miR-204-3p靶向CYP2E1介导脂多糖诱导的肾小管上皮细胞损伤
2021-04-24朱志伟郑培明王荣
朱志伟 郑培明 王荣
脂多糖(lipopolysacharide,LPS)可加重肾小管上皮细胞炎症反应并可促进疾病发生及发展[1]。研究表明miR-204-3p 在心肌细胞缺氧/复氧损伤中表达下调,miR-204-3p 过表达可减轻缺氧/复氧诱导的心肌细胞损伤[2]。生物信息学分析显示细胞色素P450 家族2 亚家族E 成员1(Cytochrome P450 2E1,CYP2E1)可能是miR-204-3p 的靶基因,研究表明CYP2E1 在酒精性胰腺炎中表达上调并可参与该疾病发生过程[3]。但miR-204-3p 是否可通过靶向调控CYP2E1 的表达而影响肾小管上皮细胞损伤尚未可知。因此,本研究通过LPS 诱导肾小管上皮细胞,探讨miR-204-3p 对肾小管上皮细胞炎症反应及细胞凋亡的影响,分析其对CYP2E1 的靶向调控作用,为进一步揭示肾小管上皮细胞损伤的分子机制奠定理论基础。
1 材料与方法
1.1 材料与试剂
人肾小管上皮细胞HK-2 购自上海基尔顿生物;LPS 购自北京百奥莱博科技有限公司;Lipofectamine2000 购自美国Thermo Fisher 公司;miR-204-3p mimics 及阴性对照miR-NC、si-CYP2E1、si-NC、anti-miR-204-3p 购自广州锐博生物;pcDNA3.1 购自上海柯雷生物;Trizol 试剂购自美国Invitrogen;反转录试剂盒与实时荧光定量PCR 试剂盒购自大连宝生物;IL-6、TNF-α 检测试剂盒购自南京建成生物;细胞凋亡试剂盒购自美国Sigma;兔抗人CYP2E1 抗体购自上海生工生物;兔抗人Bcl-2、Bax 抗体购自美国CST 公司;二抗购自美国Abcam。
1.2 方法
1.2.1 实验分组
肾小管上皮细胞(2×105个/mL)接种于6 孔板(150 μL/孔),加入含有10 μg/mL LPS 的培养液处理24 h[4],记作LPS组。同时将未经处理的细胞作为Con组。分别将miR-NC、miR-204-3p mimics、si-NC、si-CYP2E1、miR-204-3p mimics 与pcDNA、miR-204-3p mimics 与pcDNA-CYP2E1 转染至肾小管上皮细胞48 h,加入含有10 μg/mL LPS的培养液处理24 h,分别记作LPS+miR-NC 组、LPS+miR-204-3p 组、LPS+si-NC 组、LPS+si-CYP2E1 组、LPS+miR-204-3p+pcDNA 组、LPS+miR-204-3p+pcDNA-CYP2E1 组。
1.2.2 qRT-PCR 检测细胞中miR-204-3p、CYP2E1 mRNA 的表达水平
收集各组肾小管上皮细胞,采用Trizol 法提取细胞中的总RNA。参照反转录试剂盒将RNA 合成cDNA。以cDNA 为模板进行qRT-PCR 反应,根据试剂盒说明书配置反应体系,采用2-ΔΔCt法计算miR-204-3p、CYP2E1 mRNA 的相对表达量。
1.2.3 酶联免疫吸附法(ELISA)检测IL-6、TNF-α的水平
收集各组肾小管上皮细胞培养上清液,采用ELISA 法检测IL-6、TNF-α 的水平,严格按照试剂盒说明书进行操作。
1.2.4 流式细胞术检测细胞凋亡率
收集各组肾小管上皮细胞,预冷PBS 洗涤,加入500 μL Binding Buffer 悬浮细胞,依次分别加入5 μL Annexin V-FITC 与5 μL PI,充分混匀,室温避光孵育20 min,应用流式细胞仪检测细胞凋亡率。
1.2.5 双荧光素酶报告基因检测miR-204-3p 的靶基因
构建野生型载体WT-CYP2E1、突变型载体MUT-CYP2E1,分别将miR-NC、miR-204-3p mimics 与WT-CYP2E1、MUT-CYP2E1 共转染至肾小管上皮细胞,转染48 h 后加入双荧光素酶报告基因检测试剂盒相关试剂,按说明书操作检测荧光素酶活性。
1.2.6 Western blot 检测CYP2E1、Bcl-2、Bax 蛋白表达
RIPA 裂解液提取细胞总蛋白,取30 μg 变性蛋白进行SDS-PAGE,转膜,采用5%脱脂奶粉封闭2 h,孵育一抗稀释液(1∶1 000),孵育二抗稀释液(1∶2 000),滴加ECL,曝光,显影,应用ImageJ 软件分析各条带灰度值。
1.3 统计学处理
采用SPSS 21.0 统计学软件分析数据;计量资料以(±s)表示且均符合正态分布,两组间比较采用独立样本t检验,多组间比较采用单因素方差分析;以P<0.05 为差异有统计学意义。
2 结果
2.1 miR-204-3p 和CYP2E1 在脂多糖刺激的肾小管上皮细胞中的表达
LPS 组细胞中miR-204-3p 的表达水平降低,CYP2E1 mRNA 及蛋白表达量显著升高,与Con 组比较,差异有统计学意义(P<0.05)。见图1、表1。
图1 CYP2E1 蛋白表达Figure 1 The expression of CYP2E1 protein
表1 miR-204-3p 和CYP2E1 在脂多糖刺激的肾小管上皮细胞中的表达(±s,n=9)Table 1 The expression of miR-204-3p and CYP2E1 in renal tubular epithelial cells stimulated by lipopolysaccharide(±s,n=9)
表1 miR-204-3p 和CYP2E1 在脂多糖刺激的肾小管上皮细胞中的表达(±s,n=9)Table 1 The expression of miR-204-3p and CYP2E1 in renal tubular epithelial cells stimulated by lipopolysaccharide(±s,n=9)
分组Con LPS t 值P 值miR-204-3p 1.01±0.09 0.58±0.05 12.530 0.000 CYP2E1 mRNA 0.99±0.08 3.01±0.29 20.144 0.000 CYP2E1 蛋白0.42±0.04 0.83±0.07 15.256 0.000
2.2 miR-204-3p 过表达对脂多糖诱导的肾小管上皮细胞炎症因子表达和凋亡的影响
与Con 组比较,LPS 组IL-6、TNF-α 水平、凋亡率及Bax 蛋白水平升高,Bcl-2 蛋白水平降低,差异有统计学意义(P<0.05);与LPS+miR-NC 组比较,LPS+miR-204-3p 组IL-6、TNF-α 水平、凋亡率及Bax 蛋白水平降低,Bcl-2 蛋白水平升高,差异有统计学意义(P<0.05),见图2、表2。
图2 miR-204-3p 过表达对脂多糖诱导的肾小管上皮细胞凋亡的影响Figure 2 The effect of miR-204-3p overexpression on the apoptosis of renal tubular epithelial cells induced by lipopolysaccharide
2.3 抑制CYP2E1 表达对脂多糖诱导的肾小管上皮细胞炎症因子表达和凋亡的影响
与LPS+si-NC 组比较,LPS+si-CYP2E1组IL-6、TNF-α水平、凋亡率及Bax蛋白水平降低,Bcl-2蛋白水平显著升高,差异有统计学意义(P<0.05),见图3、表3。
图3 抑制CYP2E1 表达对脂多糖诱导的肾小管上皮细胞凋亡的影响Figure 3 The effect of inhibiting CYP2E1 expression on the apoptosis of renal tubular epithelial cells induced by lipopolysaccharide
表2 miR-204-3p 过表达对脂多糖诱导的肾小管上皮细胞炎症因子表达和凋亡的影响(±s,n=9)Table 2 The effect of miR-204-3p overexpression on the expression of inflammatory factors and apoptosis of renal tubular epithelial cells induced by lipopolysaccharide(±s,n=9)
表2 miR-204-3p 过表达对脂多糖诱导的肾小管上皮细胞炎症因子表达和凋亡的影响(±s,n=9)Table 2 The effect of miR-204-3p overexpression on the expression of inflammatory factors and apoptosis of renal tubular epithelial cells induced by lipopolysaccharide(±s,n=9)
分组Con LPS LPS+miR-NC LPS+miR-204-3p F 值P 值miR-204-3p 1.00±0.05 0.57±0.05 0.55±0.06 0.81±0.07 122.022 0.000 IL-6(ng/mL)3.45±0.36 15.24±1.53 16.22±1.74 6.21±0.62 251.116 0.000 TNF-α(ng/mL)1.74±0.17 8.36±0.83 8.57±0.81 3.55±0.36 283.598 0.000凋亡率(%)6.58±0.66 27.32±2.71 29.65±2.84 11.02±1.13 280.387 0.000 Bcl-2 蛋白0.67±0.06 0.25±0.03 0.23±0.03 0.59±0.05 236.203 0.000 Bax 蛋白0.30±0.03 0.78±0.07 0.79±0.06 0.38±0.03 234.495 0.000
表3 抑制CYP2E1 表达对脂多糖诱导的肾小管上皮细胞炎症因子表达和凋亡的影响(±s,n=9)Table 3 The effect of inhibiting CYP2E1 expression on the expression of inflammatory factors and apoptosis of renal tubular epithelial cells induced by lipopolysaccharide(±s,n=9)
表3 抑制CYP2E1 表达对脂多糖诱导的肾小管上皮细胞炎症因子表达和凋亡的影响(±s,n=9)Table 3 The effect of inhibiting CYP2E1 expression on the expression of inflammatory factors and apoptosis of renal tubular epithelial cells induced by lipopolysaccharide(±s,n=9)
分组Con LPS LPS+si-NC LPS+si-CYP2E1 F 值P 值CYP2E1 蛋白0.41±0.04 0.85±0.07 0.87±0.08 0.50±0.05 131.123 0.000 IL-6(ng/mL)3.65±0.35 16.34±1.63 17.02±1.69 8.32±0.81 267.156 0.000 TNF-α(ng/mL)1.98±0.19 8.92±0.88 9.01±0.89 5.69±0.54 210.345 0.000凋亡率(%)7.02±0.71 28.41±2.84 28.69±2.88 13.58±1.37 227.065 0.000 Bcl-2 蛋白0.66±0.06 0.24±0.03 0.22±0.03 0.53±0.05 215.506 0.000 Bax 蛋白0.31±0.03 0.76±0.07 0.77±0.07 0.42±0.04 162.049 0.000
2.4 miR-204-3p 靶向调控CYP2E1 的表达
TargetScan 预测显示CYP2E1 的3'UTR 中含有与miR-204-3p 互补的核苷酸序列,见图4。双荧光素酶报告实验结果显示,miR-204-3p过表达可降低WTCYP2E1 的荧光素酶活性显著降低,差异有统计学意义(P<0.05),见表4。miR-204-3p 负向调控CYP2E1的表达,差异有统计学意义(P<0.05)。见图5、表5。
图4 CYP2E1 的3'UTR 中含有与miR-204-3p 互补的核苷酸序列Figure 4 The 3'UTR of CYP2E1 contains a nucleotide sequence complementary to miR-204-3p
表4 双荧光素酶报告实验检测结果(±s,n=9)Table 4 Dual luciferase report test results(±s,n=9)
表4 双荧光素酶报告实验检测结果(±s,n=9)Table 4 Dual luciferase report test results(±s,n=9)
分组miR-NC miR-204-3p t 值P 值WT-CYP2E1 1.03±0.07 0.61±0.06 13.667 0.000 MUT-CYP2E1 1.05±0.06 1.02±0.08 0.900 0.381
3 讨论
图5 CYP2E1 蛋白表达Figure 5 The expression of CYP2E1 protein
表5 miR-204-3p 调控CYP2E1 蛋白的表达(±s,n=9)Table 5 miR-204-3p regulated the expression of CYP2E1 protein(±s,n=9)
表5 miR-204-3p 调控CYP2E1 蛋白的表达(±s,n=9)Table 5 miR-204-3p regulated the expression of CYP2E1 protein(±s,n=9)
分组miR-NC miR-204-3p anti-miR-NC anti-miR-204-3p F 值P 值CYP2E1 蛋白0.43±0.04 0.21±0.02 0.42±0.04 0.86±0.07 315.388 0.000
miR-204-3p 通过调节乳酸脱氢酶介导的糖酵解而抑制膀胱癌细胞增殖[5]。研究表明miR-204-3p 通过靶向Braykinin B2 受体而减轻高糖诱导的MPC5 足细胞凋亡[6]。相关报道指出miR-204-3p可调控甲状腺乳头状癌细胞增殖、凋亡等生物学行为[7]。本研究结果显示LPS 诱导的肾小管上皮细胞中miR-204-3p 的表达量降低。IL-6、TNF-α 水平升高可促进体内炎症反应的发生从而促使疾病进展[8]。本研究结果显示LPS 处理后IL-6、TNF-α 水平升高,而miR-204-3p 过表达可显著减低IL-6、TNF-α水平,提示miR-204-3p 过表达可减轻LPS 诱导的肾小管上皮细胞炎症损伤。本研究结果显示LPS 处理后肾小管上皮细胞凋亡率升高,而miR-204-3p过表达可抑制细胞凋亡,提示miR-204-3p 过表达可抑制LPS 诱导的肾小管上皮细胞凋亡。
CYP2E1 在高糖诱导的小鼠心脏微血管内皮细胞损伤中表达增加,槲皮素通过抑制CYP2E1表达减轻高糖诱导的小鼠心脏微血管内皮细胞损伤[9]。CYP2E1 在酒精性肝病大鼠模型的肝组织中表达增强,抑制CYP2E1 可减轻脂质过氧化反应[10]。本研究结果显示LPS 诱导的肾小管上皮细胞中CYP2E1 表达上调,进一步分析显示抑制CYP2E1 表达后IL-6、TNF-α 水平降低,细胞凋亡率降低,提示抑制CYP2E1 表达可抑制LPS 诱导的肾小管上皮细胞炎症反应及细胞凋亡。本研究证实miR-204-3p 能够靶向结合CYP2E1,CYP2E1 过表达可减弱miR-204-3p 过表达对LPS 诱导的肾小管上皮细胞炎症因子表达及凋亡的作用。
综上所述,LPS 诱导的肾小管上皮细胞中miR-204-3p 表达下调,CYP2E1 表达上调,miR-204-3p过表达可抑制LPS 诱导的肾小管上皮细胞炎症反应及细胞凋亡,其作用机制可能与靶向调控CYP2E1 的表达有关,可为急性肾损伤等肾脏疾病的诊断及治疗提供科学依据。