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高效液相色谱法同时检测纺织品中25种致癌芳香胺

2020-12-30颜怀玉秦朝秋

印染助剂 2020年12期
关键词:偶氮染料乙酸铵芳香

邢 飞,任 亮,颜怀玉,王 玫,孙 赟,秦朝秋

(大连海关,辽宁大连 116000)

在纺织品着色过程中,染料、印染助剂、黏合剂等的使用导致纺织品中残留部分致癌芳香胺[1],这些致癌芳香胺会引起人体病变和诱发癌症,严重危害人体健康[2-4]。禁用偶氮染料是指在一定条件下能还原出致癌芳香胺的偶氮染料,因此禁用偶氮染料检测也叫致癌芳香胺检测。欧盟、德国、日本及我国都有明文规定,禁止生产和销售检测出禁用偶氮染料的纺织品,现行的国际标准EN ISO 14362-1:2017和中国国家标准GB/T 17592—2011中都明确规定了禁用偶氮染料的种类[5-7]。

致癌芳香胺的常用检测技术有气质联用色谱法(GC-MS)和高效液相色谱法(HPLC)等。气质联用色谱法作为检测禁用偶氮染料的主要手段,灵敏度高、分析速度快、选择性好、定性分析和定量分析均可[8-10],但是对同分异构体的鉴别有较大的局限性,结果也并非完全可靠,进样口高温分解等原因容易导致假阳性,严重影响分析的准确性[10-12]。高效液相色谱法在分析测定某些高沸点、热不稳定的致癌芳香胺及同分异构体方面具有优势,引入二极管阵列检测器后,借助紫外光谱的特性,定性、定量的可靠性有所提高,能对气质联用法检测结果进行验证,降低误判风险[13-15]。

我国现行纺织品中禁用偶氮染料的测试方法为GB/T 17592—2011,该方法的高效液相色谱法只能检测出21种致癌芳香胺,检测一个样品耗时长达50 min,流动相采用甲醇-磷酸盐体系,会造成柱压过大、柱子易堵塞等问题。为避免使用磷酸盐体系,本研究开发的高效液相色谱检测方法采用Accucore aQ色谱柱,可以更加快速、有效、准确地对致癌芳香胺进行分析检测。

1 实验

1.1 仪器和试剂

ULTIMATE 3000高效液相色谱仪[DAD检测器,赛默飞世尔科技(中国)有限公司],R-215旋转蒸发仪(瑞士步琦有限公司),SHA-B恒温振荡器(常州智博瑞仪器制造有限公司);甲醇[色谱纯,赛默飞世尔科技(中国)有限公司],乙腈(色谱纯,DikmaPure公司),乙酸铵、冰乙酸(色谱纯,上海麦克林生化科技有限公司),氨水(分析纯,国药集团化学试剂有限公司),芳香胺标准品(色谱纯,纯度大于等于98.0%,北京迪科马科技有限公司),25种芳香胺混合标准品(100 mg/L,色谱纯)。

1.2 标准溶液的制备

准确称取各芳香胺标准品,然后用乙腈配制成1 000 mg/L的标准储备液,使用时用乙腈稀释至所需质量浓度。

1.3 样品前处理和色谱条件

样品前处理参照GB/T 17592—2011进行。色谱柱为Accucore aQ(150 mm×4.6 mm,2.6 μm);流动相A为甲醇,流动相B为乙酸铵水溶液(20 mmol/L,pH 6.9)。梯度洗脱程序:0~3.0 min,5%~18%流动相A,保持3 min;6.0~10.9 min,18%~35%流动相A;10.9~22.0 min,42%流动相A;22.0~30.0 min,42%~95%流动相A;30.0~30.1 min,95%~5%流动相A,保持5 min。流速1 mL/min,柱温40 ℃,进样量2 μL,二极管阵列检测器,检测波长为240、280、305 nm。

2 结果与讨论

2.1 色谱条件的优化

2.1.1 色谱柱

Accucore aQ色谱柱与100%水流动相兼容,对极性物质具有独特的选择性,适用于碱性物质的分离,能有效分离芳香胺化合物,符合快速分离的要求。

2.1.2 流动相

由图1可以看出,流动相采用甲醇-20 mmol/L冰乙酸(图1c)和乙腈-20 mmol/L冰乙酸(图1d)时基线不平稳,出峰少,分离度不理想;采用甲醇-20 mmol/L乙酸铵(图1a)和乙腈-20 mmol/L乙酸铵(图1b)时均有良好的峰型和分离效果。因为目标芳香胺属于碱性物质,乙酸铵体系pH低于冰乙酸体系,更适合芳香胺的分离;同时考虑到乙腈价格昂贵,最终选择甲醇-20 mmol/L乙酸铵作为流动相,既节约成本又能够达到良好的分离效果。

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图1 不同流动相时致癌芳香胺的色谱图

2.1.3 流动相质量浓度

GB/T 17592—2011中采用甲醇-磷酸盐体系,称取0.575 g磷酸二氢铵(115.03 g/mol)、0.700 g磷酸氢二钠(141.96 g/mol)溶于1 000 mL水中,流动相总离子强度为0.575/115.03+0.700/141.96≈10 mmol/L。由图2可知,当乙酸铵浓度为5、10 mmol/L时峰型拖尾,分离效果不理想;当乙酸铵浓度为20 mmol/L时分离效果最好,但由于乙酸铵浓度越高,黏度越大,越容易造成仪器系统压力过高,降低色谱柱的寿命。在保证分离度和响应值满足要求的前提下,应尽量降低乙酸铵的浓度,因此乙酸铵浓度选择20 mmol/L。

图2 不同乙酸铵浓度时致癌芳香胺的色谱图

2.1.4 流动相pH

Accucore aQ色谱柱最佳pH为2.0~8.0,参考GB/T 17592—2011中甲醇-磷酸盐体系pH 6.9,考察pH对致癌芳香胺分离效果的影响。由图3可知,当pH为4.9时基线不平,峰型差,分离度差;随着pH的增大,基线越来越平稳,峰型越来越尖锐,分离效果加强;当pH为6.9时,流动相对目标物质的分离效果最佳,因为目标芳香胺属于碱性物质,pH增大有利于有机溶剂对目标物质的分离,分离度大大增强;但是当pH增大至7.9时,基本接近色谱柱最佳范围的最高值,分离效果有所下降。故pH选择6.9。

图3 不同pH时致癌芳香胺的色谱图

按照梯度洗脱程序进行实验,除9和10、14和15号芳香胺外,其他芳香胺分离完全(图4)。

图4 致癌芳香胺的色谱图

通过观察紫外光谱图(图5)发现,9号芳香胺的紫外吸收为225.00 nm/246.74 nm/202.07 nm,10号芳香胺为202.01 nm/240.17 nm/293.66 nm;14号芳香胺为207.87 nm/282.17 nm/192.72 nm,15号芳香胺为204.17 nm/262.32 nm/191.92 nm,因此通过光谱分析这两组芳香胺同样可以达到良好的分离效果。与GB/T 17592—2011相比,本研究建立的方法能够缩短分离时间(在35 min内完全分离)。

图5 紫外光谱图

2.2 标准品定容溶剂的选择

考察了甲醇、乙腈、乙腈/水(V/V=1/1)、叔丁基甲醚对致癌芳香胺的溶解情况及标准品的稳定情况。结果表明甲醇和乙腈的溶解效果最佳,但是2,4-二氨基甲苯在甲醇中不稳定,因此选择乙腈作为标准品的定容溶剂。

2.3 方法的线性范围和检出限

以标准品的峰面积(y)对检测值(x,mg/kg)绘制标准曲线,线性方程如表1所示,25种癌芳香胺在1~100 mg/L内均具有良好的线性关系,相关系数(r2)均大于等于0.999 0,检出限均小于等于1.0 mg/kg(以基线噪声的3倍计算)。

表1 25种芳香胺的线性方程、相关系数及检出限

2.4 回收率和精密度

依据GB/T 17592—2011[4-氨基偶氮苯经本方法分解为苯胺和(或)1,4-苯二胺,所以回收率和精密度依据GB/T 23344—2009进行分析],以空白基质样品进行3个水平的加标回收实验,每个水平平行测试6次。由表2可知,25种致癌芳香胺的平均加标回收率为51.7%~105.7%,相对标准偏差(RSD)为0.2%~2.6%,说明该检测方法有良好的准确度和精密度。

表2 空白样品3个水平标准添加实验的平均回收率与相对标准偏差(n=6)

续表2

2.5 实际样品检测

抽取部分送检的样品,测定纺织品中的致癌芳香胺,结果见表3。

表3 部分样品检测结果

由表3可看出,GC-MS检测3,3′-二甲氧基联苯胺的质量分数为89 mg/kg,HPLC-DAD检测其质量分数为92 mg/kg,两种方法的检测结果相差不大。HPLCDAD能够很好地对GC-MS检测结果进行验证。

3 结论

建立了HPLC-DAD检测25种致癌芳香胺的方法,较GB/T 17592—2011检测时间短,不使用磷酸盐体系,避免了柱压过大、易堵塞的问题,同时满足了致癌芳香胺的定性、定量分析。

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