APP下载

叉头框蛋白O与急性心肌梗死的研究进展

2019-05-29李颖王先梅

心脑血管病防治 2019年2期
关键词:急性心肌梗死

李颖 王先梅

[摘 要] 叉头框蛋白O的生物学效应复杂,与心脏、血管疾病的发生发展密切相关。急性心肌梗死是冠状动脉急性、持续性缺血缺氧所引起的心肌坏死。传统危险因素主要有高血压、糖尿病、血脂异常,病变基础是动脉粥样硬化,缺血/再灌注损伤造成了急性心肌梗死患者血管开通后的二次重创。研究表明,FoxO与急性心肌梗死相关的这些因素关系密切,现围绕其研究进行综述。

[关键词] 叉头框蛋白O;急性心肌梗死;转录

中图分类号:R541.4

文献标识码:A文章编号:1009-816X(2019)02-0164-04

doi:10.3969/j.issn.1009-816x.2019.02.019

急性心肌梗死(acute myocardial infarction,AMI)多发生在冠状动脉粥样硬化狭窄基础上,由于激动、暴饮暴食、寒冷刺激、便秘、吸烟、大量饮酒等诱因致使冠状动脉粥样斑块破裂,血小板聚集在破裂的斑块表面,形成血栓,突然阻塞冠状动脉管腔,導致心肌缺血坏死。近年来我国AMI的发病率呈明显上升趋势,每年新发人数至少50万,现患人数至少200万。因此,研究预防、治疗AMI的新路径、新药物成为关注的重点。FoxO(forkhead box subtype O)是叉头框蛋白家族的一个重要亚群,受磷酸化、乙酰化、糖基化及泛素化等转录后修饰。平滑肌细胞、内皮细胞、心肌细胞的相关因子和氧化应激等均可调节FoxO的表达,从而影响细胞代谢、凋亡及自噬,参与血管生成、糖脂代谢及压力抵抗等过程。随着对FoxO研究逐步深入,其可能为预防AMI、减少梗死面积提供新的靶点。

1 FoxO的分子结构及功能叉头框蛋白(forkhead box protein,FOX)首次由Weigel等[1]在研究果蝇的异常突变体基因时发现,含有19个亚家族成员,分别以A至S命名。FoxO是叉头框蛋白家族中研究最为广泛的一个亚群,此亚群约由100个氨基酸组成的保守DNA结合结构域,包含3个α螺旋、2个翅膀状的大环结构[1,2]。生物进化过程中,脊椎动物叉头基因的数量明显多于无脊椎动物,后者只有一个FoxO基因,而前者含有四个FoxO基因:FoxO1(FKHR),FoxO3a(FKHRL1),FoxO4(AFX),FoxO6[3]。FoxO在组织器官中的表达具有时间差异性和空间差异性,研究表明,FoxO1在脂肪组织中高度表达,在糖脂代谢过程发挥重要作用;FoxO4、FoxO3a分别在肌肉及肝脏组织中高表达,对维持心脏、血管功能至关重要;而FoxO6主要表达于脑组织[4]。磷酸化、乙酰化、糖基化和泛素化等转录后修饰是FoxO活性调控的主要方式。FoxO与蛋白质结合作为转录刺激因子,启动下游基因的转录,调节多条信号转导通路,促进DNA修复、细胞代谢、细胞凋亡,阻滞自噬过程,参与氧化应激状态、血管生成,调节糖脂代谢及压力抵抗,抑制肿瘤的复发,减缓器官的衰老、维持长寿等[3,5]。炎症、缺血缺氧和代谢异常等病理状态是导致心血管疾病的原因。高血压、糖尿病、血脂异常是AMI的传统危险因素,冠状动脉粥样硬化是AMI发病的基础,缺血再灌注损伤(I/R)是AMI血运重建后造成心脏血管遭受二次损伤的重要因素,从而影响AMI的预后,FoxO转录因子与以上过程密切相关[5]。

2 FoxO与AMI的传统危险因素

2.1 FoxO与高血压:高血压主要表现为外周阻力血管张力的持续升高,导致血管舒缩功能减弱。血管舒缩功能主要取决于血管平滑肌细胞(vascular smooth muscle cell,VSMC),正常机体的VSMC呈收缩表型,具有良好的收缩功能,高血压时VSMC收缩表型向合成表型转化,造成VSMC增生、肥大、向内膜下迁移,使血管腔变窄、管壁增厚、外周阻力增高。因此,高血压是一种以血管平滑肌细胞增生为主要病变的疾病。FoxO1是VSMC增殖的关键调控因子,Gu等[6]在高血压条件下,异常张应变与VSMC增殖的研究中发现,高血压大鼠张应变的加载可促进FoxO1磷酸化,使胸主动脉VSMC中FoxO1表达增加,导致VSMC增殖,管壁增厚、管腔狭窄;反之,干扰RNA(siRNA)干扰FoxO1表达,VSMC增殖减少,外周阻力降低,张应变承载减少,高血压进展减慢。在高脂饮食诱导的雄性自发性高血压大鼠中,过氧化物酶体增殖剂激活受体α(PPARα)激动剂或抗氧化剂可通过PPARα-FoxO3a-PGC-1α途径激活PPARα,使下游信号FoxO3a和辅助激活因子-1α(PGC-1α)表达增加,可降低大鼠收缩压,提示FoxO3a可能是高血压疾病的保护性因子[7]。根据Laplaces定律,主动脉壁的张力与血压和主动脉腔半径成正比,因此高血压和增大的主动脉半径促进了主动脉的扩张,导致动脉硬化的发生,血管壁变薄、弹性降低,血压进一步升高。研究发现,FoxO4与主动脉瘤发生密切相关,在血管紧张素II诱导的动脉瘤模型中,X盒结合蛋白1(XBP1)缺陷可诱导VSMC从收缩表型转换为促炎表型和蛋白水解表型,增强血管炎症并且显著加重小鼠的胸主动脉瘤和腹主动脉瘤形成。机制研究表明,XBP1u在细胞质中与FoxO4的N端呈相互结合状态,阻断XBP1u-FoxO4相互作用促进FoxO4的核易位,阻遏平滑肌细胞标记基因表达,促进促炎症和蛋白水解表型转换并刺激主动脉瘤形成。平滑肌细胞中的XBP1缺失可引起VSMC去分化,增强的血管炎症并显著加重小鼠的胸主动脉瘤和腹主动脉瘤,VSMC中的XBP1缺陷可引起VSMC去分化,增强血管炎症反应,加重血管病变[8]。

2.2 FoxO与糖尿病、血脂异常:糖尿病、血脂异常引起冠状动脉粥样硬化导致AMI,通常糖尿病患者多伴有脂质和葡萄糖代谢失调,FoxO参与了胰岛素样信号途径及血脂代谢异常途径;FoxO1、FoxO3a、FoxO4、FoxO6在糖尿病、血脂异常的调节方面均发挥了重要的作用。在编码纯合子小鼠的胰岛功能区植入脱乙酰FoxO1的等位基因,FoxO1脱乙酰化,使核易位,能增强胰岛β细胞代谢,加强胰岛素分泌,同时还降低脂肪酸氧化,使血脂代谢异常;在高脂饮食诱导的糖尿病小鼠中,经胰岛素调节的FoxO1转录因子可抑制编码胆固醇7-羟化酶基因的转录,从而抑制胆汁酸的合成,致高胆固醇血症的发生[9,10]。FoxO1脱乙酰化可减少糖尿病合并心肌梗死(myocardial infarction,MI)小鼠的梗死面积,FoxO1的翻译后调节有助于缺血后心力衰竭的心脏重塑,具体机制不明[11]。在研究治疗糖尿病的药物时,发现FoxO1介导糖异生,如二甲双胍和丙戊酸(VPA)治疗糖尿病大鼠时,两种药物都能通过胰岛素信号传导途径,降低脂肪组织和肝脏中的血浆葡萄糖,降低胰岛素抗性,但是VPA能通过FoxO1的介导,抑制糖异生和胰高血糖素表达,具体机制有待研究[12]。用链脲佐菌素(STZ)诱导沉默信息调节因子3(Sirt3)敲除的糖尿病小鼠,由Sirt3-FoxO3a-Parkin信号传导通路介导,Sirt3敲除使FoxO3a脱乙酰化,降低Parkin的表达,使间质纤维化、心肌细胞凋亡、线粒体损伤、线粒体自噬受抑制,致心脏功能受损。高葡萄糖降低细胞活力,阻止丝氨酸-苏氨酸激酶(Akt)和FoxO3a磷酸化,抑制FoxO3a的细胞质易位。研究显示,白藜芦醇通过PI3K/Akt/FoxO3a通路抑制糖尿病心肌病大鼠的细胞凋亡从而改善心脏功能障碍[13,14]。

FoxO4能抑制胆固醇的生物合成,增强葡萄糖的基础摄取和甘油三酯的沉积,在FoxO4过度表达的小鼠中能快速清除摄入的葡萄糖。在鼠类糖尿病足细胞暴露于晚期糖基化终产物-牛血清白蛋白(AGE-BSA)时,凋亡效应蛋白Bim/Bcl2l11的表达与FoxO4的激活密切,AGE-BSA诱导乙酰肝素酶表达使FoxO4乙酰化后激活,促进VSMC迁移,抑制VSMC分化,加重糖尿病性血管损伤病变[15]。胰岛素抵抗时FoxO6磷酸化能促进胰岛素活性,降低胰岛素抵抗,从而能降低2型糖尿病小鼠的空腹高血糖[16]。

3 FoxO与动脉粥样硬化

动脉粥样硬化(atherosclerosis,AS)形成早期,吸烟、高血压、高血糖、氧化型低密度脂蛋白(ox-LDL)、感染等引起内皮细胞损伤,单核细胞及淋巴细胞表面特性发生变化,粘附因子表达增加,粘附在内皮细胞上,进入内膜下成为巨噬细胞,巨噬细胞能合成分泌多种生长因子和促炎介质,促进斑块生长及炎症反应,AS斑块扩大破裂后,血栓调节蛋白的表达减少,促进了血小板的活化,凝血和血栓阻塞冠状动脉导致AMI的发生[17]。

在研究抗AS药物时发现FoxO1、FoxO3a对AS的内皮细胞损伤具有保护作用,FoxO3a脱乙酰化参与金雀异黄素对抗ox-LDL诱导的人脐静脉内皮细胞氧化损伤;Elatoside C能增加FoxO1表达水平,诱导自噬,减弱了ox-LDL诱导的人脐静脉内皮细胞氧化损伤[18,19]。内源性FoxO3a的激活诱导了基质金属蛋白酶13和基质金属蛋白酶2的表达,促进细胞外基质(ECM)降解,引起VSMC凋亡,加速AS[20]。脂多糖诱导FoxO6磷酸化,FoxO6活性降低通过Akt和Pak1途径使NF-κB活化,促进炎症反应的发生,FoxO6在促炎症条件下维持细胞的稳态,可抗AS[21]。由此可见FoxO3a、FoxO6参与了AS的炎症反应,但具体分子作用机制还需深入研究。

4 FoxO与缺血再灌注损伤

众所周知,治疗AMI,降低AMI死亡率最有效的措施是开通梗死相关冠状动脉,完成血运重建。I/R损伤造成了AMI患者心脏、血管的二次伤害,可导致恶性心律失常、急性心力衰竭等加重病情,提高AMI患者的死亡率。活性氧的形成和氧化应激反应是心肌细胞I/R损伤、功能障碍的关键机制,FoxO在多种细胞类型中是氧化应激耐受的关键介质。在AMI的I/R损伤中,FoxO参与抗氧化应激过程,氧化应激条件下FoxO1、FoxO3a能诱导细胞抗氧化,提高心肌细胞的存活率。MI小鼠的心肌细胞,氧化应激促进了FoxO1和FoxO3a转录因子的核定位,激活靶基因,FoxO1或FoxO3a的表达,减少活性氧自由基,降低受损心肌细胞死亡率;反之,FoxO1和FoxO3a在心肌细胞中的表达减少或消失时,小鼠梗死面积显著增加,心脏功能降低,瘢痕形成增多[22]。近年来,在研究特殊蛋白sirtuin家族與I/R损伤机制时,发现在不同家族成员介导下,FoxO3a发挥的作用不尽相同,如在研究小檗碱对肝移植后的I/R损伤保护机制时,小檗碱激活了SIRT1,使FoxO3a脱乙酰化增强,诱导细胞自噬,降低氧化应激水平;在心脏I/R期间,SIRT6能上调一磷酸腺苷/三磷酸腺苷(AMP/ATP),激活腺苷5'-单磷酸激活蛋白激酶(AMPK)-FoxO3a轴,启动下游的抗氧化剂编码基因表达,促进锰超氧化物歧化酶和过氧化氢酶的合成,降低氧化应激造成的心肌细胞损伤,保护心肌细胞免受I/R损伤;然而,肾脏I/R激活了SIRT2,激活的SIRT2结合脱乙酰化的FoxO3a,使FoxO3a发生核移位,引起细胞凋亡,导致超微结构损伤[23~25]。

MI后的炎症反应是I/R心肌细胞修复和伤口愈合所必需的,FoxO4基因敲除抑制了内皮细胞的内皮精氨酸酶1转录,导致一氧化氮的增加,使单核细胞的粘附减少,嗜中性粒细胞减少,这一过程可能是提高FoxO4缺乏的小鼠MI后存活率,改善心脏功能和减小梗死面积的原因之一[26]。

综上所述,FoxO在不同环境条件下,通过不同信号通路介导的生物效应,对血管平滑肌细胞、内皮细胞、心肌细胞,在氧化应激、细胞凋亡、自噬、炎症反应等过程中的调控作用,以及对心脏和血管的功能既有利也有弊,它是一把“双刃剑”,成功的应用好这把剑,将为AMI的预防、治疗带来福音,FoxO在AMI中有利的潜能需进一步挖掘,深入研究,为人类疾病治疗作出贡献。参考文献

[1]Weigel D, Jürgens G, Küttner F, et al. The homeotic gene fork head encodes a nuclear protein and is expressed in the terminal regions of the Drosophila embryo[J]. Cell,1989,57(4):645-658.

[2]Burgering BM. A brief introduction to FOXOlogy[J]. Oncogene,2008,27(16):2258-2262.

[3]Martins R, Lithgow GJ, Link W. Long live FOXO: unraveling the role of FOXO proteins in aging and longevity[J]. Aging Cell,2016,15(2):196-207.

[4]Ronnebaum SM, Patterson C. The FoxO family in cardiac function and dysfunction[J]. Annual Review of Physiology,2010,72(1):81-94.

[5]Damrauer JS, Phelps SN, Amuchastegui K, et al. Foxo-dependent Par-4 Upregulation Prevents Long-term Survival of Residual Cells Following PI3K-Akt Inhibition[J]. Molecular Cancer Research Mcr,2018,16(4):599-609.

[6]Gu X, Jiang J, Wu LL, et al. The role of FOXO1 in cyclic stretch induced-proliferation of vascular smooth muscle cells during hypertension[J]. Yiyong Shengwu Lixue/journal of Medical Biomechanics,2014,29(5):440-446.

[7]Chung HW, Lim JH, Kim MY, et al. High-fat diet-induced renal cell apoptosis and oxidative stress in spontaneously hypertensive rat are ameliorated by fenofibrate through the PPARα-FoxO3a-PGC-1α pathway[J]. Nephrol Dial Transplant,2012,27(6):2213-2225.

[8]Zhao G, Fu Y, Cai Z, et al. Unspliced XBP1 Confers VSMC Homeostasis and Prevents Aortic Aneurysm Formation via FoxO4 Interaction[J]. Circulation research,2017,121(12):1331-1345.

[9]Kim-Muller JY , Kim YJ , Fan J, et al. FoxO1 deacetylation decreases fatty acid oxidation in β-Cells and sustains insulin secretion in diabetes[J]. J Biol Chem,2016,291(19):10162-10172.

[10]Li T, Chang JY. Abstract 1720: FoxO1 and TGFβ1 signaling inhibit cholesterol 7α-Hydroxylase gene expression and bile acid synthesis in high fat diet induced diabetes[J]. Circulation,2008,118(S):376.

[11]Kappel BA, Sthr R, De Angelis L, et al. Posttranslational modulation of FoxO1 contributes to cardiac remodeling in post-ischemic heart failure[J]. Atherosclerosis,2016,249:148-156.

[12]Khan S, Kumar S, Jena G. Valproic acid reduces insulin-resistance, fat deposition and FOXO1-mediated gluconeogenesis in type-2 diabetic rat[J]. Biochimie,2016,125:42-52.

[13]Wu Z, Huang A, Yan J, et al. Resveratrol ameliorates cardiac dysfunction by inhibiting apoptosis via the PI3K/Akt/FoxO3a pathway in a rat model of diabetic cardiomyopathy[J]. J Cardiovasc Pharmacol,2017,70(3):184-193.

[14]Yu W, Gao B, Li N, et al. Sirt3 deficiency exacerbates diabetic cardiac dysfunction: Role of Foxo3A-Parkin-mediated mitophagy[J]. Biochimica et Biophysica Acta,2016,1863(8):1973-1983.

[15]Wei XW, Xiao-wei MA, Guo XH, et al. FoxO-4 in diabetes and its complications[J]. Chinese Journal of Diabetes,2014,3(22):276-279.

[16]Kim DH, Zhang T, Lee S, et al. FoxO6 in glucose metabolism[J]. Journal of Diabetes,2013,5(3):233-240.

[17]Antoniades C, Bakogiannis C, Tousoulis D, et al. The CD40/CD40 ligand system: linking inflammation with atherothrombosis[J]. J Am Coll Cardiol,2009,54(8): 669-677.

[18]Luo Y, Meng X, Zhou P, et al. Elatoside C protects against ox-LDL-induced HUVECs injury by FoxO1-mediated autophagy induction[J]. Biochim Biophys Acta, 2017,1863(6):1654-1665.

[19]Zhang H, Zhao Z, Pang X, et al. MiR-34a/sirtuin-1/foxo3a is involved in genistein protecting against ox-LDL-induced oxidative damage in HUVECs[J]. Toxicol Lett,2017,277:115-122.[20]Haixiang Y, Adam F, Kirsty F, et al. FOXO3a links vascular smooth muscle cell apoptosis, matrix breakdown, atherosclerosis and vascular remodeling through a novel pathway involving MMP13[J]. Arterioscler Thromb Vasc Biol,2018,38(3):555-565.

[21]Kim DH, Min HP, Chung KW, et al. Suppression of FoxO6 by lipopolysaccharide in aged rat liver[J]. Oncotarget,2015,6(33):34143-34157.

[22]Battistelli M, Malatesta M, Meschini. Oxidative Stress to Promote Cell Death or Survival[J]. Oxid Med Cell Longev,2016,2016:1-2.

[23]Lin Y, Sheng M, Weng Y, et al. Berberine protects against ischemia/reperfusion injury after orthotopic liver transplantation via activating Sirt1/FoxO3α induced autophagy[J]. Biochem Biophys Res Commun,2017,483(2):885-891.

[24]Wang Y, Mu Y, Zhou X, et al. SIRT2-mediated FOXO3a deacetylation drives its nuclear translocation triggering FasL-induced cell apoptosis during renal ischemia reperfusion[J]. Apoptosis,2017,22(4):519-530.

[25]Wang XX, Wang XL, Tong MM, et al. SIRT6 protects cardiomyocytes against ischemia/reperfusion injury by augmenting FoxO3α-dependent antioxidant defense mechanisms[J]. Basic Research in Cardiology,2016,111(2):13.

[26]Zhu M, Goetsch SC, Wang Z, et al. FoxO4 Promotes Early Inflammatory Response upon Myocardial Infarction via Endothelial Arg1[J]. Circulation research, 2015,117(11):967-977.

(收稿日期:2018-8-23)

猜你喜欢

急性心肌梗死
尿激酶溶栓用于老年急性心肌梗死患者的临床护理
心绞痛、急性心肌梗死与甲状腺功能变化的相关性
急性心肌梗死心血管内科治疗的临床研究
急性心肌梗死患者的中医辨证治疗分析