HPLC法测定维吾尔药材阿勃勒中指标性成分的含量
2018-03-22郑梦成孙如煜杜守颖
郑梦成,高 艳,郭 爽,孙如煜,杜守颖*,白 洁*,陈 菊
(1.北京中医药大学中药学院,北京 100029;2.新疆银朵兰维药股份有限公司,乌鲁木齐 830000)
阿勃勒是豆科植物腊肠树CassiafistulaL.的干燥成熟果实,现收载于《新疆维吾尔自治区维吾尔药材标准》、《中国医学百科全书维吾尔医学卷》和《中华本草维吾尔卷》,异名为腊肠树果和清泻山扁豆[1-3],是维吾尔医习用药材。阿勃勒可生湿生热、清除过剩黑胆汁、清热消炎、润肠通便和散气通经,常用于治疗干寒或体液烧焦沉淀引起的黑胆汁性炎肿、目赤肿痛、喉干便秘、关节痛、干咳和气喘等症[1],临床常用于治疗异常胆液质所引起的便秘等症,多见于传统组方如通阻合牙日仙拜尔片、买提布合木来引汤和买提布合艾非提蒙汤等[2]。另外,阿勃勒在国外文献、藏药和傣药中均有记载,在印度,阿勃勒主要用于治疗皮肤病和保肝等,阿勃勒的原植物腊肠树也被用于治疗咳嗽、皮肤瘙痒和糖尿病等[4-5];在藏药理论中,阿勃勒具有清热功效,能治疗肝病、实热便秘和四肢肿胀等,收载于藏族医药经典《月王药诊》、《四部医典》和《中国藏药》[6];阿勃勒在傣族药典中被记载,主要用于抗菌和润肠通便[7]。现代研究表明,阿勃勒中含蒽醌类(如大黄酸)、缩合性鞣质等成分,种子中含有多种挥发性成分[8-11]。
目前,关于阿勃勒的研究相对匮乏,《新疆维吾尔自治区维吾尔药材标准》中该药项下仅有性状和鉴别项,缺少必要的含量检测项目,无法有效控制药材质量。原标准鉴别项目提示:阿勃勒中含有蒽醌类成分,这与其临床用于治疗便秘等症的功效相契合,考虑阿勃勒中蒽醌类成分为其泻下作用的主要药效成分[8],因此拟筛选含量较高的蒽醌类成分作为其含量测定的指标成分;建立指标性成分的含量测定方法,为其质量标准的完善提供依据,为更全面地评价阿勃勒药材及其相关制剂质量奠定基础。
1 仪器与试药
1.1仪器 LC-20AD高效液相色谱仪(日本岛津公司,SPD-M20A,PDA检测器,LC Solution色谱工作站);BT 25S电子分析天平(北京赛多利斯公司);DZKW-4电子恒温水浴锅(北京中兴伟业仪器有限公司);SHB-Ⅲ型循环水式多用真空泵(上海振捷实验设备有限公司)。
1.2试药 大黄酸对照品(中国食品药品检定研究院,批号110757-201607);阿勃勒(批号160801,由新疆银朵兰维药股份有限公司提供),按照《新疆维吾尔自治区维吾尔药材标准》、《中国药典》2015年版四部检验,符合规定;乙腈(Sigma公司,色谱级);磷酸(TED公司,分析纯);娃哈哈纯净水(杭州娃哈哈集团有限公司);甲醇为分析纯;其它试剂为分析纯。
2 方法与结果
2.1指标性成分的筛选 参考《中国药典》2015年版大黄项下[12]游离蒽醌及总蒽醌的提取方法,选择蒽醌类代表性成分芦荟大黄素、大黄酸、大黄素、大黄酚和大黄素甲醚对照品进行色谱图比对。
2.1.1芦荟大黄素、大黄酸和大黄素的色谱比对 色谱条件:Diamosil-C18色谱柱(250 mm×4.6 mm,5 μm);乙腈-1 mL·L-1磷酸 (47∶53);流速为1.0 mL·min-1;检测波长为254 nm;柱温为30℃,进样体积为20 μL。HPLC图见图1。
图1芦荟大黄素、大黄酸、大黄素与阿勃勒样品的HPLC对比图
A.混合对照品;B.游离蒽醌样品;C.总蒽醌样品;1.芦荟大黄素;2.大黄酸;3.大黄素。
Fig.1 Comparison of HPLC chromatograms of aloe-emodin,rhein,emodin and samples of Abole
A.mixed reference substances;B.sample of free anthraquinones;C.sample of total anthraquinones;1.aloe-emodin;2.rhein;3.emodin.
2.1.2大黄酚和大黄素甲醚的色谱比对 色谱条件:Diamosil-C18色谱柱(250 mm×4.6 mm,5 μm);乙腈-1 mL·L-1磷酸(57∶43);流速为1.0 mL·min-1;检测波长为254 nm;柱温为30 ℃,进样体积为20 μL。HPLC图见图2。
由图1~2可知,阿勃勒游离蒽醌样品及总蒽醌样品中均可检出大黄酸,而不可检出其余4种,因此,确定大黄酸为阿勃勒中含量测定的指标性成分。
2.2指标性成分含量测定方法的建立
2.2.1色谱条件 Diamosil-C18色谱柱(250 mm×4.6 mm,5 μm);乙腈-1 mL·L-1磷酸(47∶53);流速为1.0 mL·min-1;检测波长为254 nm;柱温为30 ℃,进样体积为20 μL。在上述色谱条件下进行分析,大黄酸保留时间为15 min,分离度良好,色谱图见图3。
图2大黄酚、大黄素甲醚与阿勃勒样品的HPLC对比图
A.混合对照品;B.游离蒽醌样品;C.总蒽醌样品;4.大黄酚;5.大黄素甲醚。
Fig.2 Comparison of HPLC chromatograms of chrysophanol,physcion and samples of Abole
A.mixed reference substances;B.sample of free anthraquinones;C.sample of total anthraquinones;4.chrysophanol;5.physcion.
图3阿勃勒对照品、供试品和阴性对照品的HPLC图
A.对照品;B.阿勃勒样品;C.阴性对照;1.大黄酸。
Fig.3 HPLC chromatograms of Abole reference substance,sample and negative control
A.reference substance;B.sample of Abole;C.negative control;1.rhein.
2.2.2混合对照品溶液的制备 取大黄酸对照品0.84 mg,精密称定,置于10 mL量瓶中,用甲醇超声溶解,定容至刻度,摇匀,即得。
2.2.3供试品溶液的制备 取阿勃勒药材,粉碎,过4号筛,称取1 g,精密称定,置于圆底烧瓶中,精密加入100 mL甲醇,称定质量,加热回流1.5 h,放冷,再称定质量,用甲醇补足减失的质量,摇匀,滤液过0.45 μm微孔滤膜,即得。
2.2.4阴性样品溶液的制备 按照2.2.3项下方法制备阿勃勒阴性样品溶液。
2.3方法学考察
2.3.1线性关系考察 分别精密移取2.2.2项下制备的混合对照品溶液1 mL,分别置于2,5,10,25和50 mL量瓶中,加甲醇定容至刻度,摇匀,得系列质量浓度的对照品溶液,测定峰面积。按照2.2.1项下色谱条件分别进样20 μL,记录色谱图。分别以对照品质量浓度为横坐标(x)、峰面积为纵坐标(y),绘制标准曲线,进行线性回归,得大黄酸的回归方程为y=72 308x-36 833 (r=0.999 8),结果表明,大黄酸质量浓度在1.68~84.00 μg·mL-1范围内与峰面积线性关系良好。
2.3.2精密度考察 按照2.2.1项下色谱条件,取2.2.2项下制备的混合对照品溶液20 μL,重复进样6次,以大黄酸峰面积计算RSD值为0.29%,结果表明,仪器精密度良好。
2.3.3稳定性考察 取2.2.3项下制备的阿勃勒供试品溶液,按照2.2.1项下色谱条件,在0,2,4,6,12和24 h进样,进样体积20 μL,测得大黄酸的峰面积RSD值为0.68%,结果表明,阿勃勒供试品溶液在24 h内稳定性良好。
2.3.4重复性考察 取同一批阿勃勒粉末6份,按照2.2.3项下方法制备供试品溶液,按照2.2.1项下色谱条件进样,进样体积为20 μL,测得大黄酸的平均含量为0.335 6 mg·g-1,RSD值为1.52%,结果表明,该方法重复性良好。
2.3.5加样回收率考察 取已知含量的阿勃勒粉末0.5 g,精密称定,加入一定量的大黄酸对照品溶液,按照2.2.3项下方法制备供试品溶液,平行操作6份,按照2.2.1项下色谱条件进样,测定大黄酸的含量,计算平均回收率及RSD值,结果表明,大黄酸的平均加样回收率为99.87%,RSD值为1.01%。见表1。
表1大黄酸的加样回收率实验结果
Tab.1 Results of rhein recovery test
编号取样量/g样品中含量/mg加入对照品量/mg测定量/mg回收率/%平均回收率/%RSD/%10.50040.16790.18000.3485100.3299.871.0120.50010.16780.18000.347699.8730.50010.16780.18000.347899.9840.50010.16780.18000.344898.3450.50060.16800.18000.346899.3160.50070.16800.18000.3505101.38
2.4不同批次阿勃勒中大黄酸的含量测定 6批阿勃勒样品均由新疆银朵兰维药股份有限公司提供,按照《新疆维吾尔自治区维吾尔药材标准》检验,符合规定。精密称取各批次阿勃勒粉末1 g,过4号筛,平行操作3份,按照2.2.3项下方法制备供试品溶液,按照2.2.1项下色谱条件测定大黄酸的含量,样品采集信息及测定结果见表2。
表2样品采集信息及测定结果
Tab.2 Sample collection information and determination results
(n=3)
3 讨论
本实验采用HPLC 法测定阿勃勒药材中指标性成分大黄酸的含量,线性关系良好,精密度、重复性、回收率均符合要求,该方法简便易行,可为阿勃勒质量标准的建立和完善提供实验依据。
3.1含量测定指标成分的筛选 现代研究表明,阿勃勒含蒽醌类成分,如大黄酸、芦荟大黄素苷、甲氧基蒽醌及鞣质等成分[1]。本实验通过进行大黄酸等对照品比对,确定阿勃勒中蒽醌类成分为大黄酸,综合考虑蒽醌类为其泻下作用的药效成分,最终选择大黄酸作为其含量测定指标性成分,并建立阿勃勒中大黄酸的含量测定方法。
3.2色谱条件的选择 大黄酸在中药材及中成药中的含量测定方面已有众多文献报道[13-17],本实验考察了甲醇-0.5 mL·L-1磷酸、甲醇-1 mL·L-1磷酸和乙腈-1 mL·L-1磷酸,发现使用流动相为后者时杂质干扰较少,分离度较好。考察乙腈-1 mL·L-1磷酸不同比例,最终选择最佳比例为47∶53,此时色谱峰分离度好、保留时间适宜、线性关系和重复性良好。
3.3供试品溶液及其制备方法的考察 以大黄酸含量为指标,对供试品溶液的制备方法进行单因素考察,包括:提取方法(回流法、超声法),提取溶剂(体积分数为50%的甲醇、体积分数为75%的甲醇和甲醇),提取溶剂用量(25,50,100和150 mL),提取时间(0.5,1.0,1.5和2.0 h)以及药材粉碎粒度(过3,4号筛),通过SAS软件进行数据分析,最终确定最佳供试品溶液的制备方法。
3.4结果分析 在所测的6批阿勃勒药材中,均能检测到大黄酸,但产地、来源不同,含量差异明显;同一产地不同批次药材间大黄酸含量亦有较大差异,如第1批与第5批大黄酸含量相差约20%,推测阿勃勒的储存条件等也会对其含量产生影响,这提示我们在生产实践中应注意采收时间、控制药材储存条件和药材来源。本实验同时对阿勃勒不同部位的大黄酸含量进行测定,结果显示,大黄酸主要存在于果壳中,种子中含量极少,同一果实中果壳中的大黄酸总量为种子中的265倍。种子中大黄酸含量虽少,但研究表明种子中含有脂肪油和树胶等[2,10],有润下作用,与果实中所含的蒽醌类成分的泻下作用相协调,具有润肠通便作用,入药时不必舍去。
本实验中仅检测6个批次,各批次间差异较大,若要进一步制定阿勃勒含量测定标准,则需积累一定批次,制定最低标准,在生产相关制剂的过程中则需控制药材来源。
维吾尔医药作为一个具有独特实践和理论的医药体系,是祖国医药不可缺少的部分,但其质量标准研究存在着化学研究起步较晚、相对落后的问题,限制了临床应用及新药开发[18-19]。目前,维吾尔药材面临着质量标准不健全甚至缺失的现状,亟待提高标准[20]。阿勃勒作为维吾尔医习用药材,临床应用广泛,但质量标准研究相对较少,《新疆维吾尔自治区维吾尔药材标准》中仅有薄层鉴别项,无含量测定项,本实验综合考虑含量测定结果与药效作用,选择大黄酸作为其含量测定指标性成分,首次建立了阿勃勒中大黄酸的含量测定方法,该液相方法简便、准确,可为其质量标准的完善、临床用药安全、合理开发提供参考依据。
[1] 新疆维吾尔自治区卫生厅.维吾尔药材标准:上册[M].乌鲁木齐:新疆科技卫生出版社,1993:139.
[2] 中国医学百科全书编辑委员会.中国医学百科全书:维吾尔医学[M].上海:上海科学技术出版社,2005:206.
[3] 国家中医药管理局《中华本草》编委会.中华本草:维吾尔药卷[M].上海:上海科学技术出版社,2005:196.
[4] Bahorun T,Neergheen V S,Aruoma O I.Phytochemical constituents ofCassiafistula[J].Afr J Biotechnol,2005,4(13):1530-1540.
[5] Alam M M,Siddiqui M B,Husain W.Treatment of diabetes through herbal drugs in rural India[J].Fitoterapia,1990,61(3):240-242.
[6] 青海省藏医药研究所,青海省药品检验所.中华藏药:第一卷[M].上海:上海科学技术出版社,1996:220.
[7] 谢成科,岳松健.药用植物学[M].北京:人民卫生出版社,1986:240.
[8] 王洪玲,梁文娟,钟国跃,等.腊肠树的化学成分和药理活性研究进展[J].中药材,2016,39(9):2168-2170.
[9] Yadava R N,Verma V.A new biologically active flavone glycoside from the seeds ofCassiafistula(Linn.)[J].J Asian Nat Prod Res,2003,5(1):57-61.
[10]张慧萍,李正宇,毕韵梅,等.傣药腊肠树果实挥发油的化学成分分析[J].时珍国医国药,2006,17(8):1464-1465.
[11]Kuo Y H,Lee P H,Wein Y S.Four new compounds from the seeds ofCassiafistula[J].J Nat Prod,2002,65(8):1165-1167.
[12]国家药典委员会.中国药典:2015年版:一部[S].北京:中国医药科技出版社,2015:23.
[13]彭贵龙,周光明,杨远高,等.高效液相色谱同时测定何首乌中大黄酸、大黄素和大黄酚的含量[J].四川大学学报:自然科学版,2014,51(2):349-353.
[14]刘远平,陈粟.不同产地药用大黄中5种游离蒽醌的含量测定[J].亚太传统医药,2016,12(15):42-44.
[15]黄敏,陆石英,叶萍.HPLC法测定上清丸中芦荟大黄素、大黄酸、大黄素、大黄酚和大黄素甲醚的含量[J].中药材,2013,36(7):1174-1176.
[16]廖欣,乔立业,王银娟,等.HPLC测定肾炎宁片中大黄酸、大黄素、大黄酚及雷公藤甲素的含量[J].中国现代应用药学,2017,34(4):567-570.
[17]林兰兰,黄木土,谢新民,等.清肝解毒胶囊的质量标准研究[J].西北药学杂志,2016,31(3):231-235.
[18]刘永刚,木艾塔尔·努尔麦麦提,阿曼古丽,等.维药开发中存在的问题及建议[J].中国现代中药,2014,16(1):87-89.
[19]艾尔肯·卡斯木,热娜·吾买尔.试谈当前维吾尔药研究中有待解决的几个问题[J].中国民族医药杂志,2006,(4):82-83.
[20]高莉,斯拉甫·艾白.新疆维药与国内外中药质量标准研究的比较[J].中国民族医药杂志,2006,(4):29-30.