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miR-34a调控MSR1蛋白对前列腺癌细胞迁移和侵袭的影响*

2018-04-20韩兴涛杨凌博魏澎涛李小辉孙建涛杨锦建

中国免疫学杂志 2018年4期
关键词:细胞株荧光素酶前列腺癌

韩兴涛 杨凌博 魏澎涛 李小辉 孙建涛 杨锦建

(洛阳市中心医院泌尿外科,洛阳 471000)

前列腺癌是男性泌尿系统中发病率最高的原发性肿瘤,发病率为 8/10万,大约占所有泌外系统所有肿瘤类型的18%[1]。目前主要的治疗方案是手术或手术后化疗,然而,即便有手术机会,术后患者的平均生存期只有为5~6个月。且复发率也相对较高[2]。随着前列腺癌发病相关基因和对分子机制认识的进展,寻求调控前列腺癌的分子已经成为肿瘤治疗和改善预后的新方向。MicroRNA(miRNA)是一种保守的非编码的小RNA,其可以调节基因和蛋白质的表达。通过结合mRNA下游的相关蛋白调控其降解或翻译过程[3,4]。miRNA可调节多种肿瘤的生物学行为,包括细胞分化和增殖,以及迁移过程[5,6]。最近新出现的研究证据表明,miRNA在前列腺癌细胞自我更新和分化中负调节某些蛋白表达,进而促进其行为。最近,发现了miR-34可以作为肿瘤抑制剂在前列腺癌中有潜在作用,但是其具体机制尚未研究明确[7]。

巨噬细胞清道夫受体1(MSR1)基因定位在16q23,可以编码下游相关转录因子,广泛存在肿瘤细胞的基因序列中[8]。MSR1作为一种转录抑制因子,可以和蛋白修饰酶结合形成复合物,通过与启动子结合,调控细胞分化和器官形成过程。到目前为止,一些研究结果证实MSR1在乳腺癌、前列腺癌等恶性肿瘤中表达上升,而且在乳腺癌、前列腺癌中已经证实MSR1与肿瘤的发生及发展密切相关[9]。

在前列腺癌中,miR-34a和MSR1相互关系的研究鲜有报道。本研究阐明miR-34a和MSR1在前列腺癌中表达作用及相应作用机制,对前列腺癌的诊断和治疗具有极其重要的意义。

1 材料与方法

1.1细胞株与主要试剂 人前列腺癌细胞LNCap、PC3、DU145和22RV1购买自上海细胞研究所。细胞培养条件:含10%胎牛血清的1640RPMI培养基,37℃、5%CO2条件下培养。MSR1兔单克隆抗体购自Abcam(ab123946)。Transwell小室购自美国Millipore公司,Matrigel购自美国BD公司。miR-34a-mimic和LV5-MSR1慢病毒购自上海吉凯基因有限公司。

1.2方法

1.2.1qPCR 荧光定量PCR检测miR-34a、MSR1的表达 用Trozel(Gibco) 抽提前列腺癌细胞的总RNA,通过逆转录扩增miR-34a和MSR1,MSR1用GAPDH作为内参物,miR-34a使用U6作为内参。反应条件:以200 ng总RNA为模版,通过逆转录获取cDNA,在37℃中孵育15 min,然后在95℃中退火5 min。后根据Kapa PCR试剂盒说明书进行PCR反应。获得数据以公式RQ=2-ΔΔCT计算mRNA表达量。实验重复3次。

1.2.2Western blot检测MSR1蛋白水平 按照说明书配制10%SDS-PAGE分离胶,每孔加入20 μg蛋白样品。使用湿转法将蛋白移至PVDF膜上,使用5%脱脂奶粉室温下封闭2 h,TBST充分冲洗后,使用1∶1 000稀释一抗孵育(兔单克隆MSR1抗体),4℃过夜;加入辣根过氧化酶物标记羊抗兔IgG(1∶2 500) 稀释,室温孵育2 h;ECL显影后检测。实验重复3次。

1.2.3双荧光素酶报告基因实验 从人类基因组DNA产生全长MSR1-3′UTR,并通过退火合成的信号寡核苷酸产生突变体MSR1-3′UTR。将这些DNA片段克隆到ph-TK载体(肾脏荧光素酶)中,preporter-MSR1-3′UTR代表野生型质粒载体和miR-133结合共转染,preporter-MSR1-3′UTRm代表突变型质粒载体和miR-133结合共转染,同时使用pGL-3.0(荧光素酶)作为内参照,检测NC组和miR-34a-mimic组中MSR1的荧光活性相对值。根据制造商试剂说明书使用Dual Luciferase Reporter Assay System试剂盒(Promega)测量萤火虫和海肾荧光素酶活性,通过双荧光素酶检测miR-34a对MSR1的表达活性的调控能力。

1.2.4Transwell侵袭实验检测前列腺癌细胞的侵袭能力 所有试剂及器材均于冰块上预冷处理,将Transwell小室置于24孔板内,将Transwell小室内膜均匀涂抹Matrigel胶100 μl,37℃孵育20 min,胶凝固后进行细胞操作;逐步消化、离心、计数细胞后,按照2.5×104ml-1浓度用无血清培养基将前列腺癌细胞稀释,制成细胞悬液;按照每孔200 μl的细胞悬液加入Transwell上室,同时在Transwell下室加入10%FBS+培养基500 μl,放入37℃孵箱培养;孵育24 h后使用甲醛固定细胞,结晶紫染色15 min,使用棉签去除小室内膜上的细胞,然后于显微镜下计数,观察4个高倍视野下(×40)穿过滤膜的细胞数。实验重复3次。

1.2.5划痕实验检测前列腺癌细胞的迁移能力 划痕实验:将前列腺癌细胞接种于6孔板,待细胞融合度生长在90%时,用200 μl消毒枪头垂直划线,并在显微镜下测量划痕的初始距离(0 time),然会孵育24 h、48 h、72 h后,分别测量划痕的距离,并计算细胞的迁移率。实验重复3次。细胞迁移率的计算公式=[迁移距离D(0 h)-迁移距离D(24 h、48 h、72 h)]/ 迁移距离D(0 h)。

2 结果

2.1miR-34a和MSR1在人前列腺癌细胞株中的表达情况 如图1A所示,MSR1在前列腺癌细胞株中呈现表达不一的水平,我们选取MSR1蛋白水平相对较高的前列腺癌细胞株PC3,用于后续试验过表达MSR1的实验。如图1B显示,miR-34a的表达水平在不同类型的前列腺癌细胞株中表达水平不同,miR-34a在PC3中表达情况相对较低,因此,选取PC3细胞株作为本实验的实验细胞株。

2.2双荧光素酶检测miR-34a和MSR1相关关系 我们通过TargetScan生物信息网站检测MSR1是miR-34a的下游相关靶标,通过双荧光素酶试验检测MSR1和miR-34a在前列腺癌细胞中的相互表达关系。我们发现miR-34a具有和MSR1相似的3′-UTR结合序列。转染miR-34a-mimic后检测miR-34a的表达水平相对增高(图2A)。然后将MSR1 3′-UTR克隆到miRNA报告载体中。miR-34a的过表达荧光素酶活性降低到对照组的70%水平,表明miR-34a可以有效抑制MSR1的荧光活性。双荧光素酶报告基因结果显示(图2B):miR-34a-mimic可以明显抑制MSR1的荧光素酶活性。表明miR-34a能与MSR1的3′UTR特异性结合,并可以调控MSR1的表达活性。

图1 miR-34a 和MSR1 在人前列腺癌细胞株中的表达情况Fig.1 Expression of miR-34a and MSR1 in human prost-ate cancer cell linesNote: A.Expression of MSR1 in prostate cancer cell lines;B.miR-34a expression in prostate cancer cell lines.

图2 双荧光素酶实验检测miR-34和MSR1之间的相互关系Fig.2 Dual luciferase assay examines the correlation between miR-34 and MSR1Note: A.Effect of miR-34a-mimic on miR-34a expression;B.Double luciferase assay to detect the effect of miR-34a on the activity of MSR1.*.P<0.05.

2.3miR-34的表达对前列腺癌细胞迁移和侵袭能力的影响 为了研究miR-34a对前列腺癌细胞迁移和侵袭能力的影响。使用PC3细胞株进行质粒转染以增加miR-34a的表达。通过Transwell侵袭实验检测miR-34a对PC3细胞侵袭情况的影响。如图3A所示,miR-34a-mimic组的细胞侵袭数目比对照组明显降低[(186.1±12.5) vs (89.3±8.2),P=0.021],差异具有统计学意义。通过划痕愈合实验检测miR-34a对PC3细胞迁移情况的影响。如图3B所示,miR-34a-mimic组的细胞迁移速度比其对照组明显减慢[24 h (0.38±0.02) vs (0.18±0.03),P=0.015;48 h (0.82±0.11) vs (0.51±0.08),P=0.009;72 h (1.25±0.19) vs (0.82±0.12),P=0.016],差异具有统计学意义。结果说明,miR-34a过表达后可以明显抑制PC3细胞的迁移和侵袭能力。

2.4MSR1的表达对前列腺癌细胞迁移和侵袭能力的逆转作用 为了研究MSR1的表达对miR-34a影响前列腺癌细胞迁移和侵袭能力的逆转作用。使用Transwell侵袭实验检测MSR1对PC3细胞侵袭能力逆转的影响。如图4A所示,miR-34a-mimic+LV5-MSR1组的细胞侵袭数目比miR-34a-mimic组明显增多[(192.1±11.4) vs (75.8±7.1),P=0.035], 差异具有统计学意义。通过划痕愈合实验检测MSR1对PC3细胞迁移情况的影响。如图4B所示,miR-34a-mimic+LV5-MSR1组的细胞迁移速度比miR-34a-mimic组明显增快[24 h (0.38±0.02) vs (0.18±0.03),P=0.015;48 h (0.82±0.11) vs (0.51±0.08),P=0.009;72 h (1.25±0.19) vs (0.82±0.12),P=0.016],差异具有统计学意义。结果说明,过表达MSR1后可以明显逆转miR-34a对前列腺癌细胞的迁移和侵袭能力。

图3 miR-34 的表达对前列腺癌细胞迁移和侵袭能力的影响Fig.3 Effect of miR-34 expression on ability of prostate cancer cells to migrate and invadeNote: A.Transwell invasion test to detect the effect of miR-34a on invasive ability of prostate cancer cells;B.Scratch healing test to detect the effect of miR-34a on the migration of prostate cancer cells.*.P<0.05.

图4 MSR1 的表达对前列腺癌细胞迁移和侵袭能力的逆转作用Fig.4 Reversal of MSR1 expression on ability of prostate cancer cells to migrate and invadeNote: A.Transwell invasion test to detect the reversal effect of MSR1 on invasive ability of prostate cancer cells;B.Scratch healing test to detect the effect of MSR1 on the migration of prostate cancer cells.*.P<0.05.

3 讨论

前列腺癌目前在发展中国家发病率很高,相比发达国家来说,其发病率及死亡率都更高[10]。目前有研究报道,电离辐射、生活习惯(吸烟史等)和遗传易感性都是前列腺癌的主要病因和高危因素[11]。晚期的前列腺癌对周围组织侵袭情况比较严重,对周围组织的浸润和破坏是引起症状的主要原因,只能依靠手术切除治疗,往往也只能起到缓解作用,但是术后复发相当严重[12]。所以进一步研究前列腺癌的分子机制和疾病进展有利于改善前列腺癌的诊断和预后。

最近很多研究都报道miRNA在多种恶性肿瘤中充当很重要的调控作用[13]。通常来说,miRNA扮演肿瘤抑制因子的角色,通过下调促癌基因的表达或者促进抑癌基因的表达来实现抑制肿瘤的作用。同时有研究表明,miRNA可以同时调节多种信号通路,参与多种途径的信号传导[14]。在遗传性前列腺癌中,部分miRNA存在异常表达的现象,比如miR-14、miR-29、miR-573等[15,16]。miRNA的异常表达可以上调或者下调前列腺癌中的转录分子,影响前列腺癌细胞的增殖、分化以及凋亡等行为。miR-34a在多种类型的肿瘤组织中表达异常,如卵巢癌、肺癌、前列腺癌、胶质瘤等,miR-34a的表达失调能够改变肿瘤细胞的迁移和侵袭等恶性生物学行为。Dong等[17]在人卵巢癌细胞中发现miR-34a通过调节EMT达到抑制肿瘤细胞转移的作用。但是miR-34a在前列腺癌中的表达以及调控机制尚未有研究报道。

MSR1基因位于8p22,可以编码A 型巨噬细胞清道夫受体蛋白[18]。可以介导巨噬细胞膜表面具有吞噬功能的识别受体的表达,进而介导炎症的产生,影响细胞的部分生物学行为。最近研究显示,MSR1基因与前列腺癌、卵巢癌以及动脉粥样硬化等多种疾病有一定的相关性[19]。白立刚等[20]研究表明,在亚洲人群中MSR1基因的突变与前列腺癌的遗传易感性相关。而目前,在临床还没有完全明确MSR1在前列腺癌的发生发展过程中的具体机制,尤其是其上下游相关调控的miRNA的表达情况。

本研究通过检测前列腺癌中miR-34a和MSR1的表达情况及相关关系,抑制miR-34a后前列腺癌细胞的生物学行为的变化,再次探讨MSR1对前列腺癌细胞生物学行为的逆转作用。我们研究结果显示,过表达miR-34后,前列腺癌细胞的迁移和侵袭能力受到相应的抑制,这表明miR-34a可以有效抑制前列腺癌细胞的恶性生物学行为;而之后过表达MSR1后前列腺癌细胞的迁移和侵袭能力得到逆转,表明MSR1可以和miR-34a相互调控对前列腺癌细胞的迁移和侵袭能力进行干扰。

综上所述,前列腺癌中miR-34a的表达可以通过靶向调控MSR1影响前列腺癌细胞的迁移和侵袭能力,MSR1的过量表达可以逆转miR-34a在前列腺癌中的抑制能力,表明miR-34a和MSR1在前列腺癌的发生发展中可能扮演一个关键作用,可能成为前列腺癌的一个新的预防和治疗靶点,有效改善前列腺癌的诊断和预后情况。

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