猪繁殖与呼吸综合征的区域性防控实践

欧阳艳 刘发志 王孝忠 熊同舟 余瑞瑶 刘顺磊 邓 瑶

（1湖北三峡职业技术学院，湖北宜昌 443000；2宜昌市动物疫病预防控制中心，湖北宜昌 443000；3宜昌正大畜牧有限公司，湖北宜昌 443000）

猪繁殖与呼吸综合征（porcine reproductive and respiratory syndrome,PRRS）又称猪蓝耳病，是由猪繁殖与呼吸综合征病毒（porcine reproductive and respiratory syndrome virus,PRRSV）引起的以仔猪的呼吸道症状和妊娠母猪的繁殖障碍为主要特征的一种烈性传染病。该病最早在美国发现，我国于1996年首次分离到病原后，该病就在我国广泛流行并给养猪业带来了很大损失。

生猪养殖业在畜牧业产值中占比较大，在农民增收、农村劳动力就业等方面发挥重要作用，特别是在促进精准脱贫方面作用十分明显。近年来，虽然各国学者在PRRS病原学、流行病学、防控技术等方面进行了深入研究并取得了一定成绩，但整体而言，PRRS的防控效果依然不尽人意。课题组结合区域生猪生产实践，研究制定了一套防控方案，以期对地方生猪繁殖与呼吸综合征的防控提供借鉴。

1 猪繁殖与呼吸综合征防控难点及误区

现阶段猪繁殖与呼吸综合征防控主要存在以下困难，一是PRRSV毒株的多样性和基因组极易发生变异、重组；二是PRRSV的抗体依赖性增强作用，即PRRSV感染诱导产生的低水平的中和抗体能够促进病毒在机体内的复制，增加病毒的致病性；三是PRRSV的免疫抑制作用，PRRSV强毒破坏非特异免疫巨噬细胞（PAM）系统，也同时破坏特异性免疫应答，使猪丧失抗感染能力、对疫苗的反应能力和对药物治疗的支持能力，极易引起混合感染和继发感染。四是PRRSV的持续感染和垂直传播，猪感染PRRSV一周后出现病毒血症，且可以持续6～7周，PRRSV可在猪体内存在数月，感染猪能排毒80～100 d（最长357 d）并感染同群猪，持续感染的后果是导致机体记忆性B细胞丧失记忆功能进而无法激发有效的免疫应答记忆反应。五是感染猪群中中和抗体产生延迟且抗体水平低，控制难度很大。同时，在猪繁殖与呼吸综合征防控中还存在以下误区，即不重视生物安全、频繁引进健康状况不明的后备猪、疫苗使用不科学。

2 猪繁殖与呼吸综合征区域性防控对策

课题组经过长期的生产实践，总结出一套外防入侵、内防扩散的综合防控措施，具体包括生物安全管控、免疫管理、继发感染控制和监测“四位一体”的控制策略。

2.1 生物安全管控

生物安全管控要外防入侵、内防扩散。PRRSV可通过空气、人员、活猪、车辆等多种途径入侵场内或在场内不同阶段的猪群中传播。因此，养猪场中针对PRRSV生物安全风险点及防范主要措施见表1。此外，对于进入养殖场的物资消毒也是猪场生物安全不可忽视的部分，要制定严格的物资消毒流程，一是预处理中心接收物资，预处理中心操作人员穿戴一次性防护套装查验、登记入库，分类摆放，采集样品、送检；二是预处理操作人员对物资表面进行消毒，消毒30 min后拆除物资最外层包装（放置在规定区域或垃圾桶内，再集中无害化处理），取出内部物资；三是物资分类消毒处理，用1∶200过硫酸氢钾擦拭至少2次或喷雾、喷淋2次，每次间隔30 min，或者直接一次浸泡消毒30 min；四是预处理消毒后的物资放置进消毒间货架上，每个物品间预留5～10 cm缝隙（禁止叠放或紧贴摆放），参照物资分离消毒方法开启消毒设备进行消毒；五是物资出库计划，操作人员提前30 min进行清洗、消毒，进入消毒间净区，对出库前物品进行分类包装、覆膜打包；六是搬运消毒后的物资上车，净区操作人员（穿戴防护套装）不上车和不接触车辆，只将物资传递给接货人员（穿戴防护服），装货完毕后封闭装货车辆（防治运输途中污染物资），车辆出发到场。

表1 猪场生物安全防控措施

2.2 免疫措施

2.2.1 疫苗免疫

目前上市的猪繁殖与呼吸综合征疫苗包括减毒活疫苗（MLV）和灭活疫苗（KV）两大类。我国商品化的PRRSV疫苗有10个品种，其中7个减毒活疫苗（包括CH-1R、Ingelvac MLV、R98等3种美洲型经典株疫苗及JXA1-R、HuN4-F112、TJM-F92、GDr180等4种高致病性毒株疫苗）和3个灭活疫苗（CH-1a、SD1两种经典毒株疫苗、JXAI高致病性毒株疫苗）。

依据《2022年国家动物疫病免疫技术指南》，在接种疫苗前，考虑疫苗的安全性，疫苗毒株的选择与活疫苗的科学合理使用是猪场个性化免疫程序建立的基础。务必科学评估养殖场猪繁殖与呼吸综合征的流行情况和阶段，严格引种管理，合理使用疫苗。

养猪场发生PRRS后，所有种猪群紧急免疫PRRSV减毒活疫苗，并闭群管理。配套严格的生物安全措施，方法见表2。定期对猪场进行（抗原+抗体）监测，统计月度检测结果和季度检测结果，一直到闭群6个月结束。闭群结束后，全群PRRSV疫苗抗体（IDEXXPRRSV-N-ELISA-S/P）S/P平均值连续下降3个月以上，并且猪群活体采集扁桃体（或口腔液）猪繁殖与呼吸综合征原检测阴性，可以重新引进猪PRRS驯化后备猪，猪场进入PRRS阳性稳定阶段。

表2 猪场疫苗使用指南

PRRS阳性稳定场需加强母猪的饲养管理，强化猪场生物安全措施，禁止引进PRRS阳性种猪，等猪群连续6个月产出PRRS阴性（抗原阴性、抗体阴性）仔猪后可以引进阴性后备母猪，猪场方进入阴性猪场行列。PRRS阴性猪场严禁引入PRRS阳性猪（抗体阳性、抗原阳性），定期对猪群进行监测，逐步淘汰阳性基础母猪，待全群猪繁殖与呼吸综合征病毒抗原抗体双阴性后，说明猪场的猪繁殖与呼吸综合征毒得到了净化。

2.2.2 PRRSV野毒驯化

PRRSV野毒驯化（Live Field-virus inoculation,LVI或FVI）其本质是引进猪群主动感染该猪场已知的PRRSV毒株并自然康复，从而使引进猪群建立免疫力。可用于PRRSV阳性种猪群或后备猪群的驯化，其优点在于驯化毒株与流行毒株同源性高，免疫保护性好。但驯化仍存在一定风险，一是野毒感染会导致仔猪的死淘率提高；二是PRRS病毒血症阳性的后备母猪，配种后会影响繁殖成绩。因此，猪场应该谨慎使用野毒驯化。

表3 商品猪场后备母猪蓝耳病疫苗免疫驯化程序

2.3 混合感染或继发感染控制

PRRS感染会导致免疫抑制，易诱发巴氏杆菌、猪链球菌及副猪嗜血杆菌等细菌性疾病。细菌性疾病与PRRSV共感染后，病情更加复杂，死淘率显著升高。支原体与PRRSV共感染也可能加重PRRSV感染后的呼吸道症状。

为减少损失，采用敏感性药物（一般使用大环内酯类抗生素，每月2次加药，每次7-10 d，间隔1周再加1次）针对性治疗，会显著降低猪只的死淘率。

2.4 实验室监测

为掌握PRRSV流行情况，有效控制和净化PRRSV有赖于定期的实验室监测。各地根据实际情况安排常规监测。每半年开展1次病原学监测和血清学免疫抗体集中监测。发现疑似病例，随时采样，及时检测。

病原学检测一般活体采集全血或扁桃体，采用RT-PCR或实时RT-PCR方法进行检测。屠宰场可采集猪肺脏、扁桃体、颌下淋巴结等样品进行病原检测。

血清学检测使用ELISA方法，因PRRSV疫苗在我国普遍使用，而ELIISA不能区分野毒与疫苗毒，故较少使用ELISA进行PRRSV感染检测。一般用于活疫苗免疫后免疫效果判定。但对于未免疫疫苗的猪群或疫苗免疫群的抗体水平偏离疫苗免疫所能达到的水平或抗体值在短期内出现较大的波动，提示可能存在野毒感染。