PDCD4对高糖诱导的胰岛β细胞损伤的影响及机制研究
2019-11-01缑丽莎郑贝贝齐亚丹张翼
缑丽莎,郑贝贝,齐亚丹,张翼
(周口市中心医院内分泌科,河南 周口466000)
糖尿病是一种糖、蛋白质、脂肪等代谢紊乱的慢性疾病,糖尿病主要是由于机体内的胰岛素不足引起的,β细胞是一种内分泌细胞,其具有分泌胰岛素的作用,胰岛β细胞分泌胰岛素主要受到血糖的影响[1,2]。研究表明,胰岛β细胞过度凋亡引起的胰岛β细胞功能异常是糖尿病胰岛β细胞损伤发生的重要原因之一,探讨高糖环境下胰岛β细胞损伤机制对于研究糖尿病的发病机制具有重要意义[3]。程序性细胞死亡4(programmde cell death 4,PDCD4)是一种新发现的抑癌基因,其参与调控蛋白质翻译、基因的转录过程,在细胞程序性死亡过程中发挥促进作用[4]。近年来的研究显示,PDCD4参与糖尿病发生过程,与高糖环境下的心肌细胞、血管内皮细胞等细胞损伤发生有关[5-7]。本研究通过下调胰岛β细胞中PDCD4的表达水平,探讨敲低PDCD4在高糖诱导的胰岛β细胞损伤中的作用,为明确糖尿病胰岛β细胞损伤机制提供参考。
1 材料与方法
1.1 材料 胰岛β细胞INS-1购自武汉普诺赛(Procell)生命科技有限公司;PDCD4 siRNA重组慢病毒、阴性对照慢病毒由吉满生物科技(上海)有限公司构建;GAPDH、PDCD4引物由南京金斯瑞生物科技有限公司合成;Realtime PCR试剂盒(SYBR Green)购自上海索宝生物科技有限公司;丙二醛(malonaldehyde,MDA)含量检测试剂盒、超氧化物歧化酶 (Superoxide Orgotein Dismutase,SOD)含量检测试剂盒购自东仁化学科技(上海)有限公司;胰岛素含量检测试剂盒购自北京利维宁生物科技有限公司;活化型Caspase-3(Cleaved Caspase-3)抗体购自美国CTS。
1.2 慢病毒感染和分组 INS-1细胞接种到12孔细胞培养板内,细胞密度为35%左右时,取慢病毒液,添加到细胞中,感染复数为10,同时添加Polybrene(终浓度为 6mg/L),放在 37℃,5%CO2 培养箱内培养过夜,将病毒液吸弃,加入完全培养液,观察细胞融合度为90%,观察绿色荧光表达情况,感染效率高于90%。分别取稳定感染PDCD4 siRNA重组慢病毒、阴性对照慢病毒的INS-1细胞用含有25mmol/L葡萄糖的细胞培养液培养依次记为干扰组、阴性对照组,同时取没有感染慢病毒的INS-1细胞用含有25mmol/L葡萄糖的细胞培养液培养记为高糖组,没有感染慢病毒的INS-1细胞用含有5.5mmol/L葡萄糖的细胞培养液培养记为对照组。以Realtime PCR和Western blot检测高糖组、阴性对照组、干扰组细胞中PDCD4的表达变化,确定PDCD4 siRNA对高糖条件下INS-1细胞中PDCD4敲低效果。
1.3 Realtime PCR检测PDCD4表达变化 高糖组、阴性对照组、干扰组细胞培养48h以后,用Trizol试剂提取各组胰岛β细胞中的总RNA,取1μg的RNA样品,反转录合成cDNA后,根据Realtime PCR试剂盒(SYBR Green)检测PDCD4表达变化。PDCD4引物:上游5,-CCAAAGAAAGGTGGTGCA-3’,下游 5,-TGAGGTACTTCCAGTTCC-3’。 内参 GAPDH引物: 上游:5,-CCATGTTCGTCATGGGTGTGAACCA-3’, 下游 5,-GCCAGTAGAGGCAGGGATGATGTTC-3’。根据每个样本反应的Ct值,得到△Ct,根据2-△△Ct方法计算PDCD4表达变化。
1.4 Western blot检测PDCD4表达变化 高糖组、阴性对照组、干扰组细胞培养48h以后,添加细胞裂解溶液,冰浴40min后,在4℃,12000g离心10min,吸取上清(即蛋白溶液),用BCA方法检测蛋白浓度以后,添加Loading Buffer混合,置于沸水中煮5min后,添加至蛋白凝胶上样孔内,每个孔内的蛋白量为30μg,接入电源,50V电压观察蓝色条带进入到分离胶和浓缩胶的交接处以后,把电压调整为120V,等到蓝色条带跑出分离胶时,终止电泳。在300mA电流条件下将凝胶上的蛋白转移到PVDF膜上,转膜时间为100min,PVDF膜置于含有封闭液(5%牛血清白蛋白)的平皿内,放在室温反应2h。把PVDF膜放在抗体孵育袋中,以1mL/cm2添加 PDCD4 抗体(1:600),封口,放在 4℃中过夜,同样的方法与二抗反应后,化学发光,用Vision Workers LS分析光密度值,内参为GAPDH。
1.5 CCK8检测增殖变化 INS-1细胞按照105个/mL细胞密度接种到96孔板内,按照对照组、高糖组、阴性对照组、干扰组分组方法处理细胞,培养48h后,在每孔中添加CCK8工作液10μL,继续孵育4h后,调整酶标仪波长为450nm,以不含细胞的孔调零以后,测定每孔的OD值,把对照组细胞存活率设置为100%,分析高糖组、阴性对照组、干扰组细胞存活率变化。
1.6 流式细胞术检测凋亡变化 按照对照组、高糖组、阴性对照组、干扰组分组方法处理细胞,培养48h后,用PBS将细胞悬浮,4℃离心后,弃上清,添加300μL的结合缓冲液,再加入PI和Annexin VFITC染色以后,继续加入200μL的结合缓冲液,用流式细胞仪检测细胞凋亡变化。
1.7 Western blot检测Cleaved Caspase-3蛋白水平变化 按照对照组、高糖组、阴性对照组、干扰组分组方法处理细胞,培养48h后,用Western blot方法检测细胞中Cleaved Caspase-3蛋白表达水平,步骤同1.4。
1.8 细胞中MDA、SOD水平检测 按照对照组、高糖组、阴性对照组、干扰组分组方法处理细胞,培养48h后,用黄嘌呤氧化法检测细胞中SOD活性,硫代巴比妥酸法检测细胞中MDA含量,具体操作按照试剂盒说明书进行。
1.9 细胞分泌胰岛素水平检测 按照对照组、高糖组、阴性对照组、干扰组分组方法处理细胞,培养48h后,吸取培养液上清用ELISA法检测胰岛素水平,步骤按照试剂盒说明书进行。
1.10 统计分析 实验数据用SPSS21.0软件分析,数据按照均数标准差(meanSD)表示,多组差异比较采用单因素方差分析,组间比较用SNK-q检验,P<0.05为差异有统计学意义。
2 结果
2.1 PDCD4 siRNA降低高糖环境下胰岛β细胞中PDCD4表达水平 PDCD4 siRNA可以明显下调高糖环境下胰岛β细胞中PDCD4 mRNA和蛋白水平,构建了高糖条件下敲低PDCD4表达的胰岛β细胞。见图1、表1。
图1 Western blot检测PDCD4 siRNA对高糖环境下胰岛β细胞中PDCD4表达影响
表1 PDCD4 siRNA对高糖环境下胰岛β细胞中PDCD4表达影响(meanSD)
2.2 敲低PDCD4提高高糖条件下胰岛β细胞增殖活性并减少细胞凋亡 高糖条件下胰岛β细胞的存活率降低,细胞凋亡率升高,细胞中Cleaved Caspase-3蛋白水平升高。敲低PDCD4后的胰岛β细胞经过高糖处理后,细胞的存活率升高,细胞凋亡率降低,细胞中Cleaved Caspase-3蛋白水平下降。敲低PDCD4可以逆转高糖对胰岛β细胞增殖抑制和凋亡促进作用。见图2、表2。
2.3 敲低PDCD4降低高糖条件下胰岛β细胞氧化损伤 高糖条件下胰岛β细胞中MDA含量升高,SOD活性降低。敲低PDCD4后的胰岛β细胞经过高糖处理后,细胞中MDA含量减少,细胞中SOD活性升高。敲低PDCD4可以提高高糖环境下胰岛β细胞抗氧化酶活性,减少细胞氧化损伤。见表3。
图2 敲低PDCD4对高糖诱导的胰岛β细胞凋亡的影响
表2 敲低PDCD4对高糖环境下胰岛β细胞增殖凋亡影响(meanSD)
表3 敲低PDCD4对高糖环境下胰岛β细胞中MDA、SOD水平影响(meanSD)
2.4 敲低PDCD4提高高糖条件下胰岛β细胞分泌胰岛素水平 高糖条件下胰岛β细胞分泌的胰岛素水平降低。敲低PDCD4后的胰岛β细胞经过高糖处理后,细胞分泌的胰岛素水平升高。敲低PDCD4可以提高高糖环境下胰岛β细胞分泌胰岛素水平。见表4。
3 讨论
胰岛β细胞异常是糖尿病发生的直接原因,胰岛β细胞数量急剧减少导致细胞分泌的胰岛素不足,进而诱发蛋白质、糖等物质代谢紊乱[8]。氨基酸、激素、高血糖等都是诱导胰岛β细胞功能异常的诱发因子,其中高血糖是最为重要的诱导因子[9,10]。高血糖诱导胰岛β细胞凋亡和胰岛素分泌减少[11]。本实验的结果显示,高糖处理后的胰岛β细胞增殖活性降低,细胞凋亡增多,细胞分泌的胰岛素减少,提示成功构建了糖尿病胰岛β细胞体外损伤模型。
表4 敲低PDCD4对高糖环境下胰岛β细胞分泌胰岛素水平影响(meanSD)
本次实验研究用PDCD4 siRNA下调胰岛β细胞中PDCD4的表达水平,发现细胞增殖能力升高,细胞凋率降低,敲低PDCD4具有少高糖诱导的胰岛β细胞凋亡的作用,这可能提示,PDCD4在糖尿病胰岛β细胞损伤中发挥促进作用。PDCD4是在小鼠体内发现的凋亡相关基因,后续在人类及大鼠等生命体内发现PDCD4的存在,人类PDCD4基因定位在10q24染色体上,其编码的蛋白质由469个氨基酸组成,其氨基侧含有一个MA3结构域,该结构域参与真核细胞翻译起始因子的激活过程,具有抑制核糖体复合物及蛋白合成的作用,PDCD4蛋白的氨基和羧基的末端含有核定位信号和核输出信号,另外,PDCD4蛋白还含有多个蛋白激酶的磷酸化位点,PDCD4的这些结构特点决定了其具有多种生物学功能,参与细胞生长凋亡过程[12-14]。PDCD4具有促细胞凋亡、促进氧化应激等作用,不仅参与正常细胞生理功能发生,还参与病理状态下细胞损伤过程,PDCD4在动脉粥样硬化、肿瘤、糖尿病、肥胖等疾病中均发挥关键作用,PDCD4基因缺失的小鼠经高脂饲喂后,小鼠发生肥胖的数量明显降低,PDCD4还参与高糖诱导的心肌细胞、血管内皮细胞等多种细胞损伤发生,还有研究显示,敲低PDCD4的表达可以抑制糖尿病条件下胰岛β细胞的缺失,敲低PDCD4可能具有保护胰岛β细胞的作用[15-18]。上述实验研究报道同我们的实验结果一致,说明敲低PDCD4具有抑制糖尿病胰岛β细胞损伤的作用。
高糖诱导的胰岛β细胞损伤与氧化应激等有关,SOD是细胞内氧自由基清除的抗氧化酶,MDA是细胞内脂质发生过氧化的产物,SOD活性降低导致氧自由基大量积累诱导氧化损伤[19]。另外,细胞内过量的氧自由基能够诱导Caspase凋亡反应,引起细胞凋亡发生,Caspase-3是细胞凋亡的执行因子,其活化后可以促进细胞凋亡发生[20,21]。PDCD4表达水平的高低与细胞抗氧化能力、细胞凋亡水平等密切相关[22]。本实验表明,敲低PDCD4可以提高高糖环境下胰岛β细胞中SOD活性,降低细胞中MDA水平,减少细胞凋亡,提示敲低PDCD4具有抑制高糖诱导的胰岛β细胞氧化应激和细胞凋亡的作用。
总之,敲低PDCD4对高糖诱导的胰岛β细胞功能损伤具有保护作用,其可能通过减少氧化应激诱导的细胞凋亡促进胰岛β细胞分泌胰岛素,这为研究糖尿病条件下胰岛β细胞损伤机制提供了参考。目前对于其具体的作用机制尚不明确,在以后的研究中会进行探讨。