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结核分枝杆菌Ag85A口服脂质体DNA疫苗安全性的初步验证

2011-01-12姜燕

微生物学杂志 2011年6期
关键词:脂质体质粒基因组

姜燕

(沈阳大学生物与环境工程学院,辽宁沈阳110044)

DNA疫苗的安全性是人们关心的重要问题。一个最重要的理论危机是质粒DNA与宿主基因组整合的问题,因为当外源DNA与基因组整合后,可能因插入活性癌基因、或活化宿主原癌基因、或使抑癌基因失活,或引起染色体断裂,或染色体重排而致染色体不稳定,从而导致肿瘤细胞形成。因此DNA疫苗可否与染色体整合仍是有争议的焦点问题[1-2],迫切需要开展疫苗佐剂和接种设备的安全性评价[3],实验中以既往的实验为基础,构建了脂质体pcDNA3.1+/Ag85A DNA疫苗,由于经免疫组化及间接免疫荧光方法均检测出Ag85A基因的表达产物广泛分布于脾、小肠组织[4],处死免疫动物后,取质粒存在最丰富的2个部位,即脾、小肠,提取基因组中DNA,并以此为模板进行PCR的扩增。主要从基因整合方面进行了初步探讨,即观察以pcDNA3.1+/Ag85A对小鼠进行免疫后,重组体DNA即pcDNA3.1+/Ag85A可否与小鼠的染色体基因组发生整合,对此疫苗的安全性进行初步评价。

1 材料与方法

1.1 材料

1.1.1 实验动物C57BL/6小鼠,6~8周龄,雄性,由上海中国科学院动物所提供。

1.1.2 重组口服pcDNA3.1+/Ag85A疫苗pcDNA3.1+/Ag85A口服阳离子脂质体DNA疫苗由本实验室构建[5],根据结核分枝杆菌Ag85A的基因序列自行设计了一对PCR引物,以人型结核杆菌H37Rv标准毒力株的DNA为模板,经过PCR扩增出Ag85A目的基因,纯化PCR产物TA克隆入载体pUCm-T,蓝白斑筛选将回收的PCR产物用限制性核酸内切酶XhoⅠ和BamHⅠ双酶酶切后,经T4 DNA连接酶作用,与真核表达载体pcDNA3.1+连接,筛选得到的阳性克隆经DNA测序鉴定,如经证实为Ag85A基因,克隆到载体pcDNA3.1+中的CMV启动子的下游,成功构建并鉴定的真核表达载体pcDNA3.1+携带Ag85A基因的重组体,命名为pcDNA3.1+/Ag85A,将其转化大肠埃希菌并使之大量扩增,并采用无内毒素提取质粒方法收集此重组质粒DNA,以阳离子脂质体为运载体,制成可供口服的DNA疫苗。

1.1.3 仪器设备UNIQ-10柱式动物基因组DNA抽提试剂盒,购自上海生工生物工程技术服务有限公司。

1.2 方法

1.2.1 动物口服免疫接种雄性小鼠随机分成2组,1组口服生理盐水做对照,另1组口服脂质体pcDNA3.1+/Ag85A DNA疫苗,C57 BL/6小鼠12只,雄性,随机分为2组,每组6只,NS-生理盐水组;L+JA-脂质体包裹的重组质粒组,经口灌饲100 μg重组质粒pcDNA3.1+/Ag85A共免疫3次,每次间隔2周。

1.2.2 脾脏、小肠基因组DNA抽提末次免疫后7 d收集各组免疫小鼠的血清及脾脏、小肠组织。①组织匀浆制备:分别取30 mg脾及小肠组织,加600 μL TE缓冲液,手工匀浆数次;②细胞裂解:吸取300 μL匀浆加600 μL细胞裂解液,混匀;③消化蛋白:再加入9 μL蛋白激酶K混匀,置于55℃水浴30 min以上,其间上下混匀几次;④氯仿抽提:加入600 μL氯仿,轻柔上下混匀,不能太剧烈,以保证DNA的完整性;⑤沉淀:在台式离心机上,10 000 r/min,室温离心2 min。此时应分成3层,基因组DNA在上层中。取500 μL上清液,置于无菌1.5 mL离心管中,加入500 μL沉淀液,混匀多次至出现絮状物,室温静置2 min。10 000 r/min,离心2 min;⑥去除RNA:弃除上清,注意不要倒掉沉淀,立即加入100 μL 1.2 mol/L NaCl,轻轻振荡直至DNA样品完全溶解,加入3 μL RNase A,置于37℃10 min,以去除RNA;⑦沉淀DNA:加入300 μL冰冷乙醇(终浓度为75%,沉淀效果最佳),-20℃放置10 min。10 000 r/min,离心2 min。倒掉乙醇,倒置室温干燥10~15 min。DNA用TE缓冲液或100 μL三蒸水溶解。

1.2.3 引物设计根据GenBank中Ag85A基因序列,PCR所用引物:上游引物5'-CAGGATCCGCGCGCGCAGTCTGACCTAGTTGAGGATGC-3',含BamHⅠ酶切位点;下游引物5'-GTCTCGAGAGGGCCGCCGCCGTTAATCGCT-3'含XhoⅠ酶切位点,并在ORF终止密码子之后。Ag85A含信号肽序列。确保克隆基因开放读码框正确。

1.2.4 重组质粒整合情况检测以基因组核酸为模板做PCR,每次实验设一阳性对照管,其模板为1 μg Ag85A质粒核酸,所有PCR反应管除模板不同外,其余完全相同,94℃预变性15 min,热启动后转入94℃变性1 min,60℃退火1.5 min,72℃延伸2 min,进行30个循环,72℃延伸10 min后终止反应。反应结束后取5 μL产物于1%琼脂糖凝胶电泳,检测是否扩增出目标核酸片段。

2 结果与分析

2.1 一般症状

受试动物实验组与对照组之间,受试期与恢复期之间体重、食量、一般活动等方面分别比较均未见明显改变。疫苗口服免疫后,小鼠无明显不良反应,初步提示了口服疫苗的安全性。

2.2 脏器重量

受试小鼠脏器重量与对照组相比,P>0.05,均无明显差异,见表1。表明本疫苗对受试动物的脏器重量未产生与药物相关的影响。

表1 受试小鼠脏器重量与对照组相比的实验结果Table 1 organ weights of mice between the experimental group and control group

2.3 基因组DNA与重组体整合情况的PCR检测(图1)

所有小鼠的全部受检组织内PCR检测均为阴性。提示初次免疫后7周质粒DNA并未与基因组DNA发生整合,间接说明质粒DNA整合到宿主细胞基因组并使细胞发生恶性转化的可能性很小。

图1 重组体pcDNA3.1+/Ag85A与口服免疫小鼠脾、肠组织基因组DNA整合情况分析Fig.1 The analysis of integration possibility of pcDNA3.1+/Ag85A and spleen,intestine genome respectively

M:分子量标准;1:免疫小鼠基因组DNA;2:为PCR扩增阳性对照组(1 100 bp)-Ag85A基因;3:生理盐水阴性对照组脾脏提取物与基因组DNA的整合;4:免疫小鼠脾脏基因组DNA与重组体pcDNA3.1+/Ag85A的整合情况;5:生理盐水阴性对照组小肠提取物与基因组DNA的整合;6:免疫小鼠小肠基因组DNA与重组体pcDNA3.1+/Ag85A的整合情况

3 讨论

目前DNA疫苗研究取得了重大进展,DNA疫苗运用到动物模型上已经取得了较好的效果,而且几乎在所有的动物试验上并未发现有任何副作用。但还有很多问题需要解决,如疫苗的质量控制、质量标准及安全性等。其中最为重要的是安全性问题[6],即将开展以下几个方面研究:①质粒DNA可能诱导自身免疫反应:尽管人和动物的许多试验表明质粒DNA诱发自身免疫性疾病的可能性较小,而且目前已有一项DNA疫苗的接种研究表明,免疫动物血清中未检测到抗DNA抗体,但在DNA疫苗试验时,仍应进行抗DNA抗体的检测[7];②持续表达外源抗原可能产生一些不良后果:质粒长期过高水平地表达外源抗原,可能导致机体对该抗原的免疫耐受或麻醉。成年动物尚未见到因DNA疫苗接种而诱发免疫耐受的例子。但新生动物的免疫系统尚未成熟,可能将外源抗原认为是自身成分而形成耐受。另外,持续低水平表达的抗原可能会被血中的中和抗体清除,不能引起足够的免疫应答,从而使疫苗的预防作用得不到充分的体现[8]。

实验结果显示质粒重组体并未与基因组DNA整合,间接说明pcDNA3.1+/Ag85A DNA疫苗对免疫动物并没有潜在的致癌作用,同时受试动物实验组与对照组之间,不论受试期还是恢复期之间体重、食量、一般活动等方面未见明显改变。受试小鼠脏器重量(相对重量和绝对重量)与对照组相比,无明显差别。表明本疫苗对受试动物的脏器重量未产生与药物相关的影响[13]。重组DNA疫苗不存在与宿主染色体基因组DNA发生整合诱生肿瘤细胞的危险,为DNA疫苗安全性及应用奠定了基础。脂质体pcDNA3.1+/Ag85A DNA未与宿主基因组整合,疫苗具有良好的安全性。

[1] Stephenson I,Gust I,Kieny MP,et al.Development and evaluation of influenza pandemic vaccines[J].Lancet Infect Dis,2006,6(2):71-72.

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[4] Danan Wang,Jia Xu,Yonghui Feng,et al.Liposomal oral DNA vaccine elicts immune response[J].Vaccine,2010(28):3134-3142.

[5] 姜燕,吕昌龙.真核表达Ag85A基因重组体的构建[J].微生物学杂志,2009,29(2):56-62.

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