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贵阳市河水中大肠杆菌O157:H7的检测

2018-05-14袁光宇龚维瑶贾玲玲

安徽农业科学 2018年28期

袁光宇 龚维瑶 贾玲玲

摘要[目的]检测贵阳市河水中大肠杆菌O157:H7。[方法]通过大肠杆菌O157:H7毒力基因志贺样毒素2(stx2)、α-溶血素(hlyA)、紧密黏附素(eaeA)设计3对引物,并建立了实时荧光定量PCR检测方法对8株菌株进行特异性、灵敏度检测,利用该方法检测了采集自贵阳市部分河流10组水样。[结果]该方法能够特异扩增大肠杆菌O157:H7毒力基因,灵敏度为127 ng/mL;检测水样结果与国标方法相比,其灵敏度为87.5%,特异度为97.1%,准确度为94.0%。[结论]该方法的建立能够为大肠杆菌O157:H7检测提供较好的理论基础。

关键词实时PCR;大肠杆菌O157:H7;毒力基因

中图分类号R123.1文献标识码

A文章编号0517-6611(2018)28-0167-02

Detection of Escherichia coli O157:H7 from River Water of Guiyang City

YUAN Guangyu,GONG Weiyao,JIA Lingling et al(Guizhou Kwinbon Science and Technology for Food Safety Co.,Ltd.,Guiyang,Guizhou 550009)

Abstract[Objective] The research aimed to detect the Escherichia coli O157:H7 from river water of Guiyang City[Method]3 pairs of primers were designed by using E.coli O157:H7 virulence gene Shiga toxin 2 (Stx2),alpha hemolysin (hlyA) and tight adhesin (eaeA).Quantitative realtime PCR assay was established to detect the specificity and sensitivity of the 8 strains.10 water samples collected from some rivers in Guiyang City were detected by this method.[Result]The method could amplify the virulence gene of E.coli O157:H7 and the sensitivity was 127 ng/mL.Compared with the national standard method,the sensitivity of the detected water sample was 87.5%,the specificity was 97.1%,and the accuracy was 94.0%.[Conclusion]The establishment of the method can provide a good theoretical basis for the detection of E.coli O157:H7.

Key wordsRealtime PCR;Escherichia coli O157:H7;Virulence gene

肠出血性大肠杆菌是大肠杆菌成员中的一个亚型,主要分为26、111、157这3类血清型,感染后能导致人类出现出血性肠炎、溶血性综合症而得名,3类血清型中主要能引起人类感染性腹泻的菌株是O157:H7[1-2]。大肠杆菌是污染食品导致食品安全事件的微生物重要组成之一,病原菌的污染可能在食品的生产与加工、食品包装、运输、保存及消费等各环节。大肠杆菌的检测方法主要有常规的培养鉴别检测方法、胶体金试纸条、免疫磁珠分离检测、PCR检测等[3-5]。

在食品生产交易链中,常规的细菌培养、鉴定方法需要多个步骤检测,检验周期较长,不能满足食品安全快速检测要求。实时荧光定量PCR(Real-time PCR)是能特异性扩增DNA片段的分子生物学方法,在生物體外实现DNA的复制,以荧光信号强度测DNA的总量[6-7]。笔者建立于大肠杆菌O157:H7毒力基因志贺样毒素2(stx2)、α-溶血素(hlyA)、紧密黏附素(eaeA)基因设计引物片段[6-7],Real-time PCR扩增细菌基因组依据荧光信号实现快速检测。

1材料与方法

1.1试材试验涉及菌株信息见表1。DNA Maeker、DNA提取试剂盒DP302购买于天根生化科技有限公司;2×SYBR Green PCR Mastermix购买于Solarbio;其他化学试剂购买于国药。

1.2仪器凝胶成像仪BIO-RAD、电泳仪购买于Thermo公司;实时荧光定量PCR扩增仪购买于Thermo;高速离心机5424D型购买于Eppendorf公司。

1.3方法

1.3.1引物设计。

搜索GenBank公布的大肠杆菌O157:H7菌株志贺样毒素2(AF162758.1)、α-溶血素(U12572.1)、紧密黏附素(U32312.1)基因序列,利用Primer-BLAST 设计引物。引物由生工生物工程(上海)有限公司合成,引物信息如下所示:

hlyA-For:5′-TCTGACAGGAGGAAGCGGTA-3′

hlyA-Rev:5′-CTCCTGAGGCATCTTTCGCA-3′

stx2-For:5′-AACTGCATATTGCCCCGTCA-3′

stx2-Rev:5′-TGTGATGGATGGTGCCAGAC-3′

eaeA-For:5′-AGCGTTACGTTTCCCTCTCG-3′

eaeA-Rev:5′-CCGGGTCCGGGTATAACAAC-3′

1.3.2DNA的提取及反应体系建立。表1各细菌接种在10 mL 适宜液体培养基,摇床培养过夜,按DNA提取试剂盒方法提取细菌基因组DNA。

Real-time PCR反应体系:DNA模板1 μL,2×Mastermix 10 μL,Primer for/rev 2 μL,ddH2O 7 μL。反應条件为95 ℃ 5 min,94 ℃ 30 s,60 ℃ 30 s,72 ℃ 30 s,30个循环后72 ℃持续5 min。

1.3.3特异性及灵敏度测试。

利用建立的Real-time PCR反应体系,以3对特异性引物分别检测表1中所示菌株基因组DNA。大肠杆菌O157:H7基因组DNA按10倍梯度稀释至10-6,取1 μL作为模板,用于验证方法的灵敏度。

1.3.4样本检测。

采集自贵阳市部分河流水样50份,分别进行增菌后,按建立的Real-time PCR试验方法和微生物学检验标准[8]进行检测。

2结果与分析

2.1方法特异性

经荧光等温扩增仪扩增表1中8株细菌基因组DNA,荧光信号强度结果如图1所示,将同一菌株PCR产物混合后琼脂糖凝胶电泳检测结果如图2所示。图1显示,大肠杆菌O157:H7所扩增基因stx2、hlyA、eaeA荧光信号呈指数增加,其余7株均未检测到荧光信号的变化。图2显示,8株细菌扩增基因仅大肠杆菌O157:H7出现3条DNA条带,分别为522、386、279 bp。

2.2灵敏度测试

大肠杆菌O157:H7基因组DNA经核酸浓度测定仪检测浓度为127 ng/μL,按10倍梯度稀释至10-6,取1 μL作为模板,将引物混合按建立的检测方法验证其灵敏度,检测结果如图3所示。由图3可知,当DNA浓度为127 ng/mL时40 min后荧光信号呈指数增加。因此,该研究建立的方法其灵敏度为127 ng/mL。

2.3水样检测采集自贵阳市10处河流每处5份水样,共计10组50份。分别采用Real-time PCR方法和国标方法GB 4789.36—2016

检测大肠杆菌O157:H7,Real-time PCR方法和国标方法检测比较结果如表2。结果显示(表2),测出阳性样品分别为Real-time PCR方法15份、国标方法16份;阴性样本分别为Real-time PCR方法35份、国标方法34份。分析结果可知,建立的Real-time PCR检测灵敏度为87.5%,特异度为97.1%,准确度为94.0%。

3讨论

大肠杆菌O157:H7污染食品是食品安全事件的主因之一,各地区时有检出[9-10]。大肠杆菌O157:H7侵袭力极强,人类感染后出现出血性结肠炎、溶血性贫血、尿毒症等症状,因而我国及欧盟国家都明确规定不得检出[11-12]。传统微生物培养方法所耗时间长,PCR 技术近年来在检测致病微生物上是较为快捷、可靠的分子生物学检测方法,被广泛应用于大肠杆菌、金黄色葡萄球菌、伤害沙门氏菌等微生物的检测[13-15]。

Real-time PCR方法相较于PCR法能够将检测结果实现数据化,具有检测灵敏度高、特异性强等特点[16]。根据GenBank中所查询的大肠杆菌O157:H7菌株stx2(AF162758.1)、hlyA(U12572.1)、eaeA(U32312.1)毒力基因序列设计引物,扩增序列长度分别为522、386、279 bp,能够避免检测单一基因出现的假阳性,实现快速、准确检测需求。根据引物优化,该研究建立的3个毒力基因退火温度均为60 ℃,可以实现3对引物在同一反应管中扩增,其灵敏度为127 ng/mL。利用该研究建立的方法检测采集自贵阳市部分河流50份水样,在个别样本检测时有较小出入,但每组检测

结果一致。因此,该研究所建立的检测方法能够为检测大肠杆菌O157:H7提供理论支持。

参考文献

[1]

易海华,赵金伟,徐波,等.使用环介导等温扩增技术快速检测食品中肠出血性大肠杆菌O157:H7的初步研究[J].中国食品卫生杂志,2010,22(3):206-213.

[2] KHAN S,RASHEED F,ZAHRA R.Genetic polymorphism of agr locus and antibiotic resistance of Staphylococcus aureus at two hospitals in pakistan[J].Pak J Med Sci,2014,30(1):172-176.

[3] 庞璐,宋喆,吴冬雪,等.PCR-免疫胶体金试纸条方法检测食品中肠出血性大肠杆菌O157:H7[J].食品安全质量检测学报,2015(2):447-451.

[4] 丁浩,苏战强,夏利宁,等.免疫磁珠富集法对牛源大肠杆菌O157:H7分离鉴定的影响[J].中国畜牧兽医,2017,44(4):1189-1194.

[5] 卫昱君,王紫婷,徐瑗聪,等.致病性大肠杆菌现状分析及检测技术研究进展[J].生物技术通报,2016,32(11):80-92.

[6] BARBAUPIEDNOIR E,DENAYER S,BOTTELDOORN N,et al.Detection and discrimination of five E.coli pathotypes using a combinatory SYBR Green qPCR screening system[J].Appl Microbiol Biotechnol,2018,102(7):3267-3285.

[7] 夏灿,蒋蔚,刘迎春,等.肠出血性大肠杆菌O157:H7抗原基因及毒力基因多重荧光定量PCR检测方法的建立[J].畜牧与兽医,2016,48(10):13-21.

[8] 中華人民共和国国家卫生和计划生育委员会,国家食品药品检督管理总局.食品微生物学检验大肠埃希氏菌O157:H7/NM检验:GB 4789.36—2016[S].北京:中国标准出版社,2017.

[9] 刘秀峰,董懿德,陈伟,等.福州市各类食品中O157∶H7大肠杆菌污染调查[J].中国卫生检验杂志,2002,12(6):712-713.

[10] Infections Agents Suvreillance Center.National Institute of Health and Infections Diseases Control Diveison,Ministry of Health and Welfare.Japan.Outbreaks of enterohemohrragic Escherichia coli O157:H7 infection[J].Japan ISAR,1996,17(8):122.

[11] 中华人民共和国国家卫生和计划生育委员会.食品中致病菌限量:GB 29921—2013[S].北京:中国标准出版社,2014.

[12] EC.Microbiological criteria for foodstuffs:EC 1441—2007[S].EC,2007.

[13] 李楠,赵思俊,王娟,等.肉鸡生产链中肠炎沙门氏菌耐药性分析及ERIC-PCR分型[J].食品科学,2016,37(3):120-124.

[14] 黄丰光,乐燕红,黄建城,等.金黄色葡萄球菌coa基因实时荧光PCR的建立及应用研究[J].中国卫生检验杂志,2017,27(1):94-96,100.

[15] HASHEMI E,FOROUZANDEH M.Designing a new biosensor “DNA ELISA” to detect Escherichia coli using genomic DNA and comparison of this method to PCRELISA[J].J Enzyme Inhib Med Chem,2018,33(1):722-725.

[16] 王玉倩,薛秀花.实时荧光定量PCR技术研究进展及其应用[J].生物学通报,2016,51(2):1-6.