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HMGB1在肾透明细胞癌中的表达及其临床意义

2012-01-01张明星窦中岭史海军王晓彬

中国肿瘤外科杂志 2012年2期
关键词:免疫组化分化淋巴结

张明星, 窦中岭, 史海军, 刘 辉, 王晓彬

肾细胞癌(renal cell carcinoma,RCC) 是泌尿生殖系统常见的恶性肿瘤之一,占泌尿系肿瘤的第二位,其患病率呈逐渐增高趋势。肾透明细胞癌(renal clear cell carcinoma,RCCC)是肾细胞癌中最常见的一种病理类型,占RCC的60%~80%,大多数发生于中老年人,死亡的主要原因是肿瘤的浸润和转移,且患者易在没有任何临床症状的情况下出现广泛转移,故严重威胁着我国中老年人的健康。因此探讨RCCC的浸润转移机制尤为重要,发现敏感性和特异性均理想的肿瘤标记物对此有着极为重要的意义。本研究通过检测高迁移率族蛋白B1(HMGB1)在RCCC中的表达情况及其与临床病理参数的相关性,阐述其在RCCC发生发展和浸润转移中的作用。

1 资料与方法

1.1 一般资料

选取河南科技大学第一附属医院泌尿外科2009年至2011年间经病理证实为RCCC的手术患者70例,其中男性46例,女性24例,年龄35~87岁,平均年龄60岁。常规术后甲醛固定石蜡包埋,全部标本HE染色后均经两位有经验的病理医师诊断。按2002年美国抗癌协会(AJCC)肾细胞癌TNM分期标准:Ⅰ期25例,Ⅱ期15例,Ⅲ期21例,Ⅳ期9例;组织学分级:高分化32例,中分化21例,低分化17例;有淋巴结转移15例,无淋巴结转移55例。同时,选取癌旁(距癌组织边缘3 cm)的正常肾组织40例;另收集同期在我院因外伤或肾结石行开放手术的20例正常肾组织。所有患者术前均未接受放疗、化疗和免疫治疗,全部标本HE染色后均经两位有经验的病理医师诊断。

1.2 方法

1.2.1 免疫组化 所有标本均经4%甲醛固定,石蜡包埋,连续切片,厚度为4 μm,采用免疫组化二步法检测。一抗浓缩型兔抗人HMGB1多抗(稀释度为1∶100)和二抗生物素标记的兔抗小鼠IgG(工作浓度为1∶2 000)均购自武汉博士德生物工程有限公司。DAB显色,苏木素复染、脱水、透明、封片。每例标本切5张,每次染色时均用已知阳性切片作阳性对照,用PBS代替一抗作阴性对照。

1.2.2 结果判定 HMGB1表达位于细胞核,表现为浅黄、棕黄或棕褐色。用双盲半定量法评估其染色,无阳性细胞为(-),阳性细胞数占肿瘤细胞数不超过25%为(+),25%~50%为(++),50%以上为(+++)。

1.3 统计学方法

所有数据均用SPSS11.5 统计软件处理,多组有序分类变量采用Kruskal-Wallis检验,各组之间两两比较采用Mann-Whitney检验,按不同临床病理指标进行分组,各组间的比较采用χ2检验,检验水准α=0.05。

2 结果

2.1 免疫组化

表1可见,HMGB1在正常肾组织、癌旁组织、RCCC中的阳性表达率呈现逐渐升高的趋势。依次为25.0%、37.5%、82.8%,RCCC组的表达较正常肾组织组、癌旁组织组明显升高,差异均有统计学意义(P<0.05),而正常肾组织组与癌旁组织组之间的差异无统计学意义(P>0.05),见表1,图1~3。

表1 HMGB1在正常肾组织、癌旁组织及RCCC组织中的表达

2.2 RCCC患者HMGB1表达与临床病理指标的关系

在70例RCCC中,HMGB1蛋白阳性表达率在临床分期Ⅲ期和Ⅳ期高于Ⅰ期和Ⅱ期,有淋巴结转移组高于无淋巴结转移组,肿瘤直径≥5 cm组高于肿瘤直径<5 cm组,肿瘤有坏死组高于无坏死组,差异均有统计学意义(P<0.05),而与年龄、性别、分化程度、肿瘤所在部位均无关,差异无统计学意义(P>0.05),见表2。

表2 RCCC患者HMGB1表达与临床病理指标的关系

3 讨论

高迁移率族蛋白(high mobility group protein,HMG)是根据其在聚丙烯酰胺凝胶电泳中有很高的迁移率而得名,是与染色体结合的非组蛋白成分之一。HMGB1基因定位于染色体13q12,HMGB1蛋白含215个氨基酸残基,该蛋白在翻译后进行糖基化、酰基化、甲基化、磷酸化等修饰加工活动。根据结构特点,HMG超家族可分为HMGB、HMGN、HMGA三类。真核细胞染色质中含有丰富的HMGB1,且在进化过程中高度保守,其氨基酸序列同源性在大鼠和小鼠间达100%,在人和啮齿动物间高达99%。HMGB1分子包含2个“L”型HMG box结构域,HMG Box A和HMG Box B均包含80~90个氨基酸残基,中间有相似的重复氨基酸序列,呈较强的碱性,为DNA非特异性结合区,其酸性的C-末端包含超过30个连续的天冬氨酸和谷氨酸残基,借以完成和其他蛋白质之间交互作用及调节HBGB1与DNA结合[1]。HMGB1主要分布于细胞核内,参与多种基本的生物学过程如DNA复制、转录、重组及细胞的分化、成熟等。他与DNA结合,可稳定核小体形状,作为基因和组织特异性的转录调控因子有调节转录活性的作用[2]。尽管HMGB1蛋白结构缺乏缩氨酸先导肽,且不能穿出内质网和高尔基细胞器,但仍可释放到细胞浆,甚至细胞外。HMGB1具有多重“身份”[3]:一种抗凋亡蛋白;当他从细胞核内被动释放,则是一种创伤细胞死亡信号;活跃分泌的HMGB1是一种细胞因子,作为应激信号和炎症因子诱导细胞因子,激活炎症细胞;HMGB1在细胞外的其他信号角色,诸如可溶性分化因子等。研究表明,多种肿瘤细胞中均发现HMGB1蛋白表达,HMGB1与癌细胞的发生发展侵袭和转移密切相关[4]。Xin等[5]经免疫组化及Western blot分析显示,HMGB1在宫颈鳞癌组织中,尤其是发生转移的宫颈鳞癌组织中呈强阳性表达。Sharma等[6]通过分析发现,HMGB1的表达水平与肿瘤的发生阶段相关,肿瘤发生早期HMGB1表达率为20%,而晚期表达率为80%。Wu等[7]利用免疫组化分析鼻咽癌临床病理标本,HMGB1高表达率为53.6%,且HMGB1过表达与肿瘤临床T级、N级及远处转移显著相关。

针对HMGB1在肿瘤细胞中的过度表达,目前至少有两种解释:HMGB1的过度表达可以导致与肿瘤表型基因的反常表达,从而引起肿瘤;或者,在已经获得肿瘤表型基因的细胞中,只有那些存在HMGB1过度表达的细胞才能幸免于细胞凋亡,继续生长,引起肿瘤。另外一种可能是,过度表达HMGB1的细胞或者由于坏死(如因为缺氧)而被动释放,或者主动分泌,均可将HMGB1释放入细胞外介质中。细胞外HMGB1继而促进邻近肿瘤细胞或肿瘤支持血管增殖[8]。

本研究结果发现,HMGB1蛋白在肾透明细胞癌中的表达率为82.8%,在癌旁组织中的表达率为37.5%,在正常肾组织中表达率为25.0%,说明HMGB1表达可能与肾组织良恶性行为有关。肿瘤直径≥5 cm组较<5 cm组HMGB1阳性率明显增加,肿瘤有坏死组较肿瘤无坏死组HMGB1阳性率明显增加,说明HMGB1的表达可能抑制细胞凋亡,加速了肿瘤的生长,同时HMGB1促进肿瘤抗原的呈递和树突状细胞(DC)的成熟,从而激发保护性的抗肿瘤免疫反应,使肿瘤细胞坏死。可以推测HMGB1的表达在RCCC的发生发展中起着双重作用[9]。此外,RCCC中HMGB1高表达在有淋巴结转移组、高分期组中比例明显高于无淋巴结转移组和低分期组,提示HMGB1可能以某种机制参与RCCC的浸润、转移过程,这些表现与其在结、直肠肿瘤中的表现相似[10]。同时我们的研究发现,虽然HMGB1在低分化癌组织中的表达强于高、中分化癌组织,但差异无统计学意义,说明其与肿瘤的分化程度可能无明显关系。此外,HMGB1表达与年龄、性别、肿瘤部位无关。近来有研究发现HMGB1在肿瘤的侵袭期间起着关键作用,该蛋白涉及肿瘤转移的形成及肿瘤的生长[11]。肿瘤侵袭期间HMGB1通过与其配体晚期糖基化终产物受体结合,激活p38、SPA/JNK和p42/p44MAPK等信号通路,继而引起基质金属蛋白酶MMP-2和MMP-9激活,后两者是纤维蛋白溶酶激活级联的下游目标,能使细胞外基质降解促进肿瘤浸润、转移。通过阻断HMGBl信号传导通路能显著抑制肿瘤的生长、浸润及转移,并能抑制免疫缺陷鼠自发形成肿瘤。

作为HMGB1配体的RAGE的过表达也被发现与肿瘤相关,尤其是浸润性胃癌[12]。对于前列腺癌和结直肠癌患者来说,HMGB1和RAGE的联合表达预示肿瘤的转移倾向和较差的预后[13-14]。日本学者研究发现,HMGB1的配体RAGE在具高迁移能力的胰腺癌细胞株MIA PaCa-2和PANC- l中高表达,而在低迁移能力BxPC-3中几乎没有表达[15]。迄今为止,发现几乎所有的肿瘤细胞中都有HMGB1的表达上调,且其配体RAGE在不同的肿瘤细胞中也高表达,给予HMGB1或RAGE抑制剂,可明显抑制某些肿瘤细胞的增殖[16]。在肾透明细胞癌中可能也存在着这种机制,提示应用HMGB1选择性抑制剂是防治肾癌的可行性途径之一,可为临床治疗肾癌提供新的思路和方法。

总之,由于HMGB1被认为是一种普遍存在的染色质蛋白质,而且目前已证明在大多数肿瘤中过度表达,并与肿瘤的发生、浸润及转移密切相关,因此HMG1具有极大的潜力作为肿瘤预后标志物,或者肿瘤基因治疗的靶基因。本研究结果提示在RCCC中可以检测这个指标,将其作为临床工作中判断RCCC恶性程度和预后估计上的有效分子指标;HMGB1高表达提示患者预后不良,这对RCCC治疗方案的选择和预后评估有重要意义,但是还需要进一步的研究证实。

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