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UPLC-MS/MS测定人参花中5种内源植物激素含量△

2018-06-21陈康刘娟周修腾纪瑞锋童宇茹陈同袁媛

中国现代中药 2018年6期
关键词:花中内源性皂苷

陈康,刘娟,周修腾,纪瑞锋,童宇茹,3,陈同,袁媛*

(1.道地药材国家重点实验室,中国中医科学院 中药资源中心,北京 100700;2.安徽中医药大学,合肥 230038;3.沈阳药科大学 中药学院,沈阳 110016)

人参花为五加科人参属植物人参PanaxginsengC.A.Meyer的干燥花蕾,具有补气强身、抵抗疲劳、延缓衰老的作用[1]。研究表明,人参花中含有20多种皂苷活性物质、17种氨基酸、11种微量元素、3种抗癌活性蛋白、多种生物活性挥发油等[2-3],具有药品及保健品开发潜力;同时,人参主要活性成分人参皂苷在人参花中含量高达5%~7%,是人参根的5~6倍[4],且从人参花中分离得到了多种具有生物活性的新颖结构人参皂苷[5-7]。近年来,随着新药源的拓展研究,有关于人参花的药理、药化、提取工艺报道越来越丰富,但尚未见到有关人参花的内源植物激素报道。

植物内源性激素是植物体内重要的信号分子,其分布具有明显的组织特异性,对植物的生长发育有重要的调节控制作用。其中,生长素(如:IBA、IAA、NAA)、赤霉素(GA)、脱落酸(ABA)参与了多个植物生长发育过程,如种子萌发、休眠、植物生长、开花、叶片衰老脱落等;茉莉酸(JA)、水杨酸(SA)作为胁迫激素,受到生物胁迫和非生物胁迫的调控,增强植物的抗逆性,在植物的胁迫耐受性和抗性中发挥着重要作用[8-10]。研究表明,以上5种植物激素对药用植物次生代谢调控均具有重要意义。其中IBA可以提高匍枝筋骨草β-脱皮甾酮的含量[11],GA可以诱导丹参毛状根酚酸类物质的积累[12],ABA可以调控滇紫草细胞紫草宁生物合成[13],JA与SA可促进白木香悬浮细胞的倍半萜生物合成[14-15]等。

植物激素对人参皂苷的合成具有重要的调控意义[16-18],但有关人参内源性激素的研究较少,而在人参花中内源性植物激素的分布尚未见报道。本研究根据课题组前期建立的激素测定方法[19],采用超高效液相色谱-三重四级杆质谱(UPLC-MS/MS)对人参花中5种内源性植物激素ABA、GA3、IAA、JA、SA进行测定,同时还对JA前体12-氧-二烯酸(OPDA)和JA活性形式JA-异亮氨酸(JA-ile)含量进行测量分析,旨在为揭示内源性植物激素对人参花中次生代谢的调控机制奠定基础。

1 材料与试剂

1.1 材料

供试人参幼苗,由康美新开河种植基地提供,经中国中医科学院中药资源中心黄璐琦研究员鉴定为人参PanaxginsengC.A.Mey.的幼苗。

1.2 仪器

AB Sciex公司QTRAP©6500三重四极杆质谱联用分析系统;美国Thermo Scientific公司Millipore超纯水系统;BT-224S型万分之一电子分析天平;THZ-C-1全温震荡摇床;5810R高速冷冻离心机。

1.3 试剂

生长素、赤霉素、脱落酸、茉莉酸、水杨酸等对照品,均购于中国食品药品检定研究院;色谱纯乙腈、甲酸购自Fisher公司;其余试剂为国产分析纯,超纯水自制。

2 方法

2.1 激素提取方法

分别收集新鲜的人参花,液氮冰浴研磨,准确称取根和叶片各0.1 g到5 mL离心管中,加入异丙醇:水:HCl(2∶1∶0.002)提取液1 mL,4 ℃,100 r·min-1摇床中振动30 min,取出离心管后加入2 mL二氯甲烷,再次振动30 min;4 ℃,13 000 r·min-1冷冻离心5 min,吸取有机相层溶液1.8 mL,氮气吹干,加入50%甲醇-水溶液400 μL,4 ℃,13 000 r·min-1冷冻离心15 min,吸取上清液进行UPLC-MS/MS分析。

2.2 色谱-质谱条件

色谱条件:Waters ACQUITYUPLCBEH C18色谱柱(2.1 mm YUPLCB,1.71 mm),流动相:0.05%甲酸水-乙腈溶液。线性洗脱梯度:0~0.3 min,10%乙腈;0.3~3 min,10%~60%乙腈;3~6 min,60%~95%乙腈;6~6.2 min,10%乙腈。流速为0.6 mL·min-1,柱温40 ℃,样品盘温度4 ℃,进样量10 μL,分析时间7 min。

质谱条件:电离方式为电喷雾离子源(ESI);扫描方式为负离子扫描;监测方式为多反应监测(MRM);气帘气的压力为30 psi,离子化电压为-4500 V,离子源温度550 ℃,喷雾气压力为50 psi,辅助加热气压力为50 psi,数据处理用MultiQuant定量软件进行分析。

3 结果及分析

3.1 专属性检测

配置内源性植物激素标准溶液,按2.2项下的质谱-色谱条件进样分析。结果表明,人参花的内源性植物激素峰型单一、分离度较高,且均在5 min以内出峰,实现了植物激素准确快速测定的目的,适用于人参花中激素含量的测定(见图1)。

注:A:IBA标准品;B:GA3标准品;C:ABA标准品;D:人参花IBA样品;E:人参花GA3样品;F:人参花ABA样品;G:SA标准品;H:JA-ile标准品;I:OPDA标准品;J:人参花SA样品;K:人参花JA-ile样品;L:人参花OPDA样品。图1 内源性植物激素选择反应监测离子流图

3.2 人参花中5种内源激素含量检测及分析

本实验对人参花中内源性植物激素含量进行分析,每种激素平行5个样品。表1为人参花中5种内源性植物激素含量的检测结果。由结果可以看出,人参花中含有较多抗逆激素SA与ABA,研究也表明水杨酸可以诱导植物开花、促进果实生长[20],而ABA对植物成花的诱导和发育具有重要调控作用[21];而与植物向性生长相关的IBA及伸长生长相关的GA3含量较低,研究表明植物中越是代谢旺盛的器官生长素与赤霉素含量越高,说明人参花的代谢速度较慢;而茉莉酸JA在人参花中含量极低(低于检测限以下),因此有必要对JA激素合成通路相关的前体及活性成分进行进一步检测分析(图2)。

表1 人参花中内源性植物激素含量

图2 人参花5种内源性植物激素含量比例分析

3.3 人参花中JA合成通路关键成分的分析

JA生物合成通路主要分成三个阶段:(1)在质体中,由甘油酯转变为OPDA;(2)在过氧化物酶体中,OPDA转变为茉莉酸(JA);(3)在胞质溶胶中,JA转变为活性形式的茉莉酸与异亮氨酸的偶联物(JA-ile)(图3)。JA在不同组织的差异性积累导致了特异性的基因调控效应[22]。在对模式植物拟南芥和番茄的研究中,JA被认为通过调控水运输到花药和花丝的过程来调控花药的开裂和衰老,从而达到调控开花时间的作用[23-24]。在对水稻、小麦、黑麦和高粱等禾本科植物的研究中,同样发现内源性JA也参与颖花开放的调控[25]。从我们的数据中可以看到存在大量的JA前体OPDA,这种现象既是为了可能的应激反应诱导大量JA信号提供物质基础,同时也是开花期植物花中JA组成性表达的必然结果。JA及其衍生物主要的活性物质MeJA、JA-ile早就被证明是人参皂苷合成通路上非常有效的化学诱导子[26],往往都是通过刺激合路上关键酶基因[27]或是调控信号转导[28]。其中用外源100 μM MeJA处理人参不定根,参与人参皂苷生物合成基因如HMGR、SS、SE和DDS有明显上调,而CAS略有下降[29]。我们的数据中JA和JA-ile的含量水平不高,考虑到激素本身作用就是具有级联放大的作用效果,维持较低的浓度才是稳态。

图3 人参花中JA合成通路含量分析

4 讨论

内源性激素对于药用植物的生长及次生代谢产物(多数为药效成分)的含量具有重要的调控作用,植物内源性激素作为天然生长调节剂,参与了多种植物的生长发育过程并调控植物的次生代谢。

本研究发现,内源性植物激素可能参与调控了人参开花过程以及花中人参皂苷的积累。前人研究表明,内源性激素对植物开花过程存在调控[30-32]。ABA对刺梨Rosaroxburghii[33]、银杏GinkgobilobaL.[34]、荔枝Litchichinensis[35]、蝴蝶兰(Phalaenopsishybrida)[36]等花的形成起促进作用[37]。2004年,Ulger 等的研究结果显示在花诱导和起始阶段高浓度的ABA对花的形成起促进作用[38]。中药领域中,在石斛DendrobiumcandidumWall.ex Lindl.离体培养的研究中也发现,原球茎在ABA培养基上预处理15d再转入MS培养基上培养,花芽形成频率明显提高,且单株花数增加[39];同时,人参皂苷也在人参的花蕾中含量相对较高[40],植物激素和人参花中皂苷合成和积累可能存在一定相关性:而SA和JA都对人参皂苷合成起到调控作用[41]。从内源性植物激素对中药的次生代谢的影响来说,ABA促进黄花蒿中青蒿素的含量[42],JA也对药用植物次生代谢产生重要影响[43]。因此,内源性植物激素对人参的生长及次生代谢的调控影响值得深入讨论,同时内源性植物激素对中药质量的影响及具体机制的研究有待今后的进一步研究。

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