APP下载

lncRNA BLACAT1靶向LEMD1促进结直肠癌细胞的增殖和转移

2020-11-16董满库姜福全林海冠孙晓敏刘景欣胡刚杨建武

实用肿瘤学杂志 2020年5期
关键词:细胞系直肠癌蛋白

董满库 姜福全 林海冠 孙晓敏 刘景欣 胡刚 杨建武

结直肠癌是临床上常见的胃肠道恶性肿瘤,其发病原因与家族遗传、饮食习惯和生活习惯等有关[1]。在我国及世界范围,结直肠癌的发病率在所有癌症中位居第三[2-3],其死亡率位居第四或第五[4]。深入研究结直肠癌患病机制,寻找药物作用新型靶点,对于治疗结直肠癌患者和预后均有重要的意义。

长链非编码RNA(Long non-coding RNA,lncRNA)是一类长度大于200 nt非编码蛋白的RNA[5]。近年来的研究结果表明,lncRNA通过表观遗传的方式参与细胞的增殖、迁移、凋亡等生物学过程,与许多疾病的发生发展密切相关[6-7]。目前,检测出与结直肠癌有关的lncRNA主要有HT19、HOTAIR、MALAT1及BLACAT1等[5]。lncRNA BLACAT1(Bladder cancer associated transcript 1)是一种调控基因功能的lncRNA,2017年首次在研究中发现其在膀胱癌、胃癌以及宫颈癌中高表达[8],敲低lncRNA BLACAT1能够降低星型细胞瘤的增殖和迁移能力[9]。在非小细胞肺癌组织中发现lncRNA BLACAT1异常高表达,并且与疾病分型相关[10]。研究发现,lncRNA BLACAT1高表达与结直肠癌分期及不良预后相关[11],目前没有其调控结直肠癌细胞增殖及转移机制的相关研究报道。本研究主要选择几种结直肠癌细胞系SW620、SW480、HT-29、LoVo、HCT116,检测各细胞系lncRNA BLACAT1的转录水平,筛选细胞系研究lncRNA BLACAT1对靶基因转录和蛋白表达的影响,以及调控细胞增殖和侵袭的过程。

1 材料和方法

1.1 材料

选取2018年6月30日—2019年6月30日战略支援部队特色医学中心普通外科10例结直肠癌手术患者的癌组织和癌旁组织;人结直肠癌细胞系SW620、SW480、HT-29、LoVo、HCT116,人正常结直肠上皮细胞FHC(中国医学科学院基础医学研究所细胞资源中心);McCoy′s 5A培养基、F12K培养基及DMEM/F12(Sigma公司);L-15培养基和胎牛血清(Gibco公司);HEPES、霍乱毒素、胰岛素、转铁蛋白、氢化可的松、人重组EGF(Sigma公司);CCK-8试剂盒(日本东仁化学公司);lncRNA BLACAT1、LEMD1、CARS2、BAMBI、TCF12的引物合成(北京博迈德基因技术有限公司);cDNA合成试剂盒、双荧光素酶报告基因试剂盒(Promega);SYBR Green染料(北京百奥莱博科技有限公司);si-BLACAT1、si-LEMD1、si-NC(广州锐博生物科技公司);p-BLACAT1构建(上海和元生物技术股份有限公司);LipofectAMINE 2000(Invitrogen公司);LEMD1抗体、GABDH抗体和HRP标记的二抗(Abcam公司)。

1.2 lncRNA BLACAT1在结直肠癌组织中的表达分析与细胞培养

通过starBase平台分析TCGA数据库中471例结直肠癌组织样本和41例癌旁组织样本lncRNA BLACAT1的表达差异(2020年3月);同时,选取10例患者的肿瘤组织和癌旁组织进行RNA提取和qPCR检测,比较lncRNA BLACAT1的表达差异。

人结直肠癌细胞系SW620、SW480、HT-29、LoVo、HCT116及人正常结直肠上皮细胞FHC分别使用L-15、L-15、F12K、McCoy′s 5A、McCoy′s 5A、DMEM/F12培养基,与胎牛血清按9:1体积比混合配置完全培养基,在含5% CO2培养箱中培养。

1.3 lncRNA BLACAT1在结直肠癌细胞系中的表达分析

用TRIzol法分别提取五种结直肠癌细胞和正常结直肠上皮细胞的总RNA,取2 μg样品按照反转录试剂盒步骤合成各细胞的cDNA。使用SYBR Green染料检测各细胞中lncRNA BLACAT1的mRNA表达水平。引物设计BLACAT1:正向,5′-TGACGTCTTACTACACCCATCCT-3′和反向,5′-CTGCCACCTATAGGAAATGCG-3′;GAPDH:正向,5′-TCCACCACCCTGTTGCTGTA-3′和反向,5′-ACCACAGTCCATGCCATCAC-3′。

1.4 验证lncRNA BLACAT1对结直肠癌细胞增殖、迁移和侵袭的影响

使用LipofectAMINE 2000转染si-BLACAT1于SW620细胞,同时设置si-NC组、blank control组。si-BLACAT1序列设计:5′-GAATTAGAAGCGAGGGGTT-3′。使用LipofectAMINE 2000在SW480SW620细胞中转染p-BLACAT1si-BLACAT1为si-BLACAT1组,并设置p-NCsi-NC组、空白对照组blank control组。细胞增殖利用CCK-8的方法,将转染24 h后的细胞以5×103/孔接种于96孔板,分别培养24 h、48 h、72 h后,根据试剂盒步骤检测细胞活力,酶标仪在450 nm处读取吸光光度值。细胞迁移通过Transwell检测,即转染24 h后的细胞5×104/孔于上室中,继续培养24 h,用4%多聚甲醛固定,通过DAPI染细胞核,荧光显微镜拍照记录,细胞迁移数目百分比计算细胞迁移率。侵袭实验利用Transwell上室接种转染24 h后细胞1×104/孔(含基质胶),下室加入含10%的L-15培养基,继续培养24 h,4%多聚甲醛固定并使用DAPI染细胞核,荧光显微镜记录培养24 h后细胞侵袭能力。

设置blank control组、p-BLACAT1组、si-LEMD1组、p-BLACAT1+si-LEMD1组;blank control组、si-BLACAT1组、p-LEMD1组、si-BLACAT1 +p-LEMD1组,检测细胞的增殖、迁移和侵袭能力,步骤同上。

1.5 lncRNA BLACAT1靶基因预测及qPCR筛选

starBase网站预测与lncRNA BLACAT1相互作用mRNA,选择四种靶基因LEMD1、CARS2、BAMBI、TCF12,qPCR检测SW620细胞和转染si-BLACAT1的SW620细胞中的几种可能靶基因的mRNA表达水平,Western blot验证靶基因的蛋白表达水平。引物设计LEMD1:正向,5′-CCATGTGAAGGGGATTCTACCAT-3′和反向,5′-GGGAGGTGAGACCAACAACT-3′;CARS2:正向,5′-ATGGCAGCCCTGAAGGTTCT-3′和反向,5′-CGGCTGGATACTTTAAGGCG-3′;BAMBI:正向,5′-CTAGAGAAGCAGGCGCTGAG-3′和反向,5′-ATCGCCACTCCAGCTACATC-3′;TCF12:正向,5′-TGTGCTTATCCTGTCCCTGG-3′和反向,5′-GAATTGTGGGTCCCATCTTGC-3′;GAPDH:正向,5′-TCCACCACCCTGTTGCTGTA-3′和反向,5′-ACCACAGTCCATGCCATCAC-3′。

通过starBase预测lncRNA BLACAT1与靶基因相互作用关系,双荧光素报告基因实验验证该基因为lncRNA BLACAT1的靶基因。

1.6 Western blot的检测方法

将细胞置于冰上裂解,离心提取细胞总蛋白,BCA方法检测蛋白浓度,向蛋白样本中加入上样缓冲液并加热变性,SDS-PAGE电泳并转膜,封闭抗体后孵一抗4℃过夜。次日加入辣根过氧化物酶标记的二抗(1∶1 000)常温孵育,然后加入化学发光液与蛋白条带反应,凝胶成像仪检测LEMD1的蛋白表达量。

1.7 统计学分析

2 结果

2.1 lncRNA BLACAT1在结直肠癌组织中的表达

TCGA数据库(图1A)和10例结直肠癌患者(图1B)的癌组织样本中lncRNA BLACAT1的表达量均明显高于癌旁组织样本(P<0.001),说明lncRNA BLACAT1在结直肠癌中可能发挥重要的生物学作用。

图1 lncRNA BLACAT1在结直肠癌组织中的表达差异Figure 1 The differential expression of lncRNA BLACAT1 in colorectal cancer and adjacent tissuesNote:A.The expression of lncRNA BLACAT1 in colorectal cancer tissues and adjacent tissues in the TCGA database;B.The differential expression of lncRNA BLACAT1 in colorectal cancer and adjacent tissues.*** P<0.001.

2.2 lncRNA BLACAT1在结直肠癌细胞系中的表达

lncRNA BLACAT1在结直肠癌细胞系SW620、SW480、HT-29、LoVo、HCT116中的表达显著高于正常结直肠细胞FHC(45.18±0.89,20.89±1.13,31.45±1.16,39.34±0.99,27.51±0.77vs. 1.00±0.05,P<0.001),其中,SW620细胞中的BLACAT1表达量最高,SW480细胞中的表达量最低(图2)。

图2 正常结直肠上皮细胞与结直肠癌细胞中lncRNA BLACAT1的表达差异Figure 2 The expression of lncRNA BLACAT1 mRNA between normal colorectal epithelial cells and colorectal cancer cellsNote:*** P<0.001.

2.3 lncRNA BLACAT1对促进结直肠癌细胞的增殖迁移和侵袭的影响

三组SW620细胞各时间点细胞活力值存在统计学差异(F组别×时间=2674,P组别×时间<0.001),48 h后,si-BLACAT组SW620细胞的细胞活力值显著低于blank control组和si-NC组(P<0.001)(图3A)。si-BLACAT组lncRNA BLACAT1的mRNA水平显著低于blank control和si-NC组(P<0.001)(图3B)。si-BLACAT组SW620细胞迁移和侵袭相对细胞数均显著低于blank control和si-NC组(P<0.001)(图4)。结果提示敲低lncRNA BLACAT1的SW620细胞的增殖、迁移和侵袭能力明显降低。

2.4 预测lncRNA BLACAT1的靶基因为LEMD1

si-BLACAT组SW620细胞的LEMD1、CARS2、BAMBI和TCF12的mRNA水平均低于blank control和si-NC组(P<0.001)(图5A),LEMD1 mRNA水平降低程度最高。Western blot实验结果显示,si-BLACAT组SW620细胞的LEMD1蛋白水平低于blank control和si-NC组(P<0.001)(图5B)。

图3 敲低lncRNA BLACAT1对SW620细胞活力及lncRNA BLACAT1 mRNA水平的影响Figure 3 The effects of knocking-down lncRNA BLACAT1 on cell viability and the level of lncRNA BLACAT1 mRNA in SW620 cellsNote:A.Knockdown of lncRNA BLACAT1 reduced viability of SW620 cells;B.Knockdown of lncRNA BLACAT1 reduced the level of lncRNA BLACAT1 mRNA in SW620 cells.***P<0.001,when compared with blank control and si-NC group.

图4 敲低lncRNA BLACAT1对SW620细胞迁移和侵袭的影响(DAPI染色×200)Figure 4 The effect of knocking-down lncRNA BLACAT1 on migration and invasion of SW620 cellsNote:A.The migration and invasion of SW620 cells were observed under a fluorescence microscope;B.The summary for percentage of migration and invasion in SW620 cells.when compared with blank control and si-NC group,*** P<0.001.

图5 lncRNA BLACAT1的靶基因预测Figure 5 Prediction the target gene of lncRNA BLACAT1Note:A.Knockdown of lncRNA BLACAT1 reduced the mRNA level of its predicted target gene LEMD1,when compared with blank control and si-NC group,* P<0.05,** P<0.01,*** P<0.001;B.Knockdown of lncRNA BLACAT1 reduced the expression level of the target gene LEMD1;C.The correlation analysis of lncRNA BLACAT1 and LEMD1 by starBase;D.The double luciferase reporter gene assay was used to detect LEMD1 as the target gene of lncRNA BLACAT1.

图6 敲低LEMD1及过表达lncRNA BLACAT1对SW620细胞活力和转移的影响(DAPI染色×200)Figure 6 The effects of knocking-down LEMD1 and overexpressing lncRNA BLACAT1 on the viability and metastasis of SW620 cellsNote:A.The effects of knocking-down LEMD1 and overexpressing lncRNA BLACAT1 on the viability of SW620 cells;B.Fluorescence microscopy was used to observe the effects of knocking-down LEMD1 and overexpressing lncRNA BLACAT1 on the migration and invasion of SW620 cells;C.The percentage of migration invasion in SW620 cells;D.The effects of knocking-down LEMD1 and overexpressing lncRNA BLACAT1 on the expression of LE620 LEMD1 protein in SW620 cells.when compared with blank control,*** P<0.001.

starBase软件分析了471例结直肠癌患者组织中lncRNA BLACAT1与LEMD1mRNA水平的相关关系,结果表明lncRNA BLACAT1与LEMD1表达呈正相关关系(r=0.778,P<0.001)(图5C)。双荧光素酶报告基因实验结果显示,与NC组相比,LEMD1组的荧光活性明显增加,说明lncRNA BLACAT1能够参与LEMD1的表达活性调控,促进其核酸算转录和蛋白翻译,LEMD1是lncRNA BLACAT1的靶基因(图5D)。

2.5 lncRNA BLACAT1通过上调靶基因LEMD1表达对结直肠癌细胞的增殖迁移和侵袭的影响

48 h后,与blank control组相比,si-LEMD1组细胞存活率显著降低(P<0.001),p-BLACAT1组细胞存活率显著增加(P<0.001)(图6A)。si-LEMD1组迁移和侵袭相对细胞数小于blank control组、p-BLACAT1组和p-BLACAT1+si-LEMD1组(P<0.001),p-BLACAT1组迁移和侵袭相对细胞数大于blank control组、si-LEMD1组和p-BLACAT1+si-LEMD1组(P<0.001)(图6B-C)。Western blot实验结果证实,相比blank control组,si-LEMD1组LEMD1蛋白表达水平明显降低(P<0.001),p-BLACAT1组LEMD1蛋白表达水平明显增加(P<0.001)(图6D)。结果说明lncRNA BLACAT1上调LEMD1蛋白表达促进SW620细胞增殖、迁移和侵袭。

3 讨论

结直肠癌作为患病率最高的癌症之一,死亡率较高,采用主要的治疗方案例如手术和化疗对晚期患者来说效果不佳,预后差。所以,寻找结直肠癌特征治疗靶点具有重要的意义。随着miRNA的发现,lncRNA也逐渐为人们熟知,现已发现其在肿瘤的发生发展过程中具有重要的作用[8]。研究肿瘤细胞中lncRNA的特征和功能,有利于我们从另一角度进一步了解癌症发生发展过程中的作用机制。

研究表明,存在多种lncRNA与结直肠癌的发展密切相关。H19是最早报道的长非编码RNA之一,它在不同癌症中的表达均上调,包括乳腺癌、肝胃肠道肿瘤、泌尿系肿瘤、呼吸系统肿瘤和脑肿瘤等[12],H19与许多癌症的增殖、迁移、侵袭和转移有关,H19的过表达促进了结肠癌细胞的上皮间质转化和肿瘤增殖[12-14]。HOTAIR的异常表达与乳腺癌、肝细胞癌、胃癌、结直肠癌、胰腺癌等多种肿瘤的发生发展密切相关,并影响患者的生存和预后[15]。MALAT1最初被认为是mRNA前剪接调节因子,它通过结合组蛋白修饰酶和转录因子来调节基因转录,并通过结合miRNAs的海绵作用转录后调节mRNA和蛋白质的表达,在人类不同器官来源的癌症组织,特别是转移癌组织中表达上调[16]。本研究根据前人文献中报道的结果,选择了一种在结直肠癌患者中高表达的lncRNA BLACAT1[17]。lncRNA BLACAT1在骨肉瘤中表达上调,并可以与STAT3相互作用,调节STAT3的磷酸化,促进骨肉瘤细胞的增殖和侵袭[18]。作为一种结直肠癌患者的特征标志物,lncRNA BLACAT1在G1/G0期阻滞中起关键作用,并且lncRNA BLACAT1可通过与EZH2结合抑制p15的表达,从而调节结直肠癌细胞的周期和增殖[17]。目前该基因在结直肠癌中的增殖和转移的作用机制还未知。所以我们首先检测了肿瘤组织与癌旁组织中lncRNA BLACAT1的转录水平,并检测了不同结直肠癌细胞系中lncRNA BLACAT1的转录水平。结果表明肿瘤组织中lncRNA BLACAT1的转录水平上调,在SW620细胞中lncRNA BLACAT1的转录水平明显上调。其次,我们研究了lncRNA BLACAT1转录水平的变化对SW620细胞增殖、迁移和侵袭的影响。在SW620细胞中敲低lncRNA BLACAT1抑制了其增殖、迁移和侵袭能力。随后,我们探讨了lncRNA BLACAT1促进结直肠癌细胞增殖和转移的作用机制。通过starBase数据库检索的结果,选择了几种与lncRNA BLACAT1可能存在相互作用的基因,为了验证这一结果,采用荧光定量PCR技术检测敲低lncRNA BLACAT1对几种基因转录水平的作用效果。结果显示,LEMD1的转录水平降低最明显,并且Western blot验证了该结果,初步表明lncRNA BLACAT1与LEMD1存在正向调控的关系。后续通过starBase数据库检索,同样表明lncRNA BLACAT1与LEMD1呈正相关,并通过双荧光素酶报告基因实验验证了LEMD1为lncRNA BLACAT1的靶基因。LEMD1是癌-睾丸抗原(CTA)编码蛋白,早期在前列腺癌和间变性大细胞淋巴瘤中发现其存在过表达[19]。基因表达谱检测发现,LEMD1在结直肠癌中的表达水平高于其相应的非癌粘膜中的表达水平[20]。研究表明,在口腔鳞状细胞瘤细胞中敲低LEMD1抑制了癌细胞的侵袭[19],表明该基因与癌细胞的增殖和转移相关[21]。最后,为了证明是否是因为lncRNA BLACAT1增加LEMD1的表达进而促进结直肠癌细胞增殖和转移,我们采用回复实验证实了过表达lncRNA BLACAT1将增加LEMD1的表达及SW620细胞的增殖和转移,敲低LEMD1将逆转这一结果。

综上所述,结直肠癌细胞SW620中lncRNA BLACAT1表达量增加,并上调LEMD1的表达,进而促进细胞增殖、迁移和侵袭。但是,其过程涉及的具体机制还需要深入研究。此研究为充分理解lncRNA BLACAT1在结直肠癌中的作用机制提供基础。

猜你喜欢

细胞系直肠癌蛋白
RNA结合蛋白与恶性肿瘤发生发展关系的研究进展
动物细胞培养技术研究现状与思考
去泛素化酶OTUD3调控胆固醇酯化酶SOAT1蛋白稳定性的机制
MRI在直肠癌诊断中的价值及预后的应用研究
多晒太阳或可降低结直肠癌发病率
早期结直肠癌患者凝血指标异常及其临床意义
人工驯养树鼩精子发生过程中MCM7蛋白的表达
基于U-net的直肠癌肿瘤的智能分割
水通道蛋白的发现
肌原纤维蛋白与大豆分离蛋白复合体系乳化性的研究