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6种胃液游离microRNAs对胃腺癌的诊断价值

2018-03-22陈妍洁刘韬韬沈锡中

中国临床医学 2018年1期
关键词:胃液室温胃炎

陈妍洁, 吴 昊, 董 玲, 刘韬韬, 沈锡中*

1. 复旦大学附属中山医院消化科,上海 200032 2. 复旦大学附属中山医院上海肝病研究所,上海 200032

胃癌在全球占肿瘤发病率的第4位,致死率也较高[1-2]。其中,近年来每年约75%的新发病例来自于亚洲[1-2]。目前,临床上胃癌的无创诊断标志物如癌胚抗原(carcinoembryonic antigen,CEA)的灵敏性和特异性均不高,对胃癌早期诊断作用不明显,而胃癌诊断的早晚决定患者的预后。因此,对于新型胃癌诊断标志物的探索显得尤为重要。MicroRNAs(以下简称miRNAs)是一类保守的非编码RNA分子,通常由18~24个核苷酸组成[3-4]。目前认为其在胃癌的发病中起至关重要的作用。多项研究[5-12]发现,一些miRNAs在胃癌组织和癌旁组织中的表达存在差异。有研究[13]发现,miR-17、miR-18a、miR-20a、miR-21、miR-106b、miR-378和miR-638在胃癌组织中表达异常,其中6个miRNAs(miR-17, miR-18a, miR-20a, miR-21, miR-106b、miR-378)在胃癌及癌旁组织中的表达存在差异。

目前,多项研究[14-16]发现,胃癌患者外周血及胃液中的癌症相关miRNAs表达也发生了改变。由于胃液属于胃癌肿瘤微环境的组成部分,因此胃液中miRNAs的表达与胃癌细胞的发生、发展联系更加紧密,可反映胃癌细胞的旁分泌情况。因此,本研究选取上述6个胃癌相关miRNAs,分析其在胃癌患者胃液中的表达,并探讨其作为胃癌诊断标志物的价值。

1 材料与方法

1.1 一般资料 选择2013年1月至12月于复旦大学附属中山医院进行胃镜检查的53例患者,包括24例胃腺癌患者、16例胃溃疡患者和13例慢性胃炎患者。胃腺癌患者入选标准:(1)病理确诊为胃腺癌;(2)在胃镜检查前未接受化疗或放疗等肿瘤相关治疗。胃溃疡患者入选标准:(1)病理诊断排除恶性溃疡;(2)药物治疗后溃疡愈合。慢性胃炎患者入选标准:病理诊断包括慢性非萎缩性胃炎(伴或不伴肠化生)、慢性萎缩性胃炎(伴或不伴肠化生)。所有患者病灶无活动性出血,检查前12 h禁食。本研究经医院伦理委员会批准,患者知情同意并签署知情同意书。

1.2 样品处理和miRNAs提取 胃液在活检前取出,4℃下 3 000×g离心10 min,取上清分装后保存在-80℃冰箱中。Cel-miR-39(广州市锐博生物科技有限公司)作为外源性内参加入胃液中,浓度为1×10-2pmol/L。

胃液总miRNAs按照miRcute miRNAs Isolation Kit[天根生化科技(北京)有限公司]说明书提取,具体过程如下:200 μL胃液中加入等体积裂解液MZ,震荡器震荡混匀30 s;室温放置5 min,使核酸蛋白复合物完全分离;室温13 400×g,离心10 min,取上清,转入1个新的无酶离心管中;加入200 μL氯仿,盖好管盖,剧烈震荡15 s,室温放置5 min;室温13 400×g离心15 min,取上层无色水相层至新管中;缓慢加入1/3体积的无水乙醇并混匀,将混匀液体转入吸附柱miRspin,室温放置2 min,室温13 400×g离心30 s,保留流出液;加入流出液体积2/3的无水乙醇并混匀,转入吸附柱miRelute,室温放置2 min,13 400×g离心30 s,离心后弃去流出液,保留吸附柱;向吸附柱miRelute中加入500 μL去蛋白液MRD,静置2 min,室温13 400×g离心30 s,弃废液;向吸附柱miRelute中加入600 μL漂洗液RW,静置2 min,室温13 400×g离心30 s,弃废液;向吸附柱miRelute中加入600 μL漂洗液RW,静置2 min,室温13 400×g离心30 s,弃废液;将吸附柱miRelute放入2 mL收集管中,室温13 400×g离心1 min,去除残余液体;将吸附柱miRelute转入1个新的离心管中,加入30 μL无酶DD水,室温放置2 min,13 400×g离心2 min。得到的总miRNAs保存在-80℃冰箱中。

总miRNAs采用miRcute miRNAs First-Strand cDNA Synthesis Kit试剂盒[天根生化科技(北京)有限公司]反转录成cDNA:(1)在miRNAs的3′端加入Poly(A)尾;(2)将Poly(A)尾修饰过的miRNAs反转录成为cDNA。

1.3 qRT-PCR半定量miRNAs miRNAs的PCR反应采用miRcute miRNAs qPCR Detection Kit试剂盒[天根生化科技(北京)有限公司]。miRNAs的引物序列见表1。将每个样品进行40个周期的循环反应:94℃变性20 s,60℃退火30 s,72℃扩增32 s。相对miRNAs计算公式为2-ΔCt[ΔCt = Ct (miRNAs) - Ct (内参)][17]。

表1 miRNAs的引物序列

1.4 统计学处理 采用SPSS 19.0统计软件进行分析。两组间miRNAs的表达采用非参数检验Mann-Whitney。用ROC曲线下面积(AUC)对miRNAs的诊断效能进行评估。检验水准(α)为0.05。

2 结 果

2.1 患者基本信息 24例胃癌患者中,男性17例,女性7例;年龄38~86岁,平均(65.92±11.03)岁。13例慢性胃炎患者年龄为28~82岁,平均(65±8.01)岁;16例胃溃疡患者年龄为34~80岁,平均(66±11.88)岁。由慢性胃炎和胃溃疡患者组成的对照组中,男性21例,女性8例。胃癌组和对照组患者年龄和性别差异无统计学意义。24例胃癌患者CEA、CA199、CA724这3项肿瘤指标中至少有1项为阳性,其中19例患者CEA阳性、1例CA724阳性、1例CEA和CA199阳性、2例CEA和CA724阳性、1例3项指标均为阳性;对照组中有6例至少有1项肿瘤标志物为阳性,其中1例为CEA阳性,5例为CA724阳性。

2.2 两组间6个胃液miRNAs的表达差异 结果(图1)显示:胃癌患者胃液中miR-17、miR-18a、miR-20a、miR-21和miR-378较对照组上调(P<0.05;两组胃液miR-106b差异无统计学意义。

2.3 ROC曲线分析miRNAs诊断效能 结果(图2、表 2)显示:miR-17、miR-18a、miR-21和miR-378诊断胃癌的效能中等;miR-20a和miR-106b诊断胃癌的效能较低。

图1 胃癌相关miRNAs在胃液中的表达

图2 胃癌相关miRNAs的诊断效能

miRNAAUC95%CI上限95%CI下限敏感性特异性miR-170.7100.5700.8500.5830.793miR-18a0.7390.6060.8710.4580.931miR-20a0.6840.5410.8270.7920.552miR-210.7170.5780.8560.4580.966miR-106b0.6410.4920.7900.8750.414miR-3780.7210.5850.8580.7500.586

3 讨 论

大量研究[14-16]发现,组织和血液中的miRNAs可作为胃癌的诊断和预测标志物。但是,对于胃液中miRNAs的研究目前还较少。胃液作为直接接触胃癌组织的体液,属于胃癌的肿瘤微环境组成之一,可直接反映肿瘤的发生、发展、侵袭、迁移,且临床上较易获得。因此,胃液中所含的小分子物质有较高的诊断特异性,可成为胃癌早期的诊断标志物。另外,也有研究[18-19]显示,不同的温度、时间、pH值、酶消化及冻融循环都难以改变体液中miRNAs的含量,提示体液中miRNAs具有相对稳定和抗降解的特性。虽然,目前尚未证明miRNAs在胃液中也具有同样的稳定性,但是我们在实验过程中发现,离心取上清后采用-80℃的保存方式并不影响后续的qRT-PCR实验,且miRNAs的相对表达量较为恒定,提示胃液中的miRNAs也有较好的稳定性,可能成为未来胃癌无创诊断的标志物之一。

本研究选取了系统综述胃癌组织中表达有明显差异的6个miRNAs在胃液中进行验证[13],并探讨其对胃癌的诊断价值。本研究发现,这6个miRNAs在胃癌患者的胃液中表达均有升高,其中,miR-17、miR-18a、miR-21和miR-378在癌和癌旁组织中的表达差异有统计学意义(P<0.05),且具有中等诊断效能。这些结果初步表明,胃液中的miRNAs可作为胃癌早期诊断的标志物。但是,本研究进行Logistic回归时未能将6个miRNAs整合。

胃癌患者胃液中miRNAs变化趋势与胃癌组织中miRNAs的表达不完全一致。文献[13]报道,miR-378在胃癌组织中表达较正常癌旁组织有所降低,而本研究结果相反。有研究[20]认为,一方面,胃癌细胞在生长过程中伴随大量坏死,坏死细胞被动释放大量的miRNAs于胃液中;另一方面,肿瘤细胞会主动释放含有miRNAs的微囊泡至胃液中,以精细调控肿瘤微环境,并向远处的细胞传递细胞信号,促进肿瘤的发生、发展和转移。但这些理论还有待进一步研究。

将胃液miRNAs作为胃癌诊断标志物的优势在于:首先,胃液由胃黏膜直接分泌,相比于血清或者血浆中的miRNAs,受全身其他疾病的影响较小,因此对于胃癌的诊断更具特异性;其次,胃液可通过胃镜和胃管获得,适用于长期服用抗凝药物不能活检、早期胃癌胃镜下难以识别以及无法行胃镜检查的患者;再次,目前miRNAs的提取和检测手段越来越成熟。

然而,胃液中miRNAs的检测也面临许多挑战。首先,试验前饮水、唾液分泌、病灶活动性出血等使胃液的质控较难,进而改变胃液中miRNAs的表达;其次,胃液中miRNAs对胃酸环境的稳定性要求及其储存条件尚未标准化;再次,幽门螺杆菌的感染是否影响胃液中miRNAs的表达水平目前尚不明确。

综上所述,本研究发现,胃液中的miRNAs可作为早期胃癌的诊断标志物。虽然本研究的样本量较少,但采用了系统综述的结果,选取胃癌患者表达阳性率最高的6个miRNAs,且对照组同时纳入了胃溃疡和慢性胃炎的患者,结果的准确性较高。另外,实验对于胃液的储存和处理都严格质控,及时处理,减少不同胃液质量所造成的偏差,可保证结果的可靠性。在后续实验中,将扩大样本量,并在对照中加入其他胃癌癌前病变(如中高级别上皮内瘤变)或间质瘤、平滑肌瘤等病变,以期提高胃液miRNAs作为胃癌诊断指标的特异性,并进一步研究胃液中miRNAs的改变与肿瘤分化、侵袭、转移的相关性及其调控机制。

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