DKK1对AGEs/TNF⁃α微环境牙周膜干细胞骨向分化能力的影响*
2018-09-14丰奇昊沈梦杰陈谦谦罗雅馨遵义医科大学附属口腔医院牙周科种植科贵州遵义563000
杨 琨,李 骏,丰奇昊,沈梦杰,陈谦谦,罗雅馨,刘 琪△(遵义医科大学附属口腔医院:.牙周科;.种植科,贵州遵义563000)
牙周炎作为全球性普遍发生的慢性炎性反应,能够导致牙龈、牙槽骨、牙骨质的牙周组织损伤,最终使牙齿出现松动及缺失[1]。牙周膜干细胞(PDLSCs)作为间充质干细胞(MSC)的一个特殊群体,目前已成为牙周组织缺损修复的重点研究对象[2]。研究表明,慢性牙周炎中获得的PDLSCs再生潜能会受到损伤[3]。对糖尿病伴牙周炎患者而言,牙周炎的严重程度以糖尿病进程之间密切相关,且牙周炎已经被认为是糖尿病的第六大并发症[4]。然而,目前研究中糖尿病伴牙周炎状态下的PDLSCs的相关生物学特性还尚未探究明白。
在学者的努力研究下,牙周炎和糖尿病两者相互关系正逐渐明朗。临床研究发现,在糖尿病患者的糖基化终末产物(AGEs)水平与健康患者具有明显差异[5],且糖尿病患者中AGEs细胞膜受体的晚期糖基化终产物(RAGE)被配体AGEs激活,表达量升高。因此,在牙周炎及其他糖尿病并发症中,AGEs逐渐受到学者们的重视[6-8]。另有研究发现,抑制糖尿病小鼠的RAGE通路能够降低牙周炎相关骨吸收,还能降低牙龈组织中促炎性细胞因子的产生[9]。而提高RAGE的表达量,则会导致糖尿病患者牙周组织中炎性反应及组织损伤加剧,最终加速牙周的破坏[10-11]。此外,AGEs还能够通过抑制MSC的成熟,弱化MSC的分化能力从而阻止组织修复[12],但是目前学者对AGEs-RAGE轴的整个机制仍然知之甚少。
DKK1作为Wnt通路的经典抑制剂,已广泛应用于成骨分化的研究[13],其通过与Wnt受体结合,影响下游信号转导[14-15]。虽然有研究表明DKK1可以通过抑制Wnt/β-catenin通路从而抑制PDLSCs的成骨分化[16],但本研究表明,在糖尿病伴牙周炎PDLSCs中的表达中,DKK1是被抑制的,而利用DKK1抑制Wnt通路则能调节RAGE的表达,逆转D-PDLSCs造成的骨向分化能力减弱。
1 材料与方法
1.1 仪器与试剂 α-MEM培养基、胶原酶、胰蛋白酶购于Gibco公司;胎牛血清购于四季青公司;鼠抗人CD44、CD146、stro-1、CD90、CD271、CD45 单克隆抗体购于Abcam公司;重组人DKK1购于Abcam公司;AGEs-牛血清清蛋白(BSA)购于Bio Vision公司;肿瘤坏死因子-α(TNF-α)购于 Peprotech 公司;细胞总 RNA 提取试剂盒、一步法采用逆转录-聚合酶链式反应(RT-PCR)试剂盒购于Takara公司;蛋白质及IP细胞裂解液购于Beyotime公司;BCA蛋白定量试剂盒购于Beyotime公司;Runx2一抗购于Abcam公司;Osterix一抗购于Abcam公司;甘油醛-3-磷酸脱氢酶(GAPDH)鼠单克隆抗体购于Abcam公司;罗丹明山羊抗小鼠免疫球蛋白G(IgG)购于中杉金桥公司;山羊抗兔lgG购于Abcam公司;体视显微镜、倒置相差显微镜及照相系统购于OLYMPUS公司;流式细胞分析仪购于Beckmen Coulter公司;real time PCR仪器购于Applied Biosystems。
1.2 方法
1.2.1 人牙周干细胞培养和分离及表面分子鉴定 (1)取材和培养。选取在遵义医学院附属口腔医院就诊,18~25岁正畸而需拔除前磨牙者作为牙周膜组织获取主要对象。选择标准为:①口内余留牙不少于20颗;②身体健康,不吸烟,无糖尿病病史及家族史,血糖水平正常;③无消化、呼吸、生殖、泌尿等系统或身体其他部位的感染,无其他严重疾病。拔牙后生理盐水反复冲洗第三磨牙3次,转移至含有100 U/mL青霉素及链霉素0.1 mg/mL的α-MEM培养基中。磷酸缓冲盐溶液(PBS)反复冲洗牙根3次,超净台刮取根中1/3牙周膜组织,Ⅰ型胶原酶消化,10%胎牛血清的α-MEM中和离心,37 ℃、5%CO2恒温箱贴壁培养 PDLSCs。(2)流式细胞仪检测相关表面分子。通过检测 STRO-1、CD146、CD44、CD90、CD271、CD45 鉴定 PDLSCs。
1.2.2 RT-PCR 检测 Runx2、碱性磷酸酶(ALP)mRNA表达 3组PDLSCs细胞成骨诱导培养7 d后进行细胞收集,按TRIzol说明书抽提各组细胞总RNA,并用逆转录试剂盒合成cDNA。参照GenBank数据库,以Primer primer 5.0计算机软件设计引物;以β-actin为内参照,采用 RT-PCR 检测,反应体系为:premix 10 μL、dye 0.4 μL、ddH2O 6.6 μL、上下游引物各 0.5 μL、样本模板2 μL;反应条件参照产品说明。试验重复3次,所用引物均由上海生工公司合成,各引物基因序列见表1。
1.2.3 蛋白质印迹法(Western blotting)检测RUNX2及Osterix蛋白表达 取骨诱导14 d后的各组细胞,用Western及IP细胞裂解液进行总蛋白提取;用BCA蛋白浓度测定试剂盒进行蛋白定量测定;十二烷基硫酸钠(SDS)-聚丙烯酰氨凝胶电泳(PAGE),转膜,封闭,免疫反应;最后进行化学发光反应检测各组RUNX2及Osterix蛋白的表达,用IPP 6.0软件对其灰度值进行定量分析。
1.2.4 ALP活性和矿化结节形成量分析 诱导培养7 d,取各组细胞分别用ALP试剂盒对各组细胞进行染色;28 d取各组细胞进行茜素红染色。
1.3 统计学处理 使用SPSS 11.0软件进行统计分析。计量资料以表示,组间比较采用独立样本t检验。检验水平值α=0.05,以P<0.05为差异有统计学意义。
2 结 果
2.1 PDLSCs原代培养与传代培养 见图1。
2.2 PDLSCs表面标志物检测 流式细胞仪检测第三代 PDLSCs表面标志物 STRO-1、CD146、CD44、CD90、CD271(CD271/P75NTR已作为MSC来源的细胞表面标志物)[17],其阳性率分别为 12.4%、57.7%、99.1%、95.8%、8.46%,CD45为阴性表达。
表1 引物基因序列
图1 PDLSCs原代培养与传代培养图
2.3 PDLSCs成骨能力受损情况 ALP与茜素红染色表明,与PDLSCs组比较,AT-PDLSCs组成骨能力明显降低。见图2。
图2 各组ALP染色及茜素红染色图
2.4 DKK1逆转 AGEs/TNF-α对 PDLSCs成骨的影响 RT-PCR表明,D+AT-PDLSCs组骨向分化标志基因Runx2、ALP水平表达高于AT-PDLSCs组,差异均有统计学意义(P<0.05)。Western blotting检测发现,D+ATPDLSCs组Runx2、Osterix水平表达也高于AT-PDLSCs组,差异均有统计学意义(P<0.05)。见图 3、4。
图3 RT-PCR检测各组Runx2、ALP的mRNA表达量
图4 Western blotting检测各组Runx2、Osterix蛋白表达量
3 讨 论
PDLSCs具有能再生牙周组织的干性。前期研究中已证实PDLSCs能够在牙周缺损的治疗中起重要作用[18-19]。本研究旨在探讨糖尿病伴牙周炎微环境对PDLSCs成骨能力的影响。AGEs抑制了PDLSCs的成骨潜能,并且协同TNF-α产生糖尿病伴牙周炎炎性微环境,进一步抑制PDLSCs的成骨能力。
研究表明,PDLSCs能够修复牙齿支持复合部件(牙周膜、牙槽骨、牙骨质)[20],在牙周炎发生、发展过程中起重要作用。前期研究中,作者已证实炎性反应对PDLSCs的影响,作者希望探究单纯牙周炎和全身疾病伴发的牙周炎对PDLSCs的影响是否一致。有学者研究表明,不同年龄来源的H-PDLSCs与P-PDLSCs特性不同[3,21],并发现 DKK1 对 H-PDLSCs与 P-PDLSCs都存在相同的影响。DKK1可能逆转P-PDLSCs受损的成骨潜能。
近年来,AGEs与糖尿病及其伴发性疾病的关系受到关注[7],本课题组针对AGEs对PDLSCs生物学性能的影响也进行了大量研究[22-25]。然而,Wnt/β-catenin信号通路与多种疾病的发病机制相关。研究表明,Wnt信号是糖尿病的主要调节点[26-28],但Wnt信号通路在糖尿病伴牙周炎发生、发展中的作用尚不清楚。本研究中,体外试验表明DKK1可促进AT-PDLSCs成骨分化,而试验中也能发现DKK1可促进H-PDLSCs的矿化。但该结果相对于其他试验组缺少某些稳定性,这可能与微环境对PDLSCs克隆形成的影响有关。PDLSCs属于MSC一类,研究表明Wnt/β-catenin信号通路能够促进MSC的成骨分化[29-30]。也有研究表明,高水平的Wnt3a处理则会抑制MSC的成骨分化[31-32]。本课题组也发现,Wnt通路在骨髓来源MSC和牙周膜来源MSC的作用恰恰相反,在两者中可能会出现不同的炎性反应影响[33]。Wnt3a和 LiCl能够激活 Wnt/β-catenin 信号通路,抑制牙周组织来源MSC的成骨分化能力[34]。作者推测,这可能是由于PDLSCs是牙周组织中的另一种MSC,并且可能与不同克隆形成来源有关。因此,Wnt信号通路对MSC中成骨细胞分化能力是激活还是抑制尚待进一步研究。
综上所述,AGEs/TNF-α模拟糖尿病伴牙周炎微环境的PDLSCs功能受损。Wnt信号通路抑制剂DKK1处理后表现出骨形成能力的提升,可能部分源于AGEs-RAGE轴的调控,相关机制可能涉及AGEs诱导的PDLSCs功能失调。目前研究的最终目的是修复糖尿病伴牙周炎的牙周组织缺损,而Wnt信号通路的调控能够促进PDLSCs生物学性能,DKK1或者某些小分子化合物能够促进PDLSCs骨向分化潜能,故可将其作为修复糖尿病伴牙周炎牙周缺损治疗中的重要因子。