APP下载

荭草苷对APP/PS1转基因小鼠神经保护作用实验研究*

2020-06-06泽,韩锟,贾

陕西医学杂志 2020年5期
关键词:孵育海马转基因

张 泽,韩 锟,贾 宁

锦州医科大学附属第一医院神经内科(锦州121001)

阿尔茨海默病(Alzheimer's disease,AD)是一种发生于中老年的神经系统变性疾病。研究表明[1-3],AD 患者脑源性神经生长因子(Brain derived neurotrophic factor,BDNF)及其功能性酪氨酸激酶B(Tyrosine kinase B,Trk B)受体表达减少。BDNF 属于神经营养因子家族的成员,在神经再生的发生、发展中发挥重要作用,其作用于Trk B受体,发挥抗神经元凋亡、改善认知功能的作用。脑内大量的β-淀粉样蛋白(β-amyloid protein,Aβ)沉积形成的老年斑是AD特征性病理改变之一,而Aβ1-42 是老年斑的主要成分[4]。荭草苷(Orientin,Ori)是一种水溶性碳苷类黄酮化合物,为荭草、竹叶、金莲花的主要活性成分,具有抗氧化应激、抗衰老、抗炎、抗凋亡等多种神经保护作用,能够改善痴呆小鼠的认知功能[5-7]。本文以APP/PS1转基因小鼠为研究对象,研究Ori对此动物模型BDNF和Trk B受体的作用,以及对Aβ沉积的影响。

材料与方法

1 实验材料 动物:10月龄APP/PS1转基因小鼠24只,同月龄同背景C57BL/6J小鼠8 只,购自中国医科大学实验动物中心[许可证号:SYXK(辽)2012-007]。药品与试剂:荭草苷(纯度≥99%)购于成都曼思特生物科技有限公司;兔抗BDNF 抗体、兔抗TrkB受体抗体购于北京博奥森生物技术有限公司;Aβ1-42 ELISA 试剂盒购于Invitrogen 公司。仪器:Morris水迷宫(安徽正华生物仪器设备有限公司);电泳仪、凝胶成像系统(美国bio-rad公司);紫外分光光度计(德国Biophotometer)。

2 实验方法

2.1 动物分组与处理:将APP/PS1转基因小鼠随机分成三组,即模型组(Tg组)、Ori低剂量组(Tg/Ori-L组)和Ori高剂量组(Tg/Ori-H 组),对照组(NT 组)为同月龄同背景C57BL/6J小鼠。每组小鼠8只,雌雄各半,体重(25±3)g,各组小鼠体重比较无统计学差异。给药方法:NT 组和Tg组每天给予双蒸水5 ml腹腔注射,Tg/Ori-L 组和Tg/Ori-H 组每天分别给予Ori 10、50 mg/kg 5 ml腹腔注射,均给药4周。

2.2 Morris水迷宫实验行为学检测:给药结束24 h后行Morris水迷宫实验。实验分为定位航行实验和空间探索实验两部分。实验程序参照Morris等方法进行[8-9],检测各组小鼠的空间学习记忆能力。

2.3 Western blot检测BDNF 和Trk B 受体的蛋白表达:提取各组小鼠海马的总蛋白,采用BCA 法测定蛋白浓度。40μg蛋白样品经十二烷基硫酸钠-聚丙烯酰胺凝胶电泳分离后转膜,用5%牛奶封闭,加入一抗(BDNF,1∶500;Trk B 受体,1∶500;β-actin,1∶4000)4 ℃孵育过夜,再加入辣根过氧化物酶结合的二抗常温孵育1 h。ECL 显影,凝胶成像系统曝光,Image J软件分析。

2.4 ELISA 法检测海马区Aβ1-42水平:将各组小鼠的脑组织称重,加入8倍体积的盐酸胍裂解液研磨,室温下静置3~4 h。用反应缓冲液1∶50稀释样品后离心20 min,取上清用于可溶性Aβ1-42的测定,离心管底部沉淀再用70%甲酸溶解后离心1 h,收集上清液用于不可溶性Aβ1-42的测定。取标准品按说明书建立标准曲线。将标准品、样品各50μl分别加入微量酶标板内,立即向每孔加入50μl Aβ1-42抗体,置摇床室温孵育3 h。反复洗板4 次,室温孵育30 min。每孔加100μl染液覆盖,37 ℃孵育30 min。取出酶标板,每孔加终止液100μl,轻轻混匀,直至孔中的液体由蓝变黄。空白孔调零,30 min内在450 nm波长读取光密度(OD 值),根据曲线方程求出脑组织中Aβ1-42的浓度。

3 统计学方法 数据分析采用SPSS 13.0统计学软件进行。实验数据以均值±标准差(±s)表示,组间比较采用方差分析,P<0.05表示具有统计学差异。

结 果

1 Ori改善APP/PS1转基因小鼠学习记忆能力 各组小鼠定位航行试验显示,寻找平台逃避潜伏期(图1A)及平均路程(图1B)随着测试时间的延长而逐渐缩短。与NT 组相比,Tg组小鼠逃避潜伏期和寻找平台平均路程延长(P<0.05),经Ori治疗后均显著缩短(P<0.05),表明APP/PS1小鼠具有明显的空间学习障碍,Ori可以改善其能力。空间探索试验结果(图2)显示,Tg组小鼠穿梭原平台所在象限次数显著减少(P<0.05),经Ori治疗后次数均明显增加(P<0.05),提示APP/PS1转基因小鼠的空间记忆再现能力降低,Ori可改善其能力。与Tg/Ori-L 组比较,Tg/Ori-H 组逃避潜伏期、寻找平台平均路程和穿梭原平台所在象限次数均无统计学差异(P>0.05),说明Ori改善APP/PS1转基因小鼠的空间学习记忆能力无剂量相关性。

图1 各组小鼠寻找平台逃避潜伏期(A)和寻找平台平均路程(B)比较

图2 各组小鼠穿梭原平台所在象限次数比较

2 Ori调节APP/PS1转基因小鼠海马区BDNF和Trk B受体蛋白表达 见图3。Western blot结果显示,与NT 组比较,Tg 组小鼠海马BDNF 和TrkB受体蛋白表达减少(P<0.05);与Tg组相比,Tg/Ori-L组和Tg/Ori-H 组小鼠海马BDNF 和TrkB 受体蛋白表达增加(P<0.05);Tg/Ori-H 组小鼠海马BDNF和TrkB受体蛋白表达与Tg/Ori-L 组比较,差异无统计学意义(P>0.05)。

3 Ori减轻APP/PS1转基因小鼠海马区Aβ1-42水平 见表1。ELISA 结果显示,Tg组小鼠海马区可溶性Aβ1-42含量及不可溶性Aβ1-42含量较NT 组明显增高(P<0.05);与Tg组比较,Tg/Ori-L 组和Tg/Ori-H 组小鼠海马区可溶性Aβ1-42含量和不可溶性Aβ1-42含量降低,差异有统计学意义(P<0.05);与Tg/Ori-L组比较,Tg/Ori-H 组小鼠海马区可溶性和不可溶性Aβ1-42含量无统计学差异(P>0.05)。

图3 各组小鼠海马区BDNF和Trk B受体蛋白表达比较

表1 各组小鼠海马区可溶性及不可溶性Aβ1-42含量比较(±s)

表1 各组小鼠海马区可溶性及不可溶性Aβ1-42含量比较(±s)

注:与NT 组比较,#P<0.05;与Tg组比较,*P<0.05

组 别 可溶性Aβ1-42(pg/mg)不可溶性Aβ1-4(ng/mg)NT 组24.05±4.98 42.06±6.98 Tg组 67.05±8.15# 112.03±11.23#Tg/Ori-L组 32.31±6.32* 76.35±6.42*Tg/Ori-H 组 39.17±9.86* 71.05±7.35*

讨 论

Ori是一种水溶性碳苷类黄酮化合物,为荭草、竹叶、金莲花的主要活性成分。研究表明[1-3]:Ori具有抗氧化应激、抗衰老、抗炎、抗凋亡、神经保护等多种生物学作用,能够改善Aβ以及噪音诱导的痴呆小鼠的认知功能。但Ori改善痴呆小鼠认知功能的机制目前尚不清楚。

BDNF/Trk B是中枢神经系统的神经保护信号通路之一,其中BDNF 广泛分布于海马、皮质和杏仁核等区域[10],通过与细胞膜上的Trk B 受体特异性结合而激活酪氨酸蛋白激酶,引起酪氨酸残基的磷酸化,促进神经干细胞的分化和成熟神经元的存活,提升海马神经元在损伤环境下的自我修复及适应能力,调控神经递质的合成和释放,增强突触可塑性,维持AD 病理环境中树突的形态和功能,最终改善认知功能[11-12]。研究表明[13-14]:AD 动物模型及患者BDNF和Trk B受体表达均下降,并与年龄和病程呈负相关,给予痴呆动物模型外源性导入BDNF 则有明显的神经保护作用,减少了Aβ沉积,从而改善了模型的空间学习和记忆能力。本研究中模型组小鼠海马BDNF/Trk B含量下降,从而导致Aβ1-42 含量增加,与文献报道一致[15]。Ori可上调小鼠海马区BDNF/TrkB 的表达,减少Aβ1-42的含量。Aβ沉积形成的老年斑是AD 的经典病理改变,Aβ的生成与清除失衡是AD 的核心发病机制。在体和离体实验均表明BDNF 能通过下调脑Aβ的表达减少老年斑的形成,保护脑内神经元、颗粒细胞、星型胶质细胞等,从而使神经细胞免受Aβ多聚体的细胞毒性损伤,提高神经细胞的存活能力[15]。本研究中APP/PS1转基因痴呆小鼠脑内BDNF 和TrkB受体表达减少,Ori能上调BDNF 和TrkB 受体表达,进而减少海马Aβ沉积,从而提高了空间学习记忆能力。但本研究中Ori影响痴呆动物模型BDNF/Trk B表达无剂量依赖关系,仍需进一步分组研究。

猜你喜欢

孵育海马转基因
探秘转基因
扳机日血清雌激素不同水平时授精前后卵母细胞孵育时间对短时受精胚胎移植结局的影响
转基因,你吃了吗?
海马
用课程“孵育”会“发光”的教室
军事电子专业研究生创新能力的孵育与拓展
应用快速孵育法优化酶联免疫吸附实验过程探讨——以乙型肝炎病毒表面抗原检测为例
萌萌哒之长满痘痘的豆丁海马
天然的转基因天然的转基因“工程师”及其对转基因食品的意蕴
玩转转基因