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LOOP环改良法全自动化制备11C-胆碱

2021-10-23李海峰徐仁根何玉林陈志军张晓军李云钢张锦明

同位素 2021年5期
关键词:二甲基环法前体

李海峰,徐仁根,何玉林,陈志军,张晓军,李云钢,张锦明

(1.江西省肿瘤医院 核医学科,南昌 330029; 2.中国人民解放军总医院 核医学科,北京 100853)

11C-胆碱(11C-Choline,11C-CH)在临床诊断膀胱癌、尿路上皮癌和前列腺癌等方面有着良好应用前景[1-6]。目前,临床研究11C-CH的制备方法主要是C18柱固相合成法和液相合成法等[7-9],液相合成法的合成时间较长,步骤较繁琐,合成效率较低[10],不能满足临床需求;C18柱固相合成法操作简单,制备时间较短,已在临床上推广使用,取得较好的效果,但合成效率不理想[11]。文献[12]使用LOOP环法合成11C-CH,LOOP环管径较大,反应不充分,管壁产品残留多,合成效率有待提高。本研究对国产11C-多功能合成模块进行改进,使用管径较小、比表面积大的聚四氟乙烯LOOP环(1 mm×0.5 mm×2 m),寻求在国产模块上全自动化LOOP环法合成11C-CH,与C-18柱固相法比较,实现合成方法简单可靠,合成效率高的目的。

1 仪器与试剂

1.1 仪器

自动化11C多功能合成模块(PET-CM-3H-IT-Ⅰ):派特(北京)科技有限公司;Endosafe-PTS细菌内毒素快速检测仪:USA Charles River公司;分析天平:AB104G型号,Switzerland Mettler Toledo公司;活度计:CRC-15R型,USA Capintec公司;分析型HPLC仪、Sep-PakC-18柱、CM柱:美国Waters公司;无菌滤膜:Merck Millipore 公司。

1.2 试剂

N,N-二甲基乙醇胺、57% HI、LiAlH4四氢呋喃溶液(1 mol/L):USA Sigma Aldrich公司;浓硫酸、磷酸二氢钠、氢氧化钠、无水乙醇:AR级,国药集团化学试剂有限公司;0.9%生理盐水:青岛华仁药业公司;灭菌注射用水:石家庄四药有限公司;乙腈、丙酮:HPLC级,USA TEDIA公司。

2 实验方法

2.1 11C-CH3I的合成

参考文献[10],液相法制备11C-CH3I:HM-20加速器经14N(P, ɑ)11C核反应在回旋加速器内产生11CO2,氮气作为载气将11CO2传送到11C-多功能合成模块,传送完毕,开启自动化程序,11CO2被N2载带至反应管与0.2 mL四氢锂铝的四氢呋喃溶液(1 mol/L)反应,加热并通入N2,除去THF,再加入0.3 mL 57%的氢碘酸,生成的11C-CH3I通入到LOOP环与前体反应。

2.2 产品的制备与纯化

前体N,N-二甲基乙醇胺装于LOOP环中,11C-CH3I通入到LOOP环中与前体进行反应,室温反应1 min,用乙醇溶液将LOOP环内反应液带至CM柱,经灭菌注射用水清洗,再用生理盐水将产品淋洗至无菌瓶中,自动化合成系统图示于图1。

V6,V7,V8,V3,V14,V15,V4,V4_0,V2,V1,V9,V10,V13,V11,V11_1,V12—开关阀;R1,R2,R3,R4—核素活度计;T0—加热;H1—注射图1 11C-CH自动化合成系统Fig.1 Auto systhesis of 11C-CH

2.3 合成效率的影响因素

2.3.1溶剂 使用11C-CH前体量100 uL,选择丙酮、乙腈、乙醇各100 uL及无溶剂等不同的溶剂条件,比较其合成效率。

2.3.2前体用量 取11C-CH不同前体量(5~300 uL)装于LOOP环中,通入在线生成的11C-CH3I,室温反应,寻求合适的前体量。

2.4 产品的实验室质量控制

检查产品外观,精密pH试纸测试产品pH,使用Endosafe-PTS细菌内毒素快速检测仪检测产品的细菌内毒素,高效气相仪检测产品有机溶剂残留,通过HPLC测量产品放化纯度和比活度:分析产品11C-CH的分析柱为离子交换柱(150 mm×7.8 mm,pH=1~3),流动相硫酸溶液(pH=3.0,0.01 mmol/L),流速1 mL/min。

3 结果与讨论

3.1 碱量对11C-CH反应的影响

前体N,N-二甲基乙醇胺本身提供碱催化,与11C-CH3I 反应生成11C-CH盐,可以被富集在CM柱上,再用乙醇、水清洗有机杂质和无机杂质。整个合成过程没有用到无机碱,无机碱的存在会破坏11C-CH盐的生成而不易富集,因此,采用缓冲溶液调节产品pH。

3.2 溶剂

反应溶剂对合成效率影响的结果列于表1。由表1结果可知,乙腈、丙酮、乙醇溶剂中的反应效率均低于无溶剂,无溶剂反应更适合LOOP环法合成11C-CH,本研究认为丙酮、乙腈、乙醇不适合LOOP环法,合成11C-CH时选用无溶剂较好。

表1 溶剂对合成的影响Table 1 Effect of solvent on the synthesis

11C-CH的前体N,N-二甲基乙醇胺与11C-CH3I发生的是类似季铵盐反应,N,N-二甲基乙醇胺本身为液体且极性较强,既可以做碱催化,也可以做溶剂,反应前体的浓度较高,更有利于取代反应的进行;加入不同的溶剂时,底物的反应浓度减小,不利于反应的进行。本研究采用11C-CH的前体本身为溶剂的LOOP环法来制备11C-CH。

季铵盐具有盐的性质,易溶于水而不易溶于非极性有机溶剂,而在加热时易分解为叔胺和卤代烷,熔点为270~272 ℃。季铵盐与强碱如KOH、NaOH等作用得到含有季铵碱的平衡混合物。如果有醇类溶液,由于碱金属的卤化物难溶于醇,能将反应进行到底。季铵碱的碱性较强,不宜直接用于临床研究。合成反应中,11C-CH前体与11C-CH3I发生的是SN2反应,受溶剂影响较大,溶剂极性越大,越有利于SN1反应,而对SN2反应不利。SN2反应过程中,由原来电荷比较集中的亲核试剂变成电荷比较分散的过渡态,溶剂极性的增加使电荷集中的亲核试剂溶剂化,降低反应效率。同时反应物浓度越高越有利于反应进行,在这几类反应溶剂中,无溶剂反应合成效率最高,因而,本研究选用无溶剂进行反应。

3.3 前体用量

前体用量对11C-CH效率的影响示于图2。11C-CH的前体本身既可以做碱催化,也可以做溶剂,11C-CH的前体量过小,N,N-二甲基乙醇胺不能有效的捕获11C-CH3I,不利于反应进行;本研究使用的LOOP环可容纳的体积为1.2 mL左右,11C-CH的前体量过大,并不会提升合成效率,而且有可能部分前体随着氮气流进入废液,造成前体浪费。本研究的反应为类似季铵盐的反应,其合成效率与前体浓度呈正相关,提高前体浓度可提升合成效率;但前体量过大会造成化学纯度降低,同时浪费前体。为了保证合成效率、控制产品中前体含量,同时降低成本,选择11C-CH前体用量60~150 uL为宜。

图2 前体量对11C-CH合成效率的影响Fig.2 Effect of the precursor on the synthesis efficiency of 11C-CH

3.4 自动化合成及质量控制

优化11C-CH自动化合成条件为:自动合成器LOOP环中装有60~150 uL的11C-CH前体N,N-二甲基乙醇胺,通入11C-CH3I,LOOP环处放射性计数稳定后,室温静置反应;打开V9、V13,用8 mL乙醇溶液将LOOP环内的反应液带至CM柱,打开V10、V13,用10 mL水清洗产品,最后打开V11、V12,用8 mL生理盐水将产品从CM柱上洗脱,经无菌滤膜进入收集瓶中。11C-CO2传至LOOP环后,开启自动合成程序,从11C-CO2到取代反应、纯化至终产品,总计用时10 min。对产品抽检进行质量控制,终产品的外观、pH、HPLC检测放化纯度、细菌内毒素检测、气相色谱仪检测溶剂残留等质量控制结果均符合静脉注射要求,并与C18柱固相法进行比较,结果列于表2。

3.5 LOOP环法与C18柱固相法的比较

目前,临床上制备11C-CH的方法主要是C18柱固相合成法和液相合成法。1984年Diksic等[13]报道了11C-胆碱的合成,利用N,N-二甲基乙醇胺在100 ℃加热条件下与11C-CH3I反应5 min,再用阳离子交换树脂纯化,经高压液相色谱(HPLC)纯化后得到11C-胆碱。产品需经加热反应、HPLC纯化后使用,此合成方法操作繁杂,不便于临床推广使用。Hara等[9]对Diksic制备方法进行了改进,合成过程仍需要加热反应、HPLC纯化得到11C-胆碱,不能满足临床需求。

Pascali等[8]采用C18柱固相合成法制备11C-胆碱,前体药N,N-二甲基乙醇胺与11C-CH3I在C18柱上反应,再将粗产品吸附在离子交换柱CM柱上,进行简单纯化得到11C-胆碱。此C18柱固相合成法简化了繁琐的合成过程,减少加热反应、HPLC纯化等步骤,有利于临床推广使用,但其自动化程度不高,增加了合成时间。张锦明等[10,14]在Pascali C18柱固相合成法的基础上进行了改进,将前体N,N-二甲基乙醇胺预装于C18柱上,省去再装载步骤,同时将注射器加淋洗液方法改成以氮气流为动力,实现了自动化合成11C-胆碱,更有利于临床应用,但合成效率一般。何山震等[11]通过优化标记的反应条件,以提高标记产率和生产的稳定性,但合成产率有待提高。龙婷婷等[15]经过工艺优化,使用自制的Light C18 柱,使11C-胆碱的标记产率得到较大提升,具有一定的临床意义,在临床推广使用过程中,应保证自制的Light C18 柱安全性。高志麒等[16]将PET-CS-Ⅰ合成模块小型化,使其体积缩小80%,合成模块运行稳定,合成效率和质量同原模块无差,且缩短传输管道后,管道内残留减少,而改造后模块比较专一化,不利于开发更多放射性药物合成的用途。张政伟等[8]尝试LOOP环法合成11C-CH,其自制LOOP环管径较大,反应不充分,管壁产品残留多,合成效率受到影响。

本研究使用LOOP环法合成11C-CH,寻求一种简单可靠、合成效率高、全自动合成11C-胆碱的方法。先对国产11C-多功能合成模块进行改进,使用的LOOP环材料为聚四氟乙烯。本研究优化了11C-CH的LOOP环法合成条件,并与常用的C18柱固相合成法进行比较,其合成效率明显提高,结果示于图3;两种方法合成结果具体比较列于表3。

表3 11C-CH的合成结果Table 3 Results of synthesis of 11C-CH

改进后的LOOP 环法制备11C-CH,可有效提高合成效率,保证产品质量:1) LOOP 环法制备11C-CH过程中,LOOP 环可以重复、多次使用,同时减少了Sep-PakC-18柱的使用量,降低生产药物合成成本;2) LOOP环,管径较小,比表面积大,有利于11C-CH3I与前体充分反应,同时管壁产品残留较少,合成效率提高,产品的产量大大提高;3) LOOP 环法还应用于制备11C-乙酸盐、11C-蛋氨酸、11C-carfentanil等药物的研究,扩展了制备方法使用范围。

LOOP 环法制备11C-CH也有一定的局限性,产品制备后需要对LOOP环进行及时清洗,管壁残留反应液可能会影响下次产品合成效率;LOOP环最佳重复使用次数也有待研究。

4 结论

本研究采用LOOP环法合成11C-CH,并优化了11C-CH的合成条件。采用前体N,N-二甲基乙醇胺本身做反应溶剂,同时提供碱催化,反应前体的浓度较高,更有利于取代反应的进行;确定11C-CH前体的使用量为60~150 uL;与文献报道的LOOP环法及C18柱固相合成法相比,本研究的LOOP环法合成产量有较大提高;缩短了制备终产品所需的时间;减少了C-18柱的使用量,LOOP环可以重复、多次利用,降低了生产成本;LOOP 环法还应用于11C-乙酸盐、11C-蛋氨酸等药物研究,扩展了制备方法使用范围;LOOP环法制备11C-CH的合成效率提高至(72.16±2.96)%(n=19,11C-CH3I未校正效率);优化条件后合成的11C-CH质量控制结果符合静脉注射要求。

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