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基于Keap1/Nrf2信号通路的红芪多糖对糖尿病胃轻瘫大鼠氧化损伤的影响

2022-09-29郭倩李雅琪万生芳魏昭晖王同亮李荣科张磊舒畅李亚玲杨雅丽

中国中医药信息杂志 2022年9期
关键词:红芪肌电小肠

郭倩,李雅琪,万生芳,魏昭晖,王同亮,李荣科,张磊,舒畅,李亚玲,杨雅丽

1.甘肃中医药大学,甘肃 兰州 730000;2.中国药科大学,江苏 南京211298

糖尿病胃轻瘫(diabetic gastroparesis,DGP)是糖尿病(diabetes mellitus)常见的慢性并发症,可见于60%以上糖尿病患者。DGP发病机制复杂,与自主神经病变、胃肠激素紊乱、胃组织细胞病变、高血糖、氧化应激等因素密切相关。DGP属中医学“痞满”“呕吐”“反胃”等范畴,主要由脾气虚弱,脾失转运,营气化生无源所致,治疗以补益脾气为主。红芪是甘肃道地药材,具有补气健脾、生津养血等功效,红芪多糖是其主要活性成分,具有调节机体细胞免疫、抗肿瘤、抗氧化、抗衰老等作用。课题组前期研究发现,红芪多糖能够降低DGP大鼠血糖,促进胃动力、胃排空及胃激素分泌,保护和修复胃平滑肌细胞及胃黏膜损伤,上调小肠组织c-Kit、Cx43基因和蛋白表达。基于前期研究,本实验观察DGP大鼠小肠组织肌电活动,结合氧化应激相关指标检测,进一步探讨红芪多糖促进肠动力、抑制氧化损伤的机制,为指导其临床应用提供实验依据。

1 材料和方法

1.1 动物

SPF 级雄性Wistar 大鼠,8 周龄,体质量180~200 g,甘肃中医药大学实验动物中心提供,动物许可证号SCXK(甘)2015-0002。饲养于甘肃中医药大学SPF级实验室,温度23 ℃、相对湿度50%环境。本实验经甘肃中医药大学实验动物中心动物伦理委员会审批(2020-041)。

1.2 药物

红芪多糖,宝鸡市方晟生物开发公司,纯度72.4%,批号20200315,临用前用纯净水溶解,制成浓度分别为12、6、3 mg/mL溶液。枸橼酸莫沙必利分散片,批号190614,成都康弘药业集团股份有限公司,5 mg/片,将药品粉碎,用纯净水溶解,制成浓度为0.35 mg/mL溶液。

1.3 主要试剂与仪器

水合氯醛,天津市大茂化学试剂厂,批号20 190504;链脲佐菌素(STZ),美国VETEC 公司,批号WXBD0304V;活性氧(ROS)试剂盒,江苏酶标生物,批号MB-6608A;超氧化物歧化酶(SOD)、谷胱甘肽过氧化物酶(GSH-Px)、8-羟基脱氧鸟苷酸(8-OHdG)、丙二醛(MDA)试剂盒,上海酶联生物,批号分别为ml059387、ml097316、ml028318、ml 077384;Kelch 样环氧氯丙烷相关蛋白-1(Keap1)抗体、核因子E2相关因子(Nrf2)抗体、血红素加氧酶-1(HO-1)抗体,英国Abcam 公司,批号分别为ab139729、ab92946、ab68477;硫氧还蛋白(Trx)抗体,美国Affinity公司,批号DF7621;血糖试纸,罗氏血糖健康医护公司,批号 478151;β-actin一抗,美国Affinity公司,批号AF-7018-100;辣根过氧化物酶标记二抗,美国Affinity公司,批号S0001;DAB显色液,北京中杉金桥生物技术有限公司,批号PV-6000D;Super ECL Plus超敏发光液,北京普利莱基因科技有限公司,批号P10100。ML408 生物电放大器(澳大利亚ADInstruments),PL3508生理信号采集系统(澳大利亚ADInstruments),Accu-Chek Performa型血糖仪(瑞士罗氏),XYJ80-2电动离心机(常州市金坛恒丰仪器厂),Infinite M200 Pro多功能酶标仪(瑞士Tecan),电泳仪、转膜仪(美国Bio-Rad 公司),AUW220D 半微量电子天平(日本岛津公司),FRESCO 21 高速冷冻离心机(美国Thermo Fisher Scientific公司)。

1.4 造模、分组及给药

将72 只大鼠适应性饲养1 周后随机分为空白组12只和造模组60只。禁食不禁水12 h,造模组大鼠按55 mg/kg一次性腹腔注射1%STZ溶液(0.1 mmol/L柠檬酸钠缓冲液配制),空白组大鼠注射等体积0.1 mmol/L柠檬酸钠缓冲液。72 h后尾静脉采血,测定随机血糖≥16.7 mmol/L为糖尿病大鼠。糖尿病大鼠以高糖高脂饲料不规则喂养(单日上午进食,双日下午进食),连续4周,测定血糖≥16.7 mmol/L,并伴有饮水量增加、腹部胀大、体质量明显减轻等表现,随机抽取空白组与造模组各2只大鼠检测小肠肌电活动,造模组大鼠较空白组小肠自主收缩频率显著降低,提示造模成功。根据实际成模大鼠数量并综合考虑模型大鼠死亡率,将成模大鼠随机分为模型组11只,阳性药组和红芪多糖高、中、低剂量组各10只,另设空白组10只,空白组予普通饲料喂养,其余各组继续高糖高脂饲料喂养。按照人与大鼠体表面积换算给药剂量,阳性药组予枸橼酸莫沙必利溶液3.5 mg/kg灌胃,红芪多糖高、中、低剂量组分别予红芪多糖溶液0.12、0.06、0.03 g/kg灌胃,灌胃体积2 mL/只,空白组和模型组灌胃等体积纯净水,连续8周。

1.5 小肠肌电活动检测

实验前大鼠禁食24 h、禁水2 h,腹腔注射10%水合氯醛(0.33 mL/100 g)麻醉,有齿镊刺激大鼠四肢,无疼痛反射且角膜反射存在时开始实验。大鼠仰卧位固定于恒温解剖台,腹部备皮,常规消毒。剑突下沿上腹正中线剖开,切口2~4 cm,暴露小肠,于距离回盲部约2 cm处回肠上置入银针电极,测量电极置于肠壁浆肌层(电极直径0.3 mm,回盲部交界处接正极,向左旁开约0.3 cm处胃体接负极),参考电极夹于大鼠皮下,电极输入端与生物机能实验系统连接,进行信号采集。实验参数:采样率1 k/s,量程20 mV,低通20 Hz,高通0.3 Hz,50 Hz陷波为开,电源滤波器为开。检测过程中肠管上方覆盖温生理盐水纱布以减少体温流失,并关注大鼠麻醉状态,若出现头部等活动或四肢收缩,则适量追加麻醉,使大鼠处于平稳麻醉状态,便于观察。波形平稳后,连续记录60~80 min,以5 min为一个时间段,每个数据样本截取基线平稳的波形,随机截取6个时间段,计算大鼠各时间段小肠组织肌电慢波频率和振幅,取其平均值,采用Lab Chart8 Reader软件读取分析。

1.6 ELISA检测

给药结束后大鼠禁食24 h、禁水2 h,10%水合氯醛腹腔注射(0.33 mL/100 g)麻醉,分离小肠组织,剪取100 mg小肠组织于玻璃匀浆器中,加入1 mL生理盐水,冰浴条件下匀浆,4 ℃、4 000 r/min离心10 min,吸取上清液,采用ELISA检测小肠组织ROS、SOD、GSH-Px、8-OHdG和MDA水平。

1.7 Western blot检测

剪取约100 mg小肠组织,加入1 mL RIPA裂解液,冰上充分研磨,匀浆4 ℃、12 000 r/min离心15 min,取上清液,采用BCA法测定蛋白浓度,加入5×上样缓冲液,充分混匀后,100 ℃水浴加热10 min,冷却至室温后再次离心5 min,取上清液上样,5%浓缩胶与10%分离胶进行电泳。冰浴、200 mA转膜60 min,将蛋白转至PVDF膜,加入5%脱脂奶粉室温封闭2 h,TBST 洗涤3 次,滴加Keap1 一抗(1∶1 000)、Nrf2一抗(1∶1 000)、Trx一抗(1∶1 000)、HO-1一抗(1∶10 000)、β-actin一抗(1∶10 000),4 ℃孵育过夜。次日取出条带,TBST清涤3次,滴加二抗(1∶5 000),室温孵育2 h。ECL 发光液显影,采用凝胶成像分析仪采集图像,Image J 软件分析蛋白灰度值,以目的蛋白与内参蛋白灰度值比值计算蛋白相对表达量。

1.8 统计学方法

2 结果

2.1 红芪多糖对模型大鼠小肠组织肌电活动的影响

与空白组比较,模型组大鼠小肠组织肌电慢波频率和振幅明显降低,差异有统计学意义(<0.01);与模型组比较,阳性药组和红芪多糖高、中剂量组大鼠小肠组织肌电慢波频率和振幅明显升高,差异有统计学意义(<0.01)。见表1、图1。

图1 各组大鼠小肠组织肌电活动

表1 各组大鼠小肠组织肌电慢波频率和振幅比较()

2.2 红芪多糖对模型大鼠小肠组织活性氧、超氧化物歧化酶、谷胱甘肽过氧化物酶、8-羟基脱氧鸟苷酸、丙二醛水平的影响

与空白组比较,模型组大鼠小肠组织ROS、8-OHdG、MDA水平明显升高,SOD、GSH-Px水平明显降低(<0.01);与模型组比较,阳性药组和红芪多糖高、中剂量组大鼠小肠组织ROS、8-OHdG、MDA水平明显降低,SOD、GSH-Px 水平明显升高(<0.05,<0.01)。结果见表2。

表2 各组大鼠小肠组织ROS、SOD、GSH-Px、8-OHdG、MDA水平比较(,ng/mL)

2.3 红芪多糖对模型大鼠小肠组织Kelch样环氧氯丙烷相关蛋白-1、核因子E2相关因子、血红素加氧酶-1、硫氧还蛋白表达的影响

与正常组比较,模型组大鼠小肠组织Keap1蛋白表达明显升高,Nrf2、HO-1、Trx蛋白表达明显降低,差异有统计学意义(<0.01);与模型组比较,阳性药组和红芪多糖高、中剂量组大鼠小肠组织Keap1蛋白表达明显降低,Nrf2、HO-1、Trx蛋白表达明显升高,差异均有统计学意义(<0.05,<0.01)。见图2、表3。

表3 各组大鼠小肠组织Keap1、Nrf2、HO-1、Trx蛋白表达比较()

图2 各组大鼠小肠组织Keap1、Nrf2、HO-1、Trx蛋白免疫印迹

3 讨论

DGP是糖尿病常见慢性并发症,我国糖尿病患病率人数高居全球首位,其中有5年以上糖尿病病史的患者中,有超过一半患者存在胃轻瘫症状,临床表现多为餐后饱胀、厌食、腹胀、呕恶等,严重影响患者生活质量。中医学认为,消渴日久,损伤脾气,脾气虚则升降功能失调,转运失常。其根本病机为脾气虚弱,失于健运,治当补气健脾。红芪为补气之要药,其重要组分红芪多糖可以改善胰岛素抵抗,阻止或延缓2型糖尿病并发症。研究表明,红芪多糖通过增加Nrf2表达影响抗氧化酶类表达,从而调控氧化应激反应,改善糖尿病心肌病小鼠心肌损伤;通过上调Bcl-2/Bax表达,抑制脾虚型糖尿病大鼠胃窦组织胃黏膜细胞凋亡。

氧化应激是机体氧化和抗氧化失衡引起ROS 异常增多的一种病理表现,是心血管和代谢疾病的主要致病因素,也是影响DGP 的重要因素之一。8-OHdG、MDA、SOD和GSH-Px 是衡量机体氧化应激水平的常用指标。高血糖可使ROS异常增多,氧自由基增加,机体抗氧化能力降低,代谢失常。SOD、GSH-Px是体内重要的抗氧化酶,可反映机体的抗氧化水平,有效清除氧自由基,维持机体氧化平衡。研究表明,抑制氧化酶表达能提高ROS和MDA含量,引起氧化应激。而氧化应激参与DGP的发生发展,是DGP发病的重要机制。

Keap1/Nrf2信号通路是抗氧化应激的经典信号通路,Keap1是氧化还原反应的传感器,通过氧化还原反应使构象发生变化从而使Nrf2解离,转入细胞核内与Maf蛋白结合成异质二聚体后与抗氧化反应元件结合,激活调控Ⅱ相代谢酶、抗氧化酶或药物转运体的转录活性,发挥抗氧化损伤作用,恢复细胞内稳态。Keap1是氧化应激的关键蛋白,能提高机体对心肌微血管内皮细胞的保护作用,协调氧化应激,缓解机体氧化损伤。Nrf2是该信号通路中重要的细胞保护性转录因子。当机体发生氧化应激时,Nrf2与Keap1解偶联,活化的Nrf2转运进入细胞核,与抗氧化反应元件结合,激活下游抗氧化酶如HO-1、Trx等表达并诱导下游抗氧化酶如SOD、GSH-Px基因转录,从而保护细胞免受ROS 导致的损伤。HO-1 和Trx 是Keap1/Nrf2 信号通路激活的重要抗氧化酶,能够清除过量ROS,维持细胞氧化/抗氧化平衡。因此,HO-1和Trx的活性对减轻机体氧化应激程度,维持氧化平衡状态有重要意义。

本实验中模型组大鼠小肠组织Keap1蛋白表达显著升高,Nrf2、HO-1、Trx蛋白表达显著降低,ROS、8-OHdG及MDA水平显著升高,SOD和GSH-Px水平显著降低,这可能是导致DGP大鼠小肠肌电活动慢波频率与振幅降低、出现氧化应激损伤的原因之一。经药物干预后,阳性药组和红芪多糖高、中剂量组大鼠小肠组织Keap1蛋白表达显著降低,Nrf2、HO-1、Trx蛋白表达显著升高,ROS、8-OHdG及MDA水平显著降低,SOD和GSH-Px水平显著升高,小肠肌电活动慢波频率与振幅显著升高,提示机体抗氧化应激能力明显改善。

综上,红芪多糖能改善DGP大鼠小肠动力,其机制与上调氧化应激关键蛋白Nrf2、HO-1、Trx 表达,下调Keap1蛋白表达,降低ROS、8-OHdG及MDA水平,升高SOD和GSH-Px水平有关。本结果为课题组进一步探讨红芪多糖治疗DGP胃肠动力障碍的机制提供实验依据,也为中药治疗DGP 提供新思路、新方法。

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