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欧前胡素通过TGF-β1/Smad3和PI3K/Akt信号通路对哮喘小鼠气道重塑模型的影响

2018-12-18咸哲民王重阳朴玉华李俊峰姜京植赵雨喆李良昌朴红梅延光海

中国药理学通报 2018年12期
关键词:重塑气道哮喘

咸哲民,王重阳,朴玉华,李俊峰,姜京植,赵雨喆,李良昌,朴红梅,延光海

(延边大学1. 附属医院呼吸内科、2. 医学院解剖学教研室,吉林 延吉 133002)

支气管哮喘是最常见的呼吸系统疾病之一,其特点是气道高反应性、气道炎症和气道重塑[1]。在哮喘的发病机制上,学者们常把重点放在气道炎症上,但气道重塑在哮喘的发病过程中也起到非常重要的作用。气道重塑不仅可以引起不可逆的气道阻塞、增加气道阻力、加重气道高反应性,而且可导致肺功能下降,是治疗哮喘的重中之重[2]。气道重塑的病理表现为炎症细胞浸润、气道平滑肌增厚、胶原纤维沉积、肌成纤维细胞增生及血管改变[1]。目前,医疗卫生机构在气道重塑的管理工作上已经做出了不懈的努力,但尚未发现可有效改善气道重塑的治疗药物。因此,研究哮喘气道重塑的发病机理具有重要意义。

转化生长因子β1(transforming growth factor β1, TGF-β1)信号通路广泛存在于胚胎发育、细胞增殖、分化、迁移、凋亡和血管生成中[3]。研究发现,Smad3蛋白是TGF-β家族的直接底物,是配体和受体相互作用的信号由胞质传导到胞核的中介分子[4]。目前研究发现,TGF-β1/Smad3信号通路在支气管哮喘气道重塑的形成过程中起到关键作用,是导致哮喘气道重塑的重要机制之一[5]。据研究报道,PI3K是细胞信号转导通路的重要组成部分,可以活化气道平滑肌细胞的增殖,并可能参与气道重塑的过程中[6]。

欧前胡素(imperatorin, IMP)是一种天然的6,7-呋喃香豆素类化合物,存在于伞形科植物如独活、当归、欧前胡等常用中药中,并具有抗炎、抗肿瘤、抗惊厥等多种药理作用[7]。研究发现,IMP通过抑制TGF-β1和基质金属蛋白酶2(matrix matalloproteinases 2,MMP-2)的表达来改善肾性高血压诱发的心脏重塑[8],并且IMP通过阻断PI3K/Akt信号通路,对人类胃腺癌细胞起到抗肿瘤作用[9]。本文拟进一步探讨IMP对哮喘气道重塑的作用,其作用机制是否与TGF-β1/Smad3和PI3K/Akt信号通路相关。

1 材料与方法

1.1材料

1.1.1实验动物 ♀清洁级BALB/c小鼠40只,体质量(18±5)g,购自延边大学实验动物中心,合格证号:SCXK(吉)2017-0003。本研究已获得延边大学医学院伦理委员会的批准,整个实验进程中遵守《实验动物管理条例》。

1.1.2药物与试剂 IMP(MAYA-CR-6162)购自中国玛雅试剂有限公司;双氢罗丹明(DHR)-123试剂盒、卵清蛋白(ovalbumin, OVA)、氢氧化铝粉,均购自美国Sigma公司;DAB及免疫组化试剂盒,IgE、IFN-γ、IL-5、IL-4、IL-13等ELISA试剂盒,均购自北京中杉金桥公司;α平滑肌肌动蛋白(α-smooth muscle actin, α-SMA)(#19245)、MMP-9(#13667)、TGF-β1(#3711)、Smad3(#9523)、phospho-Smad3(#9520)、Akt(#2920)、phospho-Akt(#9611)、β-actin(#4970)抗体,均购自美国Santa Cruz公司。

1.1.3仪器 15K高速冷冻台式离心机(美国Sigma公司);2135型轮转式切片机(德国徕卡公司);雾化器(大连医疗器械厂U219);酶联免疫检测仪RT-2100C(美国雷杜公司);Western blot转膜仪(Bio-Rad公司);TXD3细胞涂片离心机(广州泸瑞明仪器有限司)。

1.2方法

1.2.1动物分组 将40只♀BALB/c小鼠随机分为5组,分别为正常对照组(Control)、OVA气道重塑模型组(OVA)、IMP低、高剂量治疗组(IMP-L、IMP-H)、地塞米松阳性对照组(Dex),每组8只。

1.2.2模型的制备[1]每组小鼠饲养1周适应环境。随后d 1、7、14,对照组小鼠每只腹腔注射200 μL生理盐水,而OVA组、IMP-L组、IMP-H组及Dex组均腹腔注射致敏混悬液(OVA 10 μg+氢氧化铝1 mg+200 μL生理盐水);从d 17开始,OVA组、IMP-L组、IMP-H组及Dex组均雾化吸入激发液(OVA 0.1 g+生理盐水10 mL,1% OVA生理盐水溶液),每次雾化吸入30 min,每周激发3次,共激发8周,而对照组用等量生理盐水10 mL雾化吸入。从d 17开始给予对照组和OVA组ip二甲基亚砜(dimethyl sulfoxide, DMSO)200 μL,IMP-L、IMP-H组分别腹腔注射稀释于200 μL DMSO中的30、60 mg·kg-1IMP,地塞米松1 mg·kg-1,每天注射1次(激发时提前1 h给药)。

1.2.3标本收集 最后一次激发后24 h,将小鼠用无水乙醚处死,并固定到手术板,纵切颈部皮肤并充分暴露气管,在气管上剪一小切口插入软管,缓慢注射4℃生理盐水1 mL后缓慢回抽,连续反复3次,保证回抽量在80%以上。将已收集的支气管肺泡灌洗液(bronchoalveolar lavage fluid, BALF)3 000 r·min-1离心5 min,并取上清液,置于-80℃冻存,剩余的沉淀物用于细胞涂片。之后取出右肺置于-80℃冻存,左肺置于4%甲醛中固定。心脏采血1 mL,3 000 r·min-1离心10 min后,取上清液,-20℃保存,用于ELISA检测TGF-β1。

1.2.4BALF中EOS和总细胞数的检测 BALF经离心后的细胞沉渣中,加入生理盐水定容至600 μL,混匀后,取200 μL置入细胞涂片离心机制备细胞涂片。经Diff-Quick染色法,在光学显微镜下进行细胞计数。

1.2.5BALF中IL-4、IL-5、IL-13、IgE、TGF-β1及血清中TGF-β1的检测 根据ELISA试剂盒说明书的步骤,依次检测BALF和血清中TGF-β1的浓度,BALF中IgE、IL-4、IL-5、IL-13的浓度。通过标准曲线计算其浓度。

1.2.6肺组织学检查 将固定后的左肺依次进行脱水、浸蜡、包埋,将蜡块切成厚度为4 μm的薄片,分别进行HE、Masson染色。

1.2.7免疫组织化学检测 将切片置于60℃烤箱内熔蜡,然后进行脱蜡、脱水,并置于100℃的抗体修复液中修复30 min,然后分别用α-SMA一抗和相对应的二抗进行孵育。用DAB染色、苏木精复染后,常规脱水、中性树脂封片并观察。

1.2.8Western blot检测 提取小鼠右肺组织蛋白,根据BCA试剂盒要求测定蛋白浓度。取20 μg蛋白,在10%的SDS-PAGE中以80 V电压电泳。电泳结束后以300 mA、4℃条件下进行转膜。5%的脱脂奶粉封闭液中常温封闭1 h。然后分别孵育小鼠 α-SMA、MMP-9、TGF-β1、Smad3、phospho-Smad3、Akt、phospho-Akt、β-actin抗体4℃过夜。常规洗膜后加入相应的二抗,常温摇床孵育2 h。将膜取出后用ECL试剂曝光。

1.3统计学方法资料的统计分析采用SPSS 17.0,统计图的绘制采用GraphPad Prism 6.0。资料的正态性检验采用D′Agostino-Pearson omnibus normality test以及Komogorov-Smirnov test(with Dallal-Wilkinson-Lilliev for p value),计量资料的比较采用Kruskal-Wallis test(组间比较采用Dunn′s multiple comparison test)以及One-way ANOVA(组间比较采用Holm-Sidak′s multiple comparisons test)。

2 结果

2.1IMP抑制炎症细胞的渗出和杯状细胞的增生Fig 1的HE染色结果显示,OVA组较对照组炎症细胞浸润明显增多,且发现在血管及细支气管周围浸润明显,而IMP组中炎症细胞的浸润明显减少,呈剂量依赖性,且Dex组减少最明显。Masson染色结果中,与对照组相比,OVA组中胶原沉积明显增多,IMP-L组中的胶原沉积较OVA组减少,且IMP-H组减少明显,Dex组减少最明显。提示IMP可明显减少炎症细胞渗出和胶原沉积。

2.2IMP抑制IL-4、IL-5、IL-13、EOS、IgE和TGF-β1的生成如Fig 2A所示,BALF中OVA组的IL-4、IL-5及IL-13的含量较对照组明显增多(P<0.05),且IMP-L组中IL-4、IL-5及IL-13含量较OVA组减少(P<0.05),IMP-H组明显减少(P<0.05),Dex组减少最明显。如Fig 2B所示,OVA组BALF中总细胞数与EOS的细胞数较对照组明显升高(P<0.01)。与OVA组相比,IMP-L组BALF中总细胞数与EOS的细胞数均减少(P<0.05),且IMP-H组的细胞数减少的更明显(P<0.05),Dex组减少最明显(P<0.05)。如Fig 2C所示,与对照组相比,OVA组明显增加 BALF中总IgE和OVA特异性IgE表达(P<0.05),而IMP-L组较OVA组总IgE和OVA特异性IgE表达减少(P<0.05),且IMP-H组明显减少(P<0.05),Dex组减少最明显(P<0.05)。如Fig 2D所示,BALF中OVA组的TGF-β1浓度较对照组明显增多(P<0.01)。与OVA组相比,IMP组中TGF-β1浓度明显减少(P<0.05),呈剂量依赖性,Dex组减少最明显。提示IMP可有效减少IL-4、IL-5、IL-13、EOS、IgE和TGF-β1的生成。

Fig 1 Exudation of inflammatory cells and collagen deposition reduced by IMP(×200)

Fig 2 Generation of IL-4, IL-5, IL-13, EOS, IgE and TGF-β1 inhibited by

2.3IMP减少肺组织中α-SMA和MMP-9的表达量Fig 3A的免疫组化结果显示,与对照组相比,OVA组中α-SMA阳性面积明显增加,而IMP组较OVA组α-SMA阳性面积明显减少,呈剂量依赖性,Dex组中α-SMA阳性面积减少最明显。Fig 3B的Western blot结果示,OVA组中α-SMA和MMP-9的蛋白表达较对照组明显升高(P<0.01),但IMP组较OVA组α-SMA、MMP-9的蛋白表达明显下降,呈剂量依赖性(P<0.01),Dex组下降最明显(P<0.01)。提示IMP可明显减少肺组织中α-SMA和MMP-9的表达量。

2.4IMP可抑制TGF-β1和Smad3的蛋白表达Fig 4结果显示,OVA组中TGF-β1蛋白表达较对照组明显增加(P<0.01),IMP-H组中的TGF-β1蛋白表达较OVA组减少(P<0.05),Dex组减少最明显(P<0.01)。与对照组相比,OVA组中p-Smad3和Smad3的蛋白表达明显增加(P<0.01),且IMP组中p-Smad3和Smad3蛋白的表达较OVA组明显减少(P<0.05),呈剂量依赖性,Dex组减少最明显(P<0.05)。以上结果表明,IMP的作用机制可能是通过抑制TGF-β1/Smad3通路来改善哮喘小鼠气道重塑。

2.5IMP抑制Akt的蛋白表达如Fig 5所示,OVA组中Akt蛋白表达较对照组明显增加(P<0.01),且IMP组中的Akt蛋白表达较OVA组明显减少,IMP-H组减少明显(P<0.05),Dex组减少最明显(P<0.05)。提示IMP的作用机制可能与抑制PI3K/Akt通路有关。

Fig 4 Protein expression of TGF-β1and Smad3 inhibited by n=5)

*P<0.05,**P<0.01vscontrol;#P<0.05,##P<0.01vsOVA

3 讨论

支气管哮喘是一种普遍存在的全球健康问题,是由多种炎症细胞及炎症介质导致的慢性气道炎症,其中气道重塑是哮喘的重要特征,且气道重塑是以胶原沉积和气道炎症为主要特征[10]。IL-4、IL-5、IL-13等炎症因子是Th2 细胞亚群中的主要细胞因子,其通过诱导嗜酸性粒细胞的产生、聚集、活化、脱颗粒,且辅助B细胞产生IgE来介导I型变态反应[11]。研究发现,EOS会大量浸润在哮喘气道中,且分泌嗜酸性粒细胞阳离子蛋白(eosinophil cation protein, ECP),进而诱导成纤维细胞分泌TGF-β1,促使成纤维细胞转化成为肌成纤维细胞,并分泌大量细胞外基质,引起气道壁增厚,最终导致气道重塑,而且EOS与PI3K/Akt信号通路也密切相关[12]。本文HE染色、Masson染色结果显示,IMP明显减少胶原纤维的沉积,以及血管和支气管周围的炎症细胞的浸润。IMP组可明显减少BALF中EOS细胞数和IL-4、IL-5、IL-13、IgE的含量,并且减少BALF及血清中TGF-β1的含量,呈剂量依赖性。以上结果表明,IMP可能对小鼠哮喘气道重塑有明显的抑制作用。

Fig 5 Expression of Akt in lung

*P<0.05,**P<0.01vscontrol;#P<0.05vsOVA

α-SMA在气道平滑肌收缩过程中起关键作用,且与气道重塑密切相关。提高α-SMA的水平可促进平滑肌细胞的增殖和迁移,这对气道重塑起到至关重要的影响[13]。研究发现,MMP-9与气道壁的胶原沉积相关,这可能会引起气道狭窄。本文免疫组化结果显示,IMP组可抑制α-SMA的阳性面积,且IMP剂量越大,抑制越明显。而且Western blot结果显示,IMP组较OVA组明显抑制α-SMA、MMP-9的蛋白表达量,呈剂量依赖性。以上结果说明IMP可能通过抑制α-SMA与 MMP-9的表达,来改善气道重塑。

本文进一步探讨IMP改善气道重塑的分子机制是否与TGF-β1/Smad3通路和PI3K/Akt通路有关。TGF-β1是气道重塑中的一个关键因素,它主要通过平滑肌细胞增生及肥大来导致气道平滑肌功能异常,进而导致气道重塑。Smad3蛋白家族已被证实为TGF-β1受体的关键底物之一,是TGF-β1受体复合物的下游信号调节蛋白,在诱导TGF-β1信号从细胞表面转入到细胞核的过程中起到重要作用[14]。目前研究发现,PI3K/Akt的酶活性在OVA诱导的小鼠哮喘模型中明显增加,在PI3K缺失的小鼠哮喘气道重塑模型中发现气道炎症和气道重塑明显减少[15],表明PI3K/Akt信号通路在气道重塑的形成中起到重要的作用。本研究发现,IMP组与模型组比较,可有效抑制TGF-β1、p-Smad3、p-Akt蛋白表达。以上结果说明IMP可能通过TGF-β1/Smad3和PI3K/Akt双通路来改善气道重塑。

综上所述,IMP通过减少肺组织中胶原沉积、炎症细胞浸润和抑制EOS、IL-4、IL-5、IL-13、IgE、TGF-β1的生成,来改善气道重塑,并进一步证实其作用机制可能部分与TGF-β1/Smad3和PI3K/Akt双通路相关。

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