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PMA对少突胶质细胞铁相关蛋白表达的影响

2020-03-18杜臣臣谢俊霞王俊

青岛大学学报(医学版) 2020年1期
关键词:受体

杜臣臣 谢俊霞 王俊

[摘要]目的 探讨4-b-佛波醇-12-豆蔻酸-13-乙酸酯(PMA)对未分化和分化的MO3.13少突胶质细胞铁相关蛋白表达的影响。

方法将MO3.13细胞分为对照组和PMA组。对照组用基础培养液进行细胞培养,PMA组的培养液内加入终浓度为100nmol/L的PMA,每3d换1次液。培养7d后,采用蛋白质免疫印迹实验检测两组细胞转铁蛋白受体1(TfR1)和铁调节蛋白1(IRP1)的表达水平。

结果与对照组相比,PMA组细胞TfR1和IRP1的表达水平均显著降低(t=3.002、2.654,P<0.05)。

结论100nmol/L的PMA可引起少突胶质细胞TfR1和IRP1的表达降低,这种变化可能与IRP1的调节有关。

[关键词]乙酸盐类;少突神经胶质;受体,转铁蛋白;铁调节蛋白质1

[中图分类号]R338.2

[文献标志码]A

[文章编号]2096-5532(2020)01-0014-03

帕金森病(PD)是一种常见的神经退行性疾病,其主要临床表现为静止性震颤、肌僵直、运动迟缓和姿势反射异常等[1-2]。有研究结果表明,铁沉积和氧化应激是PD的两个主要的病理特征[3-4]。铁对于细胞发育和维持中枢神经系统的各个生理过程至关重要,例如氧气运输、DNA合成、线粒体呼吸、髓磷脂合成和神经递质代谢等[5-6]。少突胶质细胞是中枢神经系统中形成髓鞘的细胞,它是由少突胶质细胞前体细胞(OPCs)分化而形成的[7-8]。铁蛋白是中枢神经系统中的主要储存蛋白,且在少突胶质细胞中检测到最高表达水平。因此,少突胶质细胞也是中枢神经系统中重要的铁调节细胞[9-11]。4-b-佛波醇-12-豆蔻酸-13-乙酸酯(PMA)是一种广泛用于体内外实验的蛋白激酶C(PKC)激活剂,它可以结合PKC,并激活PKC,随后导致一系列的细胞反应。有研究结果表明,未分化的MO3.13细胞在加入含100nmol/L的PMA的无血清培养液中培养7d后,检测到髓磷脂碱性蛋白(MBP)的免疫反应性大幅度上调[12]。然而,PMA是否影响少突胶质细胞内铁相关蛋白的表达,目前仍不清楚。本实验旨在探讨PMA对MO3.13少突胶质细胞内铁相关蛋白表达的影响,从而为PD的防治提供实验依据。现将结果报告如下。

1材料与方法

1.1材料

MO3.13少突膠质细胞购自于上海拜力生物科技有限公司。DMEM高糖培养基、胰酶均购自美国Hyclone公司,胎牛血清(FBS)购自Gibco公司,PMA、兔抗属单克隆一抗转铁蛋白受体1(TfR1)和铁调节蛋白1(IRP1)均购自Sigma公司,辣根过氧化物酶标记的山羊抗兔IgG二抗购自Absin公司,青霉素-链霉素溶液(100×)购自江苏海门碧云天生物技术研究所,BCA蛋白定量检测试剂盒为Thermo公司产品。所使用的仪器包括CO2培养箱、超净工作台和Western显影仪等。

1.2细胞培养及分组

将放置在液氮中的未分化MO3.13少突胶质细胞冻存管快速转移至37℃恒温水浴锅中进行融化。在超净工作台中将融化的未分化MO3.13少突胶质细胞从细胞冻存管中吸出,转至离心管中,再补入10mL的MO3.13少突胶质细胞完全培养液,用于稀释冻存液中的有害成分。将离心管放于离心机中,以1000r/min离心5min,沉淀细胞。弃上清,重新加入细胞培养液,用滴管吹打细胞后转入细胞培养瓶中,置于37℃、含体积分数0.05CO2的细胞培养箱中培养。当培养瓶中的细胞长至90%融合时,将细胞接种于6孔细胞板中,用MO3.13少突胶质细胞完全培养液培养24h,将原有的细胞培养液弃掉,加入含100nmol/LPMA的无血清培养液,置于37℃、含体积分数0.05CO2的细胞培养箱中培养。每3d换1次液,培养7d后,采用免疫荧光摄片的方法检测到成熟少突胶质细胞的标记物MBP的表达率大于90%,证明未分化的MO3.13少突胶质细胞分化成分化的MO3.13少突胶质细胞。本实验将细胞分为对照组(未分化的MO3.13少突胶质细胞)和PMA组(分化的MO3.13少突胶质细胞)。

1.3蛋白质免疫印迹实验检测铁相关蛋白表达

提取两组细胞蛋白,用BCA蛋白定量试剂盒检测蛋白浓度,根据蛋白浓度计算每个样本的上样量。蛋白经SDS-PAGE电泳后转移至PVDF膜上,采用100g/L的脱脂奶粉室温封闭2h,再分别加入β-actin(1∶10000)、TfR1(1∶1000)和IRP1(1∶1000)抗体,4℃下在摇床上孵育过夜。以TBST洗膜3次后,加入辣根过氧化物酶标记的山羊抗兔IgG二抗,室温下在摇床上孵育1h。再以TBST洗膜3次后,用ECL发光剂显影。应用ImageJ软件分析条带灰度值,结果以TfR1/β-actin和IRP1/β-actin的比值表示。实验重复3次。

1.4统计学分析

应用GraphPadPrism5.0软件进行统计学处理,结果以[AKx-D]±s表示,两组间比较采用t检验。

2结果

结果表明,PMA组细胞TfR1和IRP1蛋白的表达水平均明显低于对照组,差异均有统计学意义(t=3.002、2.654,P<0.05)。见表1。

3讨论

铁是生物体正常代谢所必需的微量元素,对大脑的发育至关重要[2,13]。不同的神经胶质细胞由不同的铁相关蛋白来调节细胞对铁的摄取。在人类中,无论是未分化的还是分化的少突胶质细胞,铁的转入都是通过TfR1介导转铁蛋白(Tf)或铁蛋白的摄取[14-15]。TfR1也被称为CD71,是一种Ⅱ型跨膜糖蛋白,在细胞表面上广泛表达,是介导细胞内铁摄取的主要受体[16]。有研究表明,TfR1是细胞铁稳态的关键调节剂,是参与铁吸收和细胞生长调节的必需蛋白质[17-18]。IRPs是铁代谢相关蛋白转录后调节的最重要的因素[19]。在铁缺乏期间,IRP1通过与铁反应元件(IRE)的一小部分mRNA转录物结合来提高铁水平,从而调节其翻译并维持体内铁的稳态[20]。IRP1与IRE结合可以抑制mRNA的翻译或增加mRNA的稳定性。当前的研究发现,IRE结构存在于TfR1mRNA的3′非翻译区。当IRP1与IRE结合时,TfR1mRNA的稳定性将得到提高,进而增加TfR1的表达[21]。本实验结果表明,PMA可同时降低分化的少突胶质细胞IRP1与TfR1的蛋白表达。推测PMA首先通过降低细胞IRP1的表达,进而使IRP1与TfR1mRNA的3′非翻译区的IRE结合率降低,从而降低细胞TfR1的表达,但其机制还有待进一步研究。

少突膠质细胞的发育和成熟需要一系列相互作用来调控OPCs的增殖和分化以及髓鞘的形成,而铁在这一过程中起到了决定性的作用[22]。少突胶质细胞需要铁参与髓鞘生成和作为酶的辅酶因子[23]。有研究表明,铁缺乏会对细胞周期起抑制作用,但当铁浓度超过一定的阈值后,增殖就会停止,分化就开始了。当增殖的OPCs暴露于高水平的铁时,细胞停止分裂并进行分化[24]。TfR1是少突胶质细胞中唯一调控铁转入的蛋白,本实验结果显示,用PMA对未分化的MO3.13细胞进行分化后,TfR1和IRP1的表达显著降低。分化的MO3.13少突胶质细胞的TfR1表达降低,表明分化的少突胶质细胞铁转入能力降低。故本文结果表明,未分化的MO3.13少突胶质细胞对铁的吸收能力大于分化的MO3.13少突胶质细胞,分化后的少突胶质细胞对铁的需求减少,不会再摄取更多的铁。本实验结果为PD的治疗提供了新的思路和靶点。

[参考文献]

[1]LIANTenghong,GUOPeng,ZUOLijun,etal.Tremor-dominantinParkinsondisease:therelevancetoironmetabolismandinflammation[J].FrontiersinNeuroscience,2019,13:255.

[2]PESCHB,CASJENSS,WOITALLAD,etal.ImpairmentofmotorfunctioncorrelateswithneurometaboliteandbrainironalterationsinParkinsonsdisease[J].Cells(Basel,Switzerland),2019,8(2):96-102.

[3]JIANGHong,SONGNing,WANGJun,etal.Peripheralirondextraninduceddegenerationofdopaminergicneuronsinratsubstantianigra[J].NeurochemistryInternational,2007,51(1):32-36.

[4]ZECCAL,CASELLAL,ALBERTINIA,etal.NeuromelanincanprotectagainstironmediatedoxidativedamageinsystemmodelingironoverloadofbrainagingandParkinsonsdi-sease[J].JournalofNeurochemistry,2008,106(4):1866-1875.

[5]LIUC,LIANGMC,SOONGTW,etal.Nitricoxide,ironandneurodegeneration[J].FrontiersinNeuroscience,2019,13:114.

[6]BENARROCHEE.Brainironhomeostasisandneurodegenerativedisease[J].Neurology,2009,72(16):1436-1440.

[7]BERGLESDE,RICHARDSONWD.Oligodendrocytedevelopmentandplasticity[J].ColdSpringHarborPerspectivesinBiology,2015,8(2):a020453.

[8]SNAIDERON,MBIUSW,CZOPKAT,etal.MyelinmembranewrappingofCNSaxonsbyPI(3,4,5)P3-dependentpolarizedgrowthattheinnertongue[J].Cell,2014,156(1/2):277-290.

[9]CONNORJR,MENZIESSL,STMARTINSM,etal.Cellulardistributionoftransferrin,ferritin,andironinnormalandagedhumanbrains[J].JournalofNeuroscienceResearch,1990,27(4):595-611.

[10]TODORICHB,ZHANGXS,SLAGLE-WEBBB,etal.Tim-2isthereceptorforH-ferritinonoligodendrocytes[J].JournalofNeurochemistry,2008,107(6):1495-1505.

[11]CONNORJR.Ironacquisitionandexpressionofironregulatoryproteinsinthedevelopingbrain:manipulationbyethanolexposure,irondeprivationandcellulardysfunction[J].DevelopmentalNeuroscience,1994,16(5/6):233-247.

[12]BOSCIAF,DAVANZOC,PANNACCIONEA,etal.SilencingorknockingouttheNa(+)/Ca(2+)exchanger-3(NCX3)impairsoligodendrocytedifferentiation[J].CellDeathandDifferentiation,2012,19(4):562-572.

[13]NDAYISABAA,KAINDLSTORFERC,WENNINGGK,etal.Ironinneurodegeneration—causeorconsequence[J]?FrontNeurosci,2019,13:180.

[14]MILLSE,DONGXP,WANGFD,etal.Mechanismsofbrainirontransport:insightintoneurodegenerationandCNSdisorders[J].FutureMedicinalChemistry,2010,2(1):51-64.

[15]CONNELLGJ,DANIALJS,HAASTRUTHERSCX.Evaluationoftheironregulatoryprotein-1interactome[J].Biometals,2018,31(1):139-146.

[16]GREENECJ,ATTWOODK,SHARMANJ,etal.Transferrinreceptor1upregulationinprimarytumoranddownregulationinbenignkidneyisassociatedwithprogressionandmortalityinrenalcellcarcinomapatients[J].Oncotarget,2017,8(63):107052-107075.

[17]RICHARDSONDR,KALINOWSKIDS,LAUS,etal.Cancercellironmetabolismandthedevelopmentofpotentironchelatorsasanti-tumouragents[J].BiochimicaetBiophysicaActa,2009,1790(7):702-717.

[18]DANIELSTR,BERNABEUE,RODRIGUEZJA,etal.Thetransferrinreceptorandthetargeteddeliveryoftherapeuticagentsagainstcancer[J].BiochimicaetBiophysicaActa-GeneralSubjects,2012,1820(3,SI):291-317.

[19]LIHuihui,LIUYutong,SHANGLongcheng,etal.Ironregulatoryprotein2modulatestheswitchfromaerobicglycolysistooxidativephosphorylationinmouseembryonicfibroblasts[J].ProceedingsoftheNationalAcademyofSciencesoftheUnitedStatesofAmerica,2019,116(20):9871-9876.

[20]WANGJ,PANTOPOULOSK.Regulationofcellularironmetabolism[J].BiochemicalJournal,2011,434(3):365-381.

[21]ZHOUZD,TANEK.Ironregulatoryprotein(IRP)-ironresponsiveelement(IRE)signalingpathwayinhumanneurodegenerativediseases[J].MolecularNeurodegeneration,2017,12(1):75-87.

[22]PANDURE,PAPR,VARGAE,etal.Relationshipofironmetabolismandshort-termcuprizonetreatmentofC57BL/6mice[J].InternationalJournalofMolecularSciences,2019,20(9):2257-2274.

[23]PINERODJ,CONNORJR.Ironinthebrain:animportantcontributorinnormalanddiseasedstates[J].Neuroscientist,2000,6(6):435-453.

[24]KULPKS,GREENSL,VULLIETPR.Irondeprivationinhibitscyclin-dependentkinaseactivityanddecreasescyclinD/CDK4proteinlevelsinasynchronousMDA-MB-453humanbreastcancercells[J].ExperimentalCellResearch,1996,229(1):60-68.

(本文編辑 马伟平)

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