肾炎消白颗粒对肾炎模型大鼠Nephrin蛋白表达的影响
2018-03-06曹尚美黄雯静王立范
曹尚美,黄雯静,王立范
1.漯河市中心医院,河南 漯河 462000 2.山东省莱芜市中医医院,山东 莱芜 271100 3.黑龙江省中医药科学院,黑龙江 哈尔滨 150036
蛋白尿是评估肾功能损害的一个最常用的指标,也是反应慢性肾脏病进展的重要标志物,肾小球过滤屏障的完整性取决于其3层结构(内皮、肾小球基底膜和足细胞),肾小球高灌注、高滤过和肾小球滤过屏障的损坏都会导致蛋白尿[1]。足细胞在肾小球滤过屏障中是最后一道屏障,裂孔隔膜(SD)是肾小球足细胞-肾小球滤过屏障的主要部分,而电荷屏障被认为是定位于肾小球基底膜。研究显示肾小球疾病与Nephrin mRNA的减少有关,Nephrin mRNA水平可以作为反应肾小球疾病进展的标志[2]。有研究显示在阿霉素(ADR)诱导的肾病中,足细胞的损伤直接导致蛋白尿的产生,其作用机制可能与Nephrin蛋白的表达下调相关[3]。肾小球疾病的发病机制非常复杂,包括炎性细胞的浸润,肾小球细胞增殖,以及足细胞相关分子(如Nephrin或Podocin)的功能障碍[1]。
肾炎消白颗粒(SYXB颗粒)是根据张琪教授多年临床经验方研制而成,主要由土茯苓50 g,黄芪40 g,党参、山药、生薏苡仁、桑椹子、金樱子、菟丝子、牛膝各20 g,沙参、玄参各15 g,白茅根、白花蛇舌草各30 g,甘草10 g组成,对治疗肾小球肾炎蛋白尿有很好的疗效。本实验根据文献报道[4]采用一次性尾静脉注射ADR制备肾病蛋白尿模型。阿霉素肾病动物模型具有病变稳定,用药后3 h~56天肾组织可见明显超微结构改变;且蛋白尿持续时间长,可持续9个月以上;该模型还具有慢性进展性肾损害的特点,与人类进行性肾病表现类似,是研究蛋白尿与慢性肾脏疾病进展的最佳动物模型。本研究通过观察SYXB颗粒对阿霉素大鼠肾脏组织中Nephrin蛋白表达的影响,探讨其作用机理。
1 材料和方法
1.1 实验动物 100只雄性Wistar大鼠购于北京维通利华实验技术有限公司,体质量180~200 g,生产许可证编号:SCXK(京2012-0001),合格证号:No.11400700008581。动物实验通过动物伦理委员会的审批。动物实验在哈尔滨医科大学附属二院SPF级动物实验室进行,合格证号:SCXK(黑)2013-001,实验室的温度控制在(20±3)℃,湿度控制在60%左右。
1.2 实验药物 肾炎消白颗粒(黑龙江省中医医院药厂)规格:10 g,黑药制字 Z20090011,批号:130302。洛汀新(上海新亚药业闵行有限公司)规格:10 mg,国药准字H20044840,批号:120402。阿霉素(浙江海正药业公司)规格:10 mg,国药准字H33021980,批号:111201。
1.3 试剂和设备 DAB显色试剂盒:北京中杉金桥生物技术有限公司。PV-600(兔抗鼠二抗):北京中杉金桥生物技术有限公司。EDTA抗原修复液:北京中杉金桥生物技术有限公司。Nephrin兔抗大鼠多克隆抗体:北京博奥森生物技术有限公司。病理切片机:美国Thermo HM340E,显微镜及摄像系统:日本OLYMPUS,数码病理图像分析系统MoticMed 6.0,尿白蛋白是由自动蛋白分析仪(SIEMENS BNTMII)进行检测,尿肌酐是由全自动生化分析仪(SIEMENS ADVIA2400)进行检测。
1.4 模型制备及分组 大鼠适应性喂养1周后,放置在室温(22±1)℃的空调室内,12 h照明,不间断给予自来水及含有18%蛋白质的标准大鼠饲料。100只Wistar雄性大鼠随机分为空白组(20只)和造模组(80只),造模组一次性尾静脉注射ADR 6.5 mg/kg。3天后,用蛋白试纸测试大鼠尿液,空白组大鼠尿蛋白试纸条为黄色,证明蛋白尿为阴性,造模组大鼠尿蛋白试纸条为绿色或者橙色,证明蛋白尿为阳性,造模组大鼠又随机分为模型组、洛汀新组、中药低剂量组、中药高剂量组,每组20只。
1.5 给药方法 空白组、模型组灌胃蒸馏水2 mL/d,洛汀新组灌胃洛汀新0.90 mg/kg,中药高、低剂量组分别灌胃SYXB颗粒3.60、1.80 g/kg,每天1次,1周连续给药6次,共给药7周。
1.6 标本的采集 每周第7天清晨用代谢笼收集随机尿液,检测尿蛋白排泄量。第3、5周末各组分别选取3只大鼠处死取右肾,用4%多聚甲醛固定,以备免疫组化检测及光镜下对肾脏进行组织学检查。7周末大鼠处死后,取大鼠右肾,立即投入4%多聚甲醛中固定,以备免疫组化检测及光镜下对肾脏进行组织学检查。镜下观察以胞质或胞膜出现棕黄色或棕褐色颗粒为阳性反应,每张切片于皮质处随机选取5个视野,采用MoticMed 6.0病理图像分析软件,计算每个肾小球阳性信号平均面密度(细胞阳性表达面积与视野总面积百分比)。
1.7 免疫组化检测 ①石蜡包埋组织,制成4μm切片。②常规脱蜡失水。③将切片浸入EDTA抗原修复液(pH 8.0)中,微波炉中高温加热至沸腾后断电,间隔10 min,反复2次。④放入3%H2O2去离子水孵育10 min,以阻断内源性过氧化物酶。⑤滴加按比例稀释的一抗(Nephrin兔抗大鼠多克隆抗体),置入4℃冰箱过夜。阴性对照用PBS代替一抗滴加。⑥滴加生物素标记的二抗,37℃孵育30 min。阴性对照用PBS代替二抗滴加。⑦选用DAB显色5~10 min,自来水充分冲洗。
1.8 病理切片观察 4%多聚甲醛固定肾脏,常规脱水、透明、浸蜡、包埋,制成3 μm石蜡切片,按常规方法行HE染色,观察光镜下肾组织病理学改变。
1.9 统计学方法 用SPSS19.0软件进行数据分析,计量资料以(±s)表示,两两比较用q检验,各组及时间点比较用方差分析。
2 结果
2.1 一般情况 注射完阿霉素之后的大鼠,逐渐出现懒动、嗜睡,甚至牙齿掉落、毛发脱落等现象,毛发跟空白组相比没有光泽,后期伴有严重的腹水和消瘦。用SYXB颗粒治疗7周后,症状明显轻于模型组,与洛汀新组比较,中药高剂量组状态较好。
2.2 各组大鼠尿蛋白/肌酐比值比较 见表1。与空白组比较,模型组大鼠各时间点尿白蛋白/尿肌酐比值显著升高,差异均有统计学意义(P<0.01)。与模型组比较,洛汀新组大鼠各时间点尿白蛋白/尿肌酐比值显著降低,中药高剂量组大鼠在第3、4、5、6、7周尿白蛋白/尿肌酐比值显著降低,差异均有统计学意义(P<0.05)。与洛汀新组比较,中药高剂量组大鼠在第5、6、7周尿白蛋白/尿肌酐比值较低,差异均有统计学意义(P<0.05)。
2.3 各组大鼠肾组织Nephrin蛋白表达比较 见表2,图1。各用药组中,Nephrin蛋白在第3周末表达上调,第5周末开始下调,而到第7周后表达上调,Nephrin蛋白的表达经历了一个先升后降再升的过程,最终在第7周末表达再次上调。与空白组比较,模型组大鼠各时间点肾组织Nephrin蛋白表达显著降低,差异均有统计学意义(P<0.05)。与模型组比较,洛汀新组、中药高剂量组大鼠各时间点肾组织Nephrin蛋白表达显著升高,差异均有统计学意义(P<0.05)。与第3周末比较,洛汀新组、中药高、低剂量组大鼠各时间点肾组织Nephrin蛋白表达显著升高,差异均有统计学意义(P<0.05)。
表1 各组大鼠尿白蛋白/尿肌酐比值比较(±s) mg/g
表1 各组大鼠尿白蛋白/尿肌酐比值比较(±s) mg/g
与空白组比较,①P<0.01;与模型组比较,②P<0.05;与洛汀新组比较,③P<0.05
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表2 各组大鼠肾组织Nephrin蛋白表达比较(±s)
表2 各组大鼠肾组织Nephrin蛋白表达比较(±s)
与空白组比较,①P<0.05;与模型组比较,②P<0.05;与第3周比较,③P<0.05
组 别空白组模型组洛汀新组中药高剂量组中药低剂量组第3周0.0 2 0±0.0 0 1 0 0.0 1 0±0.0 0 1 2①0.0 1 3±0.0 0 2 0②0.0 1 8±0.0 0 3 0②0.0 1 1±0.0 0 3 4第5周0.0 2 0±0.0 0 1 8 0.0 0 9±0.0 0 1 6①0.0 1 2±0.0 0 3 0②③0.0 1 5±0.0 0 2 0②③0.0 0 9±0.0 0 2 0③第7周0.0 2 0±0.0 0 1 3 0.0 0 7±0.0 0 2 3①0.0 1 4±0.0 0 2 0②③0.0 2 0±0.0 0 2 0②③0.0 1 6±0.0 0 2 5③
图1 各组大鼠肾脏组织中Nephrin表达结果 (×400)
2.4 各组大鼠7周内肾脏的病理学改变 见图2。光镜下对肾脏组织学的检查中,模型组大鼠肾脏表现为纤维组织增生,间质充血,肾小球出血,炎性细胞浸润,肾小管中出现蛋白管型、肾小管萎缩和肾小球萎缩、肿胀、变性的特征。第5周末,模型组大鼠出现节段硬化的情况,洛汀新组和中药低剂量组大鼠仍然有间质充血、肾小球肿胀和炎性细胞浸润的情况,中药高剂量组大鼠肾小球内有少量出血,间质内有少量炎性细胞浸润。第7周,模型组肾小球萎缩,伴有大量炎性细胞浸润,洛汀新组大鼠肾小球内仍有节段性硬化,中药高剂量组大鼠间质内有少量出血,中药低剂量组大鼠肾小管周围有纤维组织增生,肾小球内有蛋白管型,并伴有间质出血。
图2 各组大鼠7周内肾脏的病理学改变 (×400)
3 讨论
实验后期观察到模型组大鼠牙齿变黄浊,失去原有的光泽和透明度,甚至变脆易折断。《医述》曰“肾主骨,齿者骨之余,髓之所养,足阳明之支者,入于上齿,手阳明之支者,入于下齿若骨髓不足,阳明脉虚,则齿之诸病生矣;阳明实则齿坚牢,阳明虚则齿浮动。”慢性肾小球肾炎蛋白尿以脾肾虚损为本,肾虚髓枯,脾胃不充,齿失所养,故出现齿豁。实验后期中药高剂量组大鼠牙齿完整,表面光亮透明,较其它治疗组明显,分析此作用可能与SYXB颗粒中补脾肾药物有关,可通过补肾而使骨髓充养骨骼,补脾胃充实阳明而坚固齿龈,增强骨骼坚韧度。
慢性肾脏病是进展性疾病,不论病因如何,其肾组织结构改变常有一些共同点,基本形态学表现为毛细血管腔狭窄、闭塞缺血,肾小球玻璃样变性、硬化萎缩、数目减少,基底膜增厚,系膜细胞增殖,肾小管内大量蛋白管型,肾小管增粗或萎缩,结缔组织增生[5]。阿霉素肾病模型大鼠基本病理改变随病程进展,先后表现类似于人类微小病变型肾病、局灶节段性肾小球硬化症及肾小球硬化伴间质纤维化病变,实验室检查显示持续大量蛋白尿、低蛋白血症、高脂血症等异常;大量蛋白尿已被证实是加重肾脏病理损伤的独立危险因素,随着大鼠蛋白尿的增多,肾脏病理改变逐渐加重[6]。
大量实验证明蛋白尿跟足细胞的损伤相关,足细胞裂孔隔膜是滤过蛋白的关键结构,Nephrin是足细胞膜结构上的关键蛋白,对膜稳定性起着主要的作用,足细胞的破坏跟此种基因的变化密切相关,足细胞损伤最先反应在足细胞因子的异常变化,有报道指出随着蛋白尿的增多,足细胞损伤后,足细胞因子Nephrin会随之变化,不同的时间点检测,肾皮质中足细胞因子含量也不同[7~9]。光镜下观察,3周末模型组大鼠表现为纤维组织增生,间质充血,肾小球出血,炎性细胞浸润,肾小管中出现蛋白管型、肾小管萎缩和肾小球萎缩、肿胀、变性的特征;第5周末,与第3周相比更加严重,模型组出现了肾小球局灶节段性硬化,光镜下发现肾小球有新月体的形成。经过7周治疗,中药组大鼠病理改变有所好转,以中药高剂量组大鼠最明显。由此可说明Nephrin蛋白的表达跟肾病的进展有着明确的联系,SYXB颗粒能上调Nephrin蛋白的表达。相关的研究发现,第5周时,光镜下显示,大鼠肾脏发生了硬化,产生了器质性病变,损伤已经无法恢复,没有正常数量的足细胞去表达基因,所以基因开始无法代偿性增加,转而下降[10]。也有研究显示基因的变化跟蛋白尿增多、足细胞的损伤、裂孔隔膜的破坏关系密切,而刚开始的第3周,正是肾脏早期代偿性增大的时间,已有报道显示肾病早期肾脏为了应付损伤会用增大来代偿损伤,所以增大的肾脏表达的Nephrin蛋白也会相应增多[11]。光镜下观察到,造模后的大鼠肾小球在第3周时出现肿胀变大,5周时模型组大鼠逐渐出现肾小球硬化和萎缩,第7周模型组大鼠情况仍然恶化,而各给药组大鼠肾小球肿胀和萎缩情况改善,以中药高剂量组改善最佳。所以第3周时Nephrin蛋白会增加,而第5周的时候蛋白表达下降,第7周给药组蛋白表达上升。课题组认为SYXB颗粒和洛汀新治疗后延迟了肾脏的这种损伤和硬化的程度,所以相比于模型组蛋白表达是略升高的,至于延迟这种损伤的机制,认为是SYXB颗粒和洛汀新减轻了大鼠的症状,提高了机体抗病的能力,保持了内环境的平衡,使得肾脏有更多的能量应付损伤,减慢了损伤的速度。
[1]Gorriz JL,Martinez-Castelao A.Proteinuria:detection and role in native renal disease progression[J].Transplant Rev(Orlando),2012,26(1):3-13.
[2]Fukuda A,Wickman LT,Venkatareddy MP,et al. Urine podocin:nephrin mRNA ratio(PNR)as a podocyte stress biomarker[J].Nephrol Dial Transplant, 2012, 27(11):4079-4087.
[3]Li T, Mao J, Huang L, et al.Huaiqihuang may protect from proteinuria by resisting MPC5 podocyte damage via targeting p-ERK/CHOP pathway[J].Bosn J Basic Med Sci,2016,16(3):193-200.
[4]任胜利,邢昌旅.阿霉素肾炎与足细胞损伤[J].现代医药卫生,2004,20(3):171.
[5]林善锬.当代肾脏病学[M].上海:上海科技教育出版社,2001:382-390.
[6]孙伟,朱萱萱,曾安平,等.大黄廑虫丸对改良阿霉素肾病肾硬化大鼠模型作用的实验研究[J].中成药,2006,28(1):81-85.
[7]Welsh G,Saleem MA.The podocyte cytoskeleton-key to a functioning glomerulus in health and disease[J].Nat Rev Nephrol,2011,8(1):14-21.
[8]Li X,Chuang PY,D'Agati VD,et al.Nephrin preserves podocyte viability and glomerular structure and function in adult[J].J Am Soc Nephrol,2015,26(10):2361-2377.
[9]Ristola M,Lehtonen S.Functions of the podocyte proteins nephrin and Neph3 and the transcriptional regulation of their genes[J].Clin Sci:Lond,2014,126(5):315-328.
[10]Pätäri-Sampo A,Ihalmo P,Holthöfer H.Molecular basis of the glomerular filtration:nephrin and the emerging protein complex at the podocyte slit diaphragm[J].Ann Med,2016,38(7):483-492.
[11]高旭光,任现国,张沛.裂孔膜蛋白Nephrin和Podocin与后天获得性肾脏疾病关系研究进展[J].中国全科医学,2011,14(5B):1617-1619.