多穗柯总黄酮对db/db小鼠胰高血糖素样肽-1分泌的影响
2021-10-30陈敬民李燕婧
陈敬民 李燕婧
摘要:目的 探讨多穗柯总黄酮对db/db小鼠肠道胰高血糖素样肽-1(GLP-1)分泌的影响。方法 选取db/db雄性小鼠按空腹血糖值随机分组,多穗柯总黄酮以100、200 mg/kg剂量灌胃给药4 w,进行糖负荷GLP-1分泌实验,然后处死动物,取回肠组织,免疫荧光法检测分泌GLP-1的细胞情况,测量食耗量、饮水量、空腹血糖值、血清GLP-1及分泌GLP-1细胞比例。结果 多穗柯总黄酮100或200 mg/kg剂量组均能显著减少db/db小鼠周食耗量(P<0.05或P<0.01)、周饮水量(P<0.01);降低空腹血糖值(P<0.05或P<0.01);显著升高空腹GLP-1水平(P<0.01)。多穗柯总黄酮200 mg/kg剂量组能显著升高糖负荷后30、60 min的血清GLP-1水平(P<0.05);增加分泌GLP-1的细胞比例(P<0.01)。结论 多穗柯总黄酮通过减少肠道L细胞损伤,保护其分泌GLP-1的功能,增加GLP-1的分泌,发挥防治糖尿病作用。
关键词:多穗柯总黄酮;糖尿病;胰高血糖素样肽-1
中图分类号:R285.5 文献标志码:A 文章编号:1007-2349(2021)10-0079-04
胰高血糖素样肽-1(GLP-1)是肠道Langerhans细胞分泌的肠肽类激素,GLP-1能再生和修复胰岛β细胞,增加β细胞数量并抑制其凋亡,提高β细胞质量和数量,改善β细胞功能[1]。通过提高体内GLP-1水平改善胰岛β细胞功能,进而提高胰岛素分泌水平,从而达到防治糖尿病的目的,是药物治疗糖尿病重要作用机制之一。
多穗柯是壳斗科植物木姜叶柯Lithocarpus litseifolius(Hance)Chun.的干燥嫩叶,富含以根皮苷(Phlorizio-1),三叶苷(Trilobation-2),3-羟基根皮苷(3-hydroxy phlorizin-3)为主的黄酮类物质[2,3],具有润肺镇咳、滋润肝肾、清热利尿等效用,系广西瑶族地区常用于降血糖的民间草药。本课题组人员曾研究发现其在治疗糖尿病方面有显著的药理作用[4],本实验利用db/db小鼠糖尿病模型,在考察糖负荷GLP-1变化基础上,结合免疫荧光技术,探讨多穗柯总黄酮防治糖尿病的作用机制。
1 材料
1.1 实验动物 SPF级C57、db/db小鼠,雄性,购自常州卡文斯实验动物有限公司,实验动物生产许可证号:SCXK(苏)2016-0010,饲养于广西中医药研究院动物房,实验动物使用许可证号:SYXK桂2016-0006,饲养温度(22±2)℃,环境相对湿度(50±5)%,无菌水,标准鼠料,12小时自由进食/12小时禁食,自由饮水。本实验遵守国家有关实验动物保护与使用准则。
1.2 药物与试剂 多穗柯来源于广西百色,经广西中医药研究院饶伟源主任中药师鉴定为壳斗科植物木姜叶柯Lithocarpus litseifolius(Hance)Chun.的干燥嫩叶;盐酸二甲双胍片(批号:190610),北京京丰制药集团有限公司;卓越金采血糖试纸,罗氏血糖健康医护公司;4%多聚甲醛,北京博奥拓达科技有限公司;小鼠胰高血素样肽-1(GLP-1)酶联免疫检测试剂盒,上海仁捷生物科技有限公司;Anti-GLP-1 Rabbit pAb抗体,Cy3标记山羊抗小鼠IgG(红色),细胞核染色剂DAPI,均购自武汉赛维爾生物科技有限公司。
1.3 主要仪器 卓越精采血糖仪(罗氏血糖健康医护公司);Thermo 1510酶标仪(赛默飞世尔科技(中国)有限公司);Eclipse Ci-L正置荧光拍照显微镜(日本Nikon公司);Image-pro Plus 6.0图片分析软件(美国Media Cybemetics公司)。
1.4 统计学方法 用SPSS19.0软件进行统计分析,数据以(x[TX-*3/8]±s)表示,采用单因素方差分析,组间进行LSD检验,P<0.05为差异具有统计学意义。
2 方法
2.1 多穗柯总黄酮的制备 多穗柯药材粉碎,70%乙醇溶液以10:1液药比回流提取2次,每次2 h,提取液滤过,浓缩成稠膏,用温蒸馏水稀释,上大孔树脂,水、乙醇梯度洗脱,收集50%醇洗脱部分,浓缩,冷冻干燥成粉未,284 nm处检测总黄酮含量为89%。
2.2 实验分组与给药[5] 动物适应性饲养3 d,C57小鼠为正常对照组,db/db小鼠尾静脉针刺取血,血糖仪测空腹血糖值,按血糖值随机分为模型组、二甲双胍83 mg/kg组、多穗柯总黄酮100和200 mg/kg组,每组8只,每笼2只分笼饲养。各给药组灌胃给药,给药体积为20 mL/kg,连续28 d,正常对照组及模型组给予蒸馏水,每周均测量各鼠空腹血糖、食耗量及饮水量。
2.3 糖负荷GLP-1分泌实验[6-7] 末次给药前尾静脉取血,给药1 h后进行实验,各鼠分别按1 g/kg灌胃给予10%葡萄糖溶液,并于口服葡萄糖后30、60、120 min尾静脉取血,血液3000 r/min离心10 min,分离血清,测量小鼠血清GLP-1含量,计算各组小鼠血清GLP-1的均数方差。
2.4 肠组织分泌GLP-1的L细胞检测[8-10] 实验结束后禁食12 h,脱颈椎处死小鼠,冰台上清理脂肪,迅速取回肠组织,4℃生理盐水清洗肠道,置4%多聚甲醛固定24 h,进行修剪、脱水、包埋、切片、脱蜡、抗原修复、一抗孵育、二抗覆盖、DAPI复染,淬灭封片,荧光拍照显微镜下检查,每张切片选取3个目的区域200倍成像,拍摄GLP-1及DAPI荧光照片,使用图片分析软件分析回肠组织分泌GLP-1的L细胞及其他细胞数,计算分泌GLP-1的L细胞百分率。
L細胞百分率=回肠GLP-1染色区域面积/(GLP-1及DAPI染色区域面积总和)×100%
3 结果
3.1 对db/db小鼠食耗量和饮水量的影响 结果如表1、表2所示,与正常对照组比较,模型组小鼠周食耗量、周饮水量随时间进行性显著增多(P<0.01)。与模型组比较,多穗柯总黄酮100、200 mg/kg组的周食耗量、周饮水量显著减少(P<0.05或P<0.01)。
3.2 对db/db小鼠空腹血糖的影响 结果如表3所示,与正常对照组比较,模型组小鼠空腹血糖随时间进行性显著增高(P<0.01)。与模型组比较,多穗柯总黄酮以100 mg/kg给药7、14 d或以200 mg/kg给药均显著降低空腹血糖(P<0.05或P<0.01)。
3.3 对db/db小鼠血清胰高血糖素样肽1(GLP-1)的影响 结果如表4所示,与正常对照组比较,模型小鼠空腹、口服葡萄糖后血清GLP-1含量明显降低(P<0.01)。与模型组比较,多穗柯总黄酮100、200 mg/kg连续给药28 d显著升高空腹血清GLP-1含量(P<0.01),多穗柯总黄酮200 mg/kg连续给药28 d能显著升高口服葡萄糖后0.5、1.0 h的血清GLP-1含量(P<0.05)。
3.4 对db/db小鼠分泌GLP-1细胞的影响 结果如表5所示,与正常对照组比较,模型组小鼠回肠分泌GLP-1的L细胞数明显减少,肠组织细胞中的比例显著降低(P<0.01);与模型组比较,多穗柯总黄酮200 mg/kg连续给药28 d明显增加回肠分泌GLP-1的L细胞数,肠组织细胞中的比例显著增加(P<0.01)。肠组织免疫荧光检查结果如图1所示,正常对照组肠组织分泌GLP-1的L细胞层连续光滑、致密,模型组小鼠肠组织分泌GLP-1的L细胞层断续、离散,多穗柯总黄酮100、200 mg/kg连续给药28 d能使db/db小鼠分泌GLP-1细胞层形态连续性、致密度明显优于模型组。
4 讨论
db/db小鼠是C57小鼠4号染色体瘦素受体基因定向敲除引起的一种自发性2型糖尿病模型小鼠,具有和人类2型糖尿病相似的临床症状,有多饮、多食、多尿、肥胖、高血糖、高胰岛素血症、胰岛素抵抗等特征,是理想2型糖尿病模型[11]。与正常对照组比较,模型组食耗量、饮水量及空腹血糖值显著增高(P<0.01);与模型组比较,多穗柯总黄酮连续给予28 d,db/db小鼠多饮多食的糖尿病症状明显改善(P<0.05或P<0.01),表明多穗柯总黄酮能较好改善db/db小鼠糖尿病症状的作用。
GLP-1受进食、胃肠神经等影响,糖类、脂肪营养物质刺激肠组织增加GLP-1分泌,使外周血GLP-1浓度增高,发挥“肠促胰岛素”作用,并促进胰腺葡萄糖依赖性胰岛素释放,调节体内餐后葡萄糖达到稳态[12-14]。本实验开展口服糖负荷实验,与正常对照组比较,模型组糖后血清GLP-1含量明显降低(P<0.01);与模型组比较,多穗柯总黄酮连续给药28 d能显著增加小鼠空腹及糖后血清的GLP-1含量(P<0.05)。表明多穗柯总黄酮通过提高分泌GLP-1基础值来发挥GLP-1的降糖作用。
L细胞是肠道分泌GLP-1的内分泌细胞,2型糖尿病GLP-1分泌水平下降与肠道L细胞受损有关[15-16]。本实验对肠组织进行GLP-1免疫荧光分析,正常对照组小鼠分泌GLP-1的L细胞层连续、光滑、致密、比例高;与正常对照组比较,模型组小鼠分泌GLP-1的L细胞层断续、疏散、比例低(P<0.01);与模型组比较,多穗柯总黄酮连续给药28 d后,db/db小鼠分泌GLP-1的L细胞连续性较好、比例明显增多(P<0.01)。表明多穗柯总黄酮能提高L细胞分泌GLP-1的能力,减少糖尿病小鼠L细胞的损伤。
综上所述,多穗柯总黄酮能显著改善db/db小鼠多饮多食的糖尿病症状,降低空腹血糖值,提高空腹或餐后血清GLP-1水平,减少分泌GLP-1的肠组织L细胞的损伤,表明多穗柯总黄酮通过减少肠道L细胞损伤,保护其分泌GLP-1的功能,增加GLP-1的分泌,发挥多穗柯总黄酮防治糖尿病的作用。
参考文献:
[1]李晓倩,沈山梅.中药干预对胰高血糖素样肽-1水平影响的研究进展[J].辽宁中医药大学学报,2012,14(4):257-259.
[2]饶伟源,冉国粮,邱宏聪,等.多穗柯质量标准研究[J].中南药学,2017,15(6):814-817.
[3]李胜华,伍贤进,杨青丹,等.多穗柯化学成分研究[J].中药材,2010,33(4):549-551.
[4]韦宝伟,刘布鸣,曾宪彪,等.木姜叶柯总黄酮对大小鼠血糖和糖耐量的影响[J].现代药物与临床,2012,27(1):19-22.
[5]唐思梦,李红枝,陈伟强,等.黄芪多糖与二甲双胍干预2型糖尿病大鼠的对比研究[J].中医药导报,2017,23(22):12-16.
[6]李云鹃,郝二伟,白钢,等.复方青芒降糖饮调节血糖的作用及其机制研究[J].中药材,2019,42(10):2409-2414.
[7]魏世超,徐丽君,邹欣,等.黄连有效成分及其组合物对荷糖小鼠胰岛素和胰高血糖素样肽1(GLP-1)分泌影响的初步研究[J].中国医院药学杂志,2017,37(14):1343-1347.
[8]杨雪蓉,张振华,徐杰,等.健胰方通过调控胰高血糖素样肽-1表达改善糖尿病大鼠胰岛细胞功能的研究[J].广州中医药大学学报,2017,34(2):213-218.
[9]蔺晓源,邓娜,蔡莹.四磨汤有效成分对慢性应激小鼠Obestatin及GLP-1的影响[J].中医药导报,2015,21(13):44-51.
[10]王力.MYDGF对2型糖尿病小鼠肠道L细胞分泌GLP-1的影响及机制研究[D].广州:南方医科大学,2019.
[11]刘静,陆洁,裴天仙,等.基因缺陷型2型糖尿病模型动物db/db小鼠早期生物学特性研究[J].药物评价研究,2013,36(1):8-12.
[12]Everard A PD cani.Gut microbiota and GLP-1[J].Rev Endoer Metab Disord,2014,15(3):189-196.
[13]Ezcurra M,Reimann F,Gribble FM,et al.Molecular mechanisms of incretin hormone secretion[J].Curr Opin Pharmacol,2013,13(6):922-927.
[14]严淋,罗和生.胰高血糖素样肽-1在胃肠道中的作用及机制的研究进展[J].胃肠病学和肝病学杂志,2017,26(8):944-947.
[15]李静,张振,姜新魁,等.糖基化终末产物对肠道L细胞株胰高血糖素肽-1分泌水平及L细胞凋亡的影响[J].广东医学,2015(7):1013-1016.
[16]Schonhoff S E,Giel molonev M,Leiter A B.Minireview:development and differentiation of gut endocrine cells[J].Endocrinology,2004,145(6):2639-2644.[JX*1]
(收稿日期:2021-07-16)