan-ming

(College of Veterinary Medicine, Huazhong Agricultural University, Wuhan 430070, China)

Abstract: Mosquito samples were collected from pig farms in Hubei and Anhui province to test the existence of Japanese encephalitis virus(JEV) by RT-PCR. The results showed that 44 out of 53 samples were positive, illustrating that JEV was widely carried by mosquitoes in these pig farms. 8 of the 44 positive PCR products were randomly selected and cloned into pEASY-T1 vector for sequencing and phylogenetic tree analysis; the results revealed that these samples were all genotype Ⅲ JEV. The positive rate of JEV in 1 401 serum samples in the pig farms was 57.7%, indicating a high infection rate of JEV in these farms.

Key words: pig farms; mosquito; Japanese encephalitis virus; RT-PCR

乙型脑炎病毒(Encephalitis virus,EV)属于黄病毒科黄病毒属,是一种危害严重的人兽共患虫媒性传染病病原。该病毒具有很强的神经毒力,感染人后可以引起乙型脑炎。据估计,乙型脑炎全球每年平均发病5万例,死亡1.5万人,57%~68%的治愈者留有神经学后遗症[1],其中严重者占18%,约50%病人有记忆缺损,3/4病人有运动失调和智力机能受损[2,3]。近年来,随着人类活动及全球气候的变化,乙型脑炎的流行在世界范围内呈上升趋势。同时,乙型脑炎也是危害中国养猪业的重大疫病之一。

猪是乙型脑炎病毒的重要储存宿主和扩增宿主,也是乙型脑炎的主要传染源[4]。一般情况下乙型脑炎病毒的感染呈猪—蚊—人链状[5]。因此,通过监测湖北省与安徽省部分猪场蚊子中乙型脑炎病毒的流行与分布情况,为猪场乙型脑炎临床防控提供参考。

1材料与方法

1.1材料

1.1.1蚊子样品蚊子样品于2009年6月至8月采自湖北省和安徽省部分猪场。

1.1.2菌种与试剂菌株E. coli DH5α、pEASY-T1载体购自北京全式金生物技术有限公司、所用限制性内切酶、Taq DNA聚合酶、dNTPs、相应的缓冲液、DNA分子质量标准DL 5 000购自宝生物工程(大连)有限公司;DNA纯化回收试剂盒Cycle-Pure Kit、质粒小提试剂盒Plasmid Mini KitⅠ购自美国Omega生物技术公司,反转录试剂盒ReverTra Ace α TM购自东洋纺(上海)生物科技有限公司,乙型脑炎乳胶凝集抗体检测试剂盒购自武汉科前动物生物制品有限责任公司。

1.1.3引物根据乙型脑炎病毒E蛋白基因序列设计并合成RT-PCR所用的引物:P1:5′-GCT CTG AAA GGC ACA ACC-3′;P2;5′-CTG AAG GCA TCA CCA AAC-3′。扩增的靶序列为467 bp。

1.2方法

1.2.1样品总RNA的提取将采集的猪场蚊虫样本用匀浆器研磨,制成悬液,反复冻融3次,以

3 000 r/min离心15 min,取200 μL上清匀浆液,加入800 μL的Trizol细胞裂解液,振摇混匀,于室温放置10 min;加入200 μL氯仿,混合均匀,于室温放置10 min后,以12 000 r/min离心15 min;将上层溶液转入新的离心管中,加入等体积的异丙醇,于室温放置10 min,以12 000 r/min离心10 min;弃去上清液,加入1 mL体积分数为75%的乙醇,洗涤沉淀,以8 000 r/min离心5 min;弃去上清,于室温干燥5~10 min;加入20~30 μL DEPC水,溶解RNA,直接用于反转录或保存于-80 ℃冰箱备用。

1.2.2E蛋白基因的RT-PCR扩增20.0 μL的反转录反应体系如下:总RNA模板10.0 μL,5×RT Buffer 4.0 μL,10 mmol/L dNTPs 2.0 μL,Random Primer 0.5μL,ACE-α 0.5 μL,Inhibitor 0.5 μL,灭菌水2.5 μL。反应条件:30 ℃反应10 min,42 ℃反应30 min,99 ℃反应5 min。所得的cDNA保存于-80 ℃冰箱备用。

25.0 μL的PCR扩增体系如下:cDNA 3.0 μL,Taq DNA聚合酶 0.5 μL,10×PCR Buffer 2.5 μL,上游引物0.5 μL,下游引物0.5 μL,10 mmol/L dNTPs 0.5 μL,ddH2O 17.5 μL。将上述反应体系混匀后进行PCR扩增,反应条件:95 ℃预变性5 min;95 ℃变性45 s,55 ℃退火45 s,72 ℃延伸1 min,35个循环;72 ℃延伸10 min。反应结束后,取3~5 μL PCR产物进行琼脂糖凝胶电泳检测。

1.2.3重组质粒的构建PCR产物经0.8%琼脂糖凝胶电泳分离后,用DNA片段胶回收试剂盒回收。回收的PCR产物连接到pEASY-T1载体中,转化,然后筛选阳性克隆,提取重组质粒进行双酶切鉴定。

1.2.4重组质粒插入片段的序列分析将筛选出的阳性重组质粒送生工生物工程(上海)有限公司测序,测序结果用DNAStar软件分析,并与GenBank中登录的其他乙型脑炎病毒的E蛋白基因的核苷酸序列及推导的氨基酸序列进行同源性比较和分析。

1.2.5猪群乙型脑炎病毒抗体的检测从采集上述蚊子样品的猪场中随机采集猪血清1 401份,然后利用乙型脑炎乳胶凝集抗体检测试剂盒对被检血清进行乙型脑炎病毒抗体的检测。

2结果与分析

2.1蚊子样品的RT-PCR检测结果

提取样品的总RNA后进行RT-PCR反应,检测结果如图1。结果表明,从样品中扩增出了与预期片段大小相符的特异性片段,长度为467 bp。53份样品中阳性样品有44份,阳性率达83%,表明猪场蚊子携带乙型脑炎病毒的比例很高,猪感染乙型脑炎病毒的风险也很高。

2.2重组质粒的双酶切鉴定

纯化回收随机选取的8个阳性样本的PCR产物,连接到pEASY-T1载体上,转化后筛选获得阳性重组质粒,用Hin dIII和Eco RⅤ双酶切鉴定,分别得到了与预期目标大小相符的2个片段,结果表明,目的片段连接、转化正确。其中2个阳性样本的双酶切结果见图2。

2.3E蛋白基因片段的序列分析

将上述8个阳性重组质粒测序后,利用DNAstar软件对序列进行分析。结果表明,从命名为HB3C、HB22B、HB33A、HB41B、HB48B的阳性重组质粒扩增得到的5个插入序列的大小均为467 bp。同时,从网上下载了11株乙型脑炎病毒的E蛋白基因序列。用DNAstar生物学分析软件对这16个乙型脑炎病毒E蛋白基因序列进行同源性比较,绘制遗传进化树(图3)。结果表明,16个乙型脑炎病毒E蛋白基因序列分别存在于两个分支上,其中HB22B与HB48B的来源一致,与AY376461的遗传距离较近。而样本HB3C与HB33A的来源一致,HB41B与网上选取的11株乙型脑炎病毒的遗传距离较近。进一步分析发现,5个阳性蚊子样本携带的均为基因Ⅲ型乙型脑炎病毒。

2.4乙型脑炎病毒抗体检测结果

乳胶凝集试验检测结果显示,在1 401份临床血清样品中,乙型脑炎抗体阳性样品为808份,阳性率为57.7%。

3小结与讨论

通过RT-PCR检测方法检测了2009年在湖北省与安徽省两省部分猪场采集的蚊虫样本中的乙型脑炎病毒E蛋白基因片段,阳性检出率达到了83%。结果显示,所选猪场蚊子普遍携带乙型脑炎病毒,鉴于蚊子在乙型脑炎病毒传播中的中间宿主作用,所选猪场的猪群感染乙型脑炎病毒的风险较大。同时,为了进一步查明这些猪场猪群的乙型脑炎病毒血清流行病学情况,还利用乳胶凝集试验对这些猪场的1 401份血清样品进行了检测,结果表明乙型脑炎病毒抗体阳性率为57.7%,说明这些猪场猪群的乙型脑炎病毒感染率较高。

有资料报道,乙型脑炎病毒分为4型,来自于泰国北部及柬埔寨地区的毒株属于基因Ⅰ型;来自于泰国南部、马来西亚、印度尼西亚的毒株属于基因Ⅱ型;来自于日本、中国等地区的毒株属于基因Ⅲ型;部分来自印度尼西亚的JKT6468毒株独自形成了基因Ⅳ型[6]。但是近十多年来,乙型脑炎病毒基因型的地域有了新的变化。如韩国和日本已经报道发现基因Ⅰ型乙型脑炎病毒[7]。研究在进行乙型脑炎病毒检测的同时,随机选取了8个阳性样本,通过RT-PCR扩增出了乙型脑炎病毒E蛋白基因片段,并将E蛋白基因片段连接到pEASY-T1载体上,对得到的阳性重组质粒进行测序,最后得到5个正确质粒。用生物学分析软件DNAstar对从GenBank上下载的11株其他乙型脑炎病毒的E蛋白基因序列以及5个正确的阳性重组质粒测序结果进行了同源性比较和分析,并绘制了遗传进化树。结果表明,检测的蚊子携带的乙型脑炎病毒均属于基因Ⅲ型,说明在中国湖北、安徽两省的基因Ⅲ型乙型脑炎病毒可能属于主要基因型。

综上所述,利用RT-PCR方法对湖北、安徽两省部分猪场蚊子携带乙型脑炎病毒的情况进行了检测,并利用乳胶凝集试验对这些地区猪群乙型脑炎病毒抗体进行了评价,初步证实了湖北、安徽两省猪场蚊子乙型脑炎病毒的携带率较高,猪群乙型脑炎病毒感染率也较高,从而为更深入阐明华中地区猪群乙型脑炎病毒的分子流行学与血清流行学规律打下了基础。

参考文献:

[1] KAUR R,RAUTHAN M,VRATI S. Immunogenicity in mice of a cationic microparticle-adsorbed plasmid DNA encoding Japanese encephalitis virus envelope protein[J]. Vaccine,2004, 22(21-22):2776-2782.

[2] 俞永新.地区性国际乙型脑炎控制策略会议简介[J]. 中国生物制品学杂志,1996,9(1):46-48.

[3] 马士恒,陈宇萍,王占国. 乙型脑炎研究进展[J]. 中国人兽共患病杂志,2001,17(1):95-97.

[4] 殷震,刘景华. 动物病毒学[M]. 第二版.北京:科学出版社,1997. 631-640.

[5] 张中,杨厚安,段小卫,等. 流行性乙型脑炎的防控[J]. 畜牧与饲料科学,2010,31(11-12):151-152.

[6] SOLOMON T,NI H,BEASLEY D W,et al. Origin and evolution of Japanese encephalitis virus in Southeast Asia[J]. J Virol,2003,77(5):3091-3098.

[7] NGA P T,PARQUET M D,CUONG V D,et al. Shift in Japanese encephalitis virus(JEV) genotype circulating in Northern Vietnam:implications for frequent introductions of JEV from Southeast Asia to East Asia[J]. J Gen Virol,2004,85(6):1625-1631.

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