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膜联蛋白A7过表达对人胃癌MGC-803细胞增殖和凋亡的影响

2021-08-05王小杰柏友兰刘明伟王新杰李宏伟

承德医学院学报 2021年4期
关键词:培养箱室温质粒

王小杰,柏友兰,刘明伟,王新杰,李宏伟,李 欣*

(1.承德医学院基础医学院,河北承德 067000;2.承德市中心医院肿瘤科;3.承德市围场满族蒙古族自治县医院消毒供应中心)

胃癌是全球最为常见的恶性肿瘤之一,在我国的发病率及死亡率较高[1],由于其早期症状不明显,加之当前缺乏简易灵敏的筛查标志物,多数患者发现时便已经是晚期,给人们的健康和生活带来严重威胁,因此,寻找早期诊疗标志物已经非常必要。膜联蛋白A7(annexin A7,ANXA7)是第一个被分离出来的Ca2+依赖的磷脂结合蛋白超家族的一员[2],在细胞水平上发挥着胞外分泌、膜运输以及钙离子动态平衡等多种功能[3]。除此之外,大量研究表明,ANXA7在多种恶性肿瘤组织中都有异常的表达。在胃癌组织中,ANXA7表达异常增高[4],这提示,ANXA7与胃癌的发生发展存在某种关联,本研究通过在胃癌MGC-803细胞过表达ANXA7,观察MGC-803细胞增殖和凋亡的改变,从而为胃癌诊疗标志物的寻找提供理论依据。

1 材料与方法

1.1 材料

人胃癌MGC-803细胞(赛百慷上海生物公司);细胞培养基1640及胎牛血清(Gibco公司,美国);CO2培养箱(贺利公司,德国);pcDNA3.1-ANXA7重组质粒及空质粒购自Sino Biological公司,转染试剂lipofectamine2000(lipo2000)(Invitroden公司产品,美国);ANXA7、PCNA、CyclinD1、Casepase-3、Cleaved casepase-3及β-actin鼠源单克隆抗体均(Epitomics公司,美国),羊抗鼠二抗(KPL公司,美国),CCK-8(APExBIO公司,美国),细胞凋亡试剂盒(BD公司,美国)。

1.2 方法

1.2.1 细胞培养及转染 人胃癌MGC-803细胞于含10%胎牛血清的1640培养基中,置于5%二氧化碳的37℃细胞培养箱中培养。将细胞分为ANXA7过表达组(pcDNA3.1-ANXA7)、阴性对照组(pcDNA3.1-NC)。其中ANXA7过表达组转染pcDNA3.1-ANXA7重组质粒,阴性对照组转染空质粒。取处于对数生长期的MGC-803细胞,转染前24h接种于6孔板中,每孔细胞2.5×105个,每孔加入2ml完全培养基,细胞达到60%~70%汇合度时,进行质粒转染,每孔质粒用量为2.5μg,lipo2000为5μg,无血清培养基稀释混合后室温静置15min,将混合物加入6孔板中。柔和混匀,置于培养箱中培养,于48h收集细胞进行后续相关检测。

1.2.2 Western blot检测ANXA7过表达情况 收集各组细胞,每孔加入100μl细胞裂解液,提取细胞总蛋白,采用BCA蛋白定量试剂盒检测总蛋白浓度,100℃处理10min使蛋白变性,每个泳道加入30μg蛋白,80V稳压电泳,2.5mA/cm2稳流转膜,封闭过夜,ANXA7单抗(1:1000)室温孵育2h,TBST洗膜3次,二抗(1:5000)室温孵育1h,TBST洗膜3次,ECL超敏发光,使用化学发光仪显影并保存条带。Quantity One 4.6.2软件计算条带灰度值,计算ANXA7/β-actin数值,即ANXA7的相对表达量。

1.2.3 CCK-8实验 质粒转染12h后将细胞消化成细胞悬液,按5×103个/孔的密度接种于96孔板,每组5个副孔,每孔细胞悬液100μl,质粒转染48h时每孔加入10μl CCK-8溶液,将培养板在培养箱中放置2h,用酶标仪测定450nm处的吸光度值。

1.2.4 流式细胞术检测各组细胞凋亡率 质粒转染48h后,用不含EDTA的0.25%的胰蛋白酶消化细胞,制成单细胞悬液,每组计数5×105个,加入Annexin Ⅴ-FITC和PI各5μl进行双染,室温避光5min后上流式细胞仪检测。

1.2.5 Western blot检测增殖、凋亡及通路相关蛋白表达情况 收集各组细胞,每孔加入100μl细胞裂解液,提取细胞总蛋白,采用BCA蛋白定量试剂盒检测总蛋白浓度,100℃处理10min使蛋白变性,每个泳道加入30μg蛋白,80V稳压电泳,2.5mA/cm2稳流转膜,封闭过夜,PCNA、CyclinD1、Casepase-3、Cleaved casepase-3单抗(1:1000)室温孵育2h,TBST洗膜3次,二抗(1:5000)室温孵育1h,TBST洗膜3次,ECL超敏发光,于化学发光仪显影并保存条带。Quantity One 4.6.2软件计算条带灰度值,计算目的蛋白/β-actin数值,即目的蛋白的相对表达量。

2 结果

2.1 各实验组ANXA7的表达情况

与阴性对照组相比,pcDNA3.1-ANXA7组ANXA7蛋白的表达显著升高(P<0.05),差异有统计学意义(图1)。

图1 ANXA7表达情况

2.2 ANXA7过表达促进MGC-803细胞的增殖

与阴性对照组相比,pcDNA3.1-ANXA7组细胞的增殖活力明显增强,差异有统计学意义(P<0.05)。Western blot进一步检测各组细胞中增殖相关蛋白PCNA、CyclinD1的表达,发现pcDNA3.1-ANXA7组中PCNA和CyclinD1均升高(P<0.05),如图2:

图2 ANXA7过表达促进胃癌MGC-803细胞的增殖

2.3 ANXA7过表达抑制MGC-803细胞的凋亡

与阴性对照组相比,pcDNA3.1-ANXA7组细胞凋亡率显著降低,差异具有统计学意义(P<0.05)。采用Western blot进一步检测各组细胞凋亡相关蛋白Casepase-3、Cleaved casepase-3的表达,发现ANXA7过表达组中,Cleaved caspase-3的表达降低(P<0.05),差异有统计学意义;Casepase-3的表达变化不大,差异无统计学意义(P>0.05)(图3)。

图3 ANXA7过表达抑制MGC-803细胞的凋亡

3 讨论

胃癌是一种常见的消化道恶性肿瘤,早期难发现,易转移。其发病率及死亡率在全球范围内一直位居前列,其手术及放化疗治疗效果差,预后不良[5],寻找有效的诊疗标志物迫在眉睫。

ANXA7是一类具有广泛生物学功能的磷脂结合蛋白,与细胞的生长、分化、增殖及凋亡等环节密切相关[6,7]。很多研究发现ANXA7在多种肿瘤组织中存在着异常的表达[8,9],Yuan等[10]发现ANXA7在胃癌组织中的表达较癌旁正常组织明显增高。在本课题组之前的研究中,我们通过免疫组化检测了ANXA7在细胞中的定位,Western blot和RT-PCR分别从蛋白和mRNA水平检测了胃癌组织及癌旁组织中ANXA7的表达,发现ANXA7 主要定位于细胞质中,在正常胃组织中胃腺上皮细胞胞质呈浅黄色,在胃癌细胞中呈深黄色,ANXA7在胃癌组织中的表达明显增高,差异显著[11]。叶卫华等通过检测ANXA7在胃癌患者癌组织及外周血液中的变化情况发现ANXA7在胃癌组织中的表达升高,其表达水平与胃癌的恶性程度与进展密切相关,且胃癌患者外周血液中ANXA7的水平能较好反映其在癌组织中的表达水平[12]。以上研究表明,ANXA7与胃癌的发生发展可能存在某种关联。本研究通过在人胃癌MGC-803细胞中过表达ANXA7,检测其对胃癌细胞增殖和凋亡的影响,进一步明确ANXA7在胃癌的发生发展中的作用。

CyclinD1是一个由人类CCND1基因所编码的蛋白质,是细胞周期G1期和S期的转换开关,研究表明CyclinD1可正向调控细胞周期,其增高可促进肿瘤细胞恶性增殖[13]。增殖核抗原PCNA是仅在增殖细胞中合成与表达的一种酸性非组胺核蛋白,该蛋白在DNA复制合成修复过程中必不可少。PCNA可反映肿瘤细胞的增殖活性,是评估细胞增殖状态的黄金指标[14]。本研究发现,在胃癌MGC-803细胞中过表达ANXA7之后,细胞增殖活力增强,CyclinD1和PCNA蛋白表达升高,表明ANXA7促进了胃癌MGC-803细胞的增殖。

Caspase-3为天冬酞胺特异酶切的半胱氨酸蛋白酶,在细胞凋亡早期阶段,其常常作为关键酶被激活,Caspase-3在细胞凋亡过程中承前启后,是目前已知的凋亡最终执行因子,被称为死亡蛋白酶[15]。Caspase-3在细胞中通常以无活性的Caspase-3前体存在,只有当细胞接收到凋亡信号指令或受到外界刺激时,Caspase-3才能转变为有活性的Caspase-3,又称为裂解的Caspase-3,即Cleaved Caspase-3,其具有成熟酶的性质,可通过酶切割特异性底物,DNA依赖性蛋白激酶等参与细胞凋亡的发生[16]。因此,人们常把Caspase-3的激活作为判断细胞凋亡严重性的黄金指标之一。若Caspase-3蛋白的激活受到抑制,则凋亡明显减少。本研究显示,在MGC-803细胞中将ANXA7过表达后,ANXA7过表达组Cleaved caspase-3蛋白表达低于阴性对照组,提示ANXA7的过表达可能抑制了Caspase-3前体的激活而导致Cleaved caspase-3表达减少,从而减轻了胃癌细胞凋亡的产生,流式细胞术的检测结果正好与之吻合,过表达组细胞凋亡率显著降低。

综上,ANXA7在胃癌MGC-803细胞中过表达可促进细胞增殖,抑制细胞凋亡,有望为临床胃癌诊疗备选标记物的筛选提供一定的参考。

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