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皮肤恶性黑色素瘤组织miR-205、miR-367 表达及其临床意义

2024-01-24张丽君严伟恒黄国庆孙充洲电子科技大学医学院附属绵阳医院绵阳市中心医院烧伤整形外科四川绵阳621000

局解手术学杂志 2024年1期
关键词:原发灶引物淋巴结

张丽君,严伟恒,黄国庆,孙充洲 (电子科技大学医学院附属绵阳医院/绵阳市中心医院烧伤整形外科,四川 绵阳 621000)

恶性黑色素瘤(malignant melanoma,MM)为侵袭性强的恶性肿瘤,多发生于皮肤、黏膜等组织,易转移,患者预后较差[1]。皮肤恶性黑色素瘤(cutaneous malignant melanoma,CMM)为原发灶在皮肤的MM,发病率占全身恶性肿瘤的1%~3%,且呈上升趋势[2]。虽然医疗诊断技术不断改进,但多数患者确诊时已发生转移。故寻找新型有效的治疗靶点成为临床研究热点。miRNAs 为非编码小分子RNA,参与生命活动的调控过程,尤其是在肿瘤发生发展中发挥重要作用[3]。miRNAs 在不同组织中有不同生物学作用,不同miRNAs 可靶向调控不同信号通路,发挥基因调控作用[4]。miR-205是在多物种间高度保守的miRNA,具有抑制肿瘤的作用[5]。研究发现,miR-205在乳腺癌[6]、前列腺癌[7]中表达下调。miR-367 位于4 号染色体q25区,其在肿瘤、心血管疾病等中具有重要调控功能,在不同疾病中可通过靶向调节靶基因发挥不同生物学作用,其可增强血管平滑肌细胞增殖能力,并抑制肿瘤细胞凋亡[8]。但关于miR-367 在CMM 组织中的作用尚不清楚,需要进一步研究。因此,本研究通过分析miR-205、miR-367 在CMM 组织中的表达情况,并分析其与患者临床病理特征及预后的关系,旨在为临床诊疗提供参考依据。

1 资料与方法

1.1 临床资料

选取2013年5月至2019年12月我院收治的85例CMM 患者,以莫氏手术术中切除的肿瘤组织为CMM组。其中男48 例,女37 例;年龄29~77 岁,平均(56.68±2.31)岁;肿瘤位置:四肢39 例,非肢端46 例;美国癌症联合会第7 版肿瘤分期[9]:Ⅰ期27 例,Ⅱ期33 例,ⅢA~B 期25 例;溃疡33 例,无溃疡52 例;淋巴结转移36 例,未转移49 例。纳入标准:①符合《中国黑色素瘤诊治指南(2011 版)》中CMM 的诊断标准[10],且经病理检查确诊;②临床分期为ⅠA~ⅢB 期,具有手术指征;③术前无放疗、激光治疗等;④临床资料完整。排除标准:①合并严重慢性病;②合并其他恶性肿瘤;③原发灶于皮肤外;④存在活动性病毒或细菌感染;⑤合并精神疾病。另选取同期于本院治疗的80 例皮肤良性色素痣患者的痣组织标本作为对照组,其中男45 例,女35 例;年龄27~76 岁,平均(56.73±2.46)岁;发病位置:四肢41 例,非肢端39 例。2 组患者性别、年龄、发病位置比较,差异无统计学意义(P>0.05)。本研究经我院伦理委员会批准[2013 伦(审)N0406011],患者对本研究知情同意。

1.2 临床资料收集

收集CMM 患者性别、年龄、溃疡、肿瘤直径、临床分期、肿瘤侵袭性、Karnofsky 功能状态(Karnofsky performance status,KPS)评分(总分0~100 分,得分越低表示患者健康状态越差)、原发灶厚度、Clark 分级、淋巴结转移等临床资料。CMM 患者术后定期电话或门诊随访3 年,随访截止时间为2022 年12 月31 日或患者死亡;统计患者总生存时间,即从出院后至死亡或随访结束的时间。

1.3 qRT-PCR检测miR-205、miR-367的相对表达量

按TRIzol 试剂盒说明书提取组织总RNA,按mRNA 反转录试剂盒将2 µg RNA 反转录为cDNA,然后按SYBR Green PCR master mix 试剂说明书配置反应体系,加样。反应体系:SYBR Premix Ex Taq Ⅱ(2×) 10 µL、cDNA 2.0 µL、上下游引物各0.8 µL、ROX Reference Dye Ⅱ(50×) 0.4 µL、ddH2O 6.0 µL。荧光定量PCR 反应条件:95 ℃ 30 s,95 ℃ 15 s,60 ℃15 s,72 ℃ 15 s,共40 个循环,然后72 ℃反应10 min。以GAPDH 为内参。 miR-205 正向引物5' -AG AACTTATACTGAGTGAGG-3',反向引物5'-GAAGTC AAGATCGAATTG-3';miR-367 正向引物5'-TTCTCCG AACTTGTCACGTTT-3',反向引物5'-ACGTGACACGT TCGGAGAATT-3';GAPDH 正向引物5'-GAAGGTGA AGGTCGCAGTC3',反向引物5'-GAAGATGGTGATG GGATTTC-3'。反应结束后收集数据,分析获得的Ct值,采用2-△△Ct法计算miR-205、miR-367 的相对表达量。

1.4 统计学方法

采用SPSS 25.0 软件分析数据,计量资料以均数±标准差(±s)表示,采用独立样本t检验;计数资料以率(%)表示,采用χ2检验。Kaplan-Meier法绘制患者的生存曲线,采用Log-rank检验分析生存率;COX比例风险回归模型分析预后的影响因素。P<0.05 为差异有统计学意义。

2 结果

2.1 不同组织miR-205、miR-367表达水平的比较

CMM 组患者miR-205 表达水平低于对照组(P<0.05),miR-367 表达水平高于对照组(P<0.05),见表1。

表1 不同组织miR-205、miR-367表达水平的比较(±s)

表1 不同组织miR-205、miR-367表达水平的比较(±s)

组别对照组CMM组n 80 85 tP miR-205 1.02±0.15 0.46±0.07 34.648<0.001 miR-367 1.12±0.20 2.23±0.53 19.319<0.001

2.2 患者miR-205、miR-367表达与临床病理特征的关系

以miR-205、miR-367 在CMM 组织中表达水平的均数为临界值,将患者分为miR-205低表达组(≤0.46,52 例)、高表达组(>0.46,33 例)及miR-367 高表达组(≥2.23,59例)、低表达组(<2.23,26例)。

miR-205 低表达组患者溃疡、临床分期高、肿瘤侵袭、KPS 评分低、原发灶厚、Clark 分级高、淋巴结转移的比例高于miR-205 高表达组(P<0.05),miR-367 高表达组患者以上指标比例高于miR-367 低表达组(P<0.05);miR-205、miR-367 表达与患者性别、年龄、肿瘤直径无关(P>0.05),见表2。

表2 患者miR-205、miR-367表达与临床病理特征的关系[例(%)]

2.3 患者生存分析

患者术后随访3 年,中位时间为28.3 个月,失访1 例。Kaplan-Meier生存曲线显示,miR-205 高表达组患者3 年生存率为69.70%(23/33),高于低表达组患者的50.98%(26/51);miR-367 低表达组患者3 年生存率为69.23%(18/26),高于高表达组患者的53.45%(31/58),差异均有统计学意义(P<0.05),见图1。

图1 Kaplan-Meier生存曲线

2.4 患者预后的影响因素分析

单因素分析显示,临床分期、肿瘤侵袭性、KPS 评分、原发灶厚度、Clark 分级、淋巴结转移、miR-205、miR-367为预后的影响因素(P<0.05)。COX多因素分析显示,临床分期高、KPS 评分低、Clark 分级高、有淋巴结转移及miR-367 升高为影响患者预后的危险因素(P<0.05),miR-205 升高为其保护因素(P<0.05),见表3。

表3 患者预后的单因素与多因素COX比例风险回归分析

3 讨论

CMM 为来源于皮肤黑色素细胞的恶性肿瘤,隐匿性及恶性程度较高,易发生血管、淋巴结转移,且病情发展迅速,严重威胁患者的健康[11-12]。CMM 的临床治疗以手术为主,患者确诊后应尽快行原发灶扩大切除手术,临床分期Ⅲ期的患者在扩大切除的基础上还应实施区域淋巴结清扫;化疗也是其常用的治疗方式,但仅少部分患者对化疗敏感;靶向治疗为近年来快速发展的方法,针对性较强,故CMM 靶向基因突变成为目前临床研究的热点[13]。

miRNAs 为具有基因调节功能的短链非编码RNA,通过转录后抑制调节基因表达,可直接切割mRNA 或直接翻译抑制其目标蛋白编码基因[14]。特定miRNAs 与多种生理、病理过程有关[14]。miRNAs 对癌症的影响取决于其靶基因的功能性质,可分别通过靶基因的功能性质产生抑癌或致癌效果[15]。miR-205 具有调节细胞增殖、迁移和侵袭等多种功能,在癌症中其表达发生改变[7]。当miR-205表达下调时,鉴定其靶基因可能有助于判断CMM 转移扩散的分子途径,该途径可以为阻断CMM的转移提供新的潜在治疗靶点[16]。研究指出,miR-205 在前列腺癌中表达下调,上调其表达后能抑制癌细胞生长、转移等过程[7]。据报道,miR-367 参与了不同癌症的发生和转移,起促癌或抑癌作用[17-18]。研究显示,miR-367 过表达可促进癌细胞的生长,与非小细胞肺癌患者不良预后相关[18]。目前,临床研究中关于miR-205、miR-367 在CMM 中的作用尚不清楚。本研究结果显示,CMM 组患者miR-205表达水平低于对照组,miR-367表达水平高于对照组,提示miR-205、miR-367 与CMM 的发生有关,可能是miR-205、miR-367 参与调控CMM 细胞增殖过程。研究显示,miR-205 能调节细胞增殖、侵袭、转移等多个过程[19],miR-205 表达下调可促使CMM 的转移扩散,缩短患者的生存时间;miR-367 在CMM 细胞中一个重要的靶点为PTEN,通过靶向PTEN 基因发挥促癌作用,参与癌细胞的增殖、迁移等恶性行为[20]。

本研究结果显示,miR-205、miR-367 表达与患者溃疡、临床分期高、肿瘤侵袭、KPS 评分低、原发灶厚、Clark分级高及淋巴结转移等临床病理特征有关,提示miR-205、miR-367 可能参与CMM 的发生、发展过程;Kaplan-Meier生存曲线显示,miR-205 高表达组患者3 年生存率高于miR-205 低表达组,miR-367 低表达组患者3 年生存率高于miR-367 高表达组,miR-205 升高为患者预后的保护因素,miR-367 升高为患者预后的危险因素,提示miR-205、miR-367 表达与CMM 患者预后有关,推测miR-205 具有抑制肿瘤细胞增殖的作用[21],miR-205 表达下调介导的机制促进CMM 进展。miR-367 高表达促进细胞增殖、迁移,并抑制其靶基因PTEN表达,促进肿瘤进展,进而导致患者预后不良[22]。提示miR-367 可能通过调节靶基因PTEN 表达以促进CMM发展。

本研究COX回归模型显示,临床分期高、KPS 评分低、Clark 分级高、有淋巴结转移为患者预后的危险因素。研究显示,KPS 评分<80 分的患者无法独立正常工作,分数越低,其状态越差,预后也较差[23]。Clark分级越高表示浸润程度越深[24],肿瘤侵袭性越强,转移风险也越大。因此,对于具有以上特征的患者,临床应提前做好风险预防措施。

综上,在CMM 组织中miR-205低表达,miR-367高表达,且与患者溃疡、临床分期低、肿瘤侵袭、KPS评分低、原发灶厚、Clark 分级高及淋巴结转移有关,且miR-205 高表达、miR-367 低表达的患者生存率更高,可作为评估CMM预后的潜在标志物,具体作用机制需结合细胞或动物模型进一步研究。

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