线粒体损伤与糖尿病心肌病发病关系的研究进展
2018-01-24鲍翠玉
刘 涛,李 晶,鲍翠玉
(湖北科技学院药学院,湖北科技学院糖尿病心脑血管病变湖北省重点实验室,湖北 咸宁 437100)
糖尿病心肌病(diabetic cardiomyopathy,DCM)是糖尿病引起的一种心血管并发症,由于其致死率较高,目前受到广泛关注。DCM的临床表现主要有充血性心力衰竭、心绞痛和心律失常;主要病理生理变化包括功能障碍、冠状动脉微血管病变和心脏结构改变,是糖尿病患者死亡的一个重要危险因素[1]。然而,DCM发生机制并不非常清楚,亦缺乏有用的防治措施。线粒体作为糖、脂肪、蛋白质等3大物质代谢中心,DCM的相关代谢异常可能引起线粒体功能受损。目前,一些证据表明DCM影响线粒体功能。如Montaigne等[2]研究显示,糖尿病患者心肌细胞表现为碎片化的线粒体;据报道,线粒体功能障碍在糖尿病病理过程中起着重要作用[3]。曹琼丹等[4]报道,线粒体参与细胞从生长到死亡的整个能量代谢过程,其生成障碍时,会直接影响线粒体的功能状态,而线粒体功能状态又与心血管疾病的发生发展关系密切。这些研究表明,线粒体损伤在DCM的发生发展中至关重要。本文根据近年来国内外文献研究进展,阐述线粒体损伤与DCM发病机制之间的关系。
1 线粒体能量代谢异常
心肌细胞是一个耗能较高组织,其能量的产生主要在线粒体内进行。生理情况下,脂肪酸β-氧化构成心脏中能量的主要来源,使用脂肪酸比使用葡萄糖时心脏消耗氧大,但是糖尿病心脏中脂肪酸β-氧化增加而葡萄糖氧化降低,从而引起心脏功能降低。DCM患者主要由线粒体脂肪酸β-氧化来合成ATP,这可导致线粒体耗氧量增多和呼吸功能的破坏。CD36是一种心肌细胞脂肪酸和脂蛋白摄取中起重要作用的质膜蛋白,该分子与脂质过载相关[5]。有文献报道[6],CD36基因缺失后脂肪酸吸收受到抑制,表明CD36可以影响脂肪酸的摄取和心肌病发展。在线粒体内膜上存在一类具有离子通道作用的解偶联蛋白(uncoupling protein,UCP),通过消耗线粒体膜质子动力,导致ATP的产生降低,从而降低线粒体效率。因此,线粒体解偶联的激活可能影响心肌细胞的收缩功能[6]。DCM患者的心肌脂肪酸含量的增加[7],能够引起过氧化物酶体增殖物活化受体α(PPAR-α)的激活,PPAR-α的激活可促使脂肪酸氧化及其摄取基因的表达,导致丙酮酸脱氢酶激酶受到抑制,葡萄糖的氧化能力损害,因而增加线粒体对脂肪酸的摄取,增加心肌耗氧量、减小心脏做功,导致能量消耗。心肌细胞分解脂肪酸的同时,也可蓄积糖酵解途径的中间产物和磷脂质,从而促进心肌细胞死亡。所以,线粒体代谢脂肪酸的同时增加了心脏耗氧量,引起心脏结构和功能改变,从而导致DCM。
2 线粒体氧化应激增强
氧化应激是指机体受到各种因素的环境刺激后,细胞内活性氧类(reactive oxygen species,ROS)生成过多,超过机体内抗氧化的清除能力,破坏了机体氧化与抗氧化系统之间的平衡,引起体内氧白由基的蓄积,从而造成对机体组织及细胞的损伤[8]。正常生理情况下,ROS在线粒体内生成较少,糖尿病时ROS急剧增加,机体抗氧化的能力相对不足,引起大量ROS的集聚,增强了氧化应激对蛋白质、核酸和脂质的损伤,最后引起细胞及组织的结构、生理和代谢机制破坏和调节异常。Sun等[9]对链脲佐菌素诱导的糖尿病鼠体内研究发现,高血糖状态大鼠心肌细胞线粒体形态发生变化,ROS水平较高。由线粒体等所生成的ROS主要经过以下4个信号通路引起DCM:① 心肌细胞内晚期糖基化终末产物通路,导致心血管病变;② 多元醇通路,引起组织损伤;③ 蛋白激酶 C(protein kinase C,PKC)通路引起微血管功能障碍及心肌细胞死亡;④ 已糖胺通路,引起细胞内钙离子外流增加,影响心肌的舒张功能,导致心肌细胞凋亡。因此,DCM线粒体氧化应激的增加是导致DCM发病的一个主要因素。ROS能够导致糖尿病心肌线粒体结构损害,同时通过诱导粒体内膜通透性孔道的开放,进一步损伤线粒体功能。正常情况下,线粒体由电子转移产生跨膜的电化学梯度,通过ATP合酶产生ATP[10]。其内膜对离子的不通透性来保持膜电位和产生ATP的能力。膜通透性孔道对ROS十分敏感,糖尿病时体内ROS产生过多,膜通透性孔道开放,导致膜电位去极化,引起ATP合酶逆向转运,迅速耗尽了细胞能量,导致心肌细胞死亡。ROS也能够使线粒体内膜通透性孔道对钙离子敏感,导致钙超载,进一步加剧膜通透性,抑制膜的通透性孔道的开放对心脏有保护作用。
3 线粒体动力学改变
线粒体的融合-分裂均衡是保持线粒体以及细胞正常生理功能的一个重要因素[11],一旦这种平衡被打破,将导致线粒体片段化并出现功能受损,表现出能量合成明显减少、ROS产生增多等,同时还将促使细胞死亡及疾病的进展。相关文献报道,与线粒体融合相关的分子有线粒体融合蛋白Mfnl、Mfn2、视神经萎缩因子1(Opal),介导分裂的主要因素包括动力素相关蛋白(DLPl)、分裂因子1(Fisl)和线粒体分裂因子(Mff)。Galloway等[12]报道,DLP1消融可能导致心脏结构和功能的缺陷,成熟心脏组织中线粒体融合的破坏,扰乱了心脏内稳态。Parra等[13]研究表明,胰岛素与线粒体动力学,特别是线粒体融合相关,糖尿病患者胰岛素信号的缺陷伴随线粒体融合蛋白Mfnl、Mfn2及Opal的表达受损。因此,线粒体动态改变与糖尿病DCM紧密联系,互为因果。然而,如何有效地干预心肌线粒体融合与分裂,达到治疗DCM的目的,有待更为深入的研究。
4 线粒体心磷脂变化
线粒体膜由脂质双分子层构成,绝大部分心磷脂位于其内膜磷脂双层的基质面[14],与线粒体呼吸链的电子传递和氧化磷酸化、线粒体蛋白的转运、线粒体自噬的调节及细胞死亡等密切相关。其结构、含量及酰基链基团组成的病变,都会相应地引起线粒体功能障碍,从而导致相关的组织器官的病理生理条件的改变。研究表明,心肌缺血的早期,不饱和心磷脂酰基物易受线粒体氧化应激增加的影响,导致心磷脂的氧化损伤,而氧化心磷脂的增多造成线粒体电子传递链的功能障碍[15-16],从而促使线粒体内ROS生成增多,最终导致线粒体损伤、细胞死亡及组织病变。另外,灌注使得与心磷脂结合的细胞色素C转变为一种过氧化物酶,从而使与细胞色素C结合发挥电子传递功能的心磷脂氧化为氢过氧化物,促进凋亡。在I型、II型糖尿病病理研究中发现,发病早期的小鼠心肌细胞里的四亚油酰心磷脂(tetralinoleoyl cardiolipin,TLCL)出现明显减少的现象。而服用降糖罗格列酮后的II型糖尿病小鼠,心肌总心磷脂和TLCL恢复正常水平。这些研究表明,线粒体心磷脂含量和构造的改变可能也是DCM发病的潜在机制。
5 线粒体钙紊乱
线粒体具有调节钙、储存钙的作用,并且产生能量[17-18]。据文献报道,糖尿病患者心肌细胞内Ca2+超负荷可引起呼吸作用、氧化磷酸化过程受损以及ROS增加。Ca2+由钙单向转运蛋白复合体介导,通过钠钙交换进入线粒体基质,使线粒体成为Ca2+的缓冲器,阻止糖尿病动物模型心肌细胞中细胞质内Ca2+的水平升高。此外,线粒体内堆积的游离脂肪酸、增加的氧化应激、紊乱的钙离子、线粒体膜电位降低以及线粒体内ATP耗竭等许多因素均可引起线粒体膜通道孔(mitochondrial permeability transition pore,mPTP)开放,这不但导致细胞内钙调节失衡,而且还促使位于线粒体内外膜间隙中的细胞色素C等多种促凋亡因子释放,进入胞质后与凋亡蛋白酶激活因子结合,从而诱发caspase级联反应,促进心肌细胞死亡,最后引起心功能衰竭。这些研究表明,DCM心肌细胞中线粒体功能受损可以影响Ca2+调控,然而其确切原理还需更进一步研究。
6 小结与展望
综上所述,线粒体损伤在DCM发病的多个环节中起到重要的调控作用,例如可导致线粒体能量代谢异常、ROS产生增加、线粒体的分裂和融合紊乱、心磷脂变化以及钙紊乱,可导致心脏功能障碍、冠状动脉微血管病变和心脏结构改变,从而加快DCM发病的进程,同时DCM也能引起线粒体功能损伤,它们并非相互独立,而是互相影响,共同作用。因此,保持糖尿病心肌细胞线粒体结构完整并防止其功能损害,均衡糖、脂代谢,保证细胞能量供应,可能是防治DCM新的研究方向。而体外实验及临床证据已经证明线粒体损伤在DCM中可以作为治疗靶点,这就需要在阐明疾病分子病理学的基础上,开发出能够靶向性抑制线粒体损伤的高选择性、高特异性药物应用于临床,最终实现基础研究向临床治疗的转化。
参考文献:
[1]Yu L Y, Shi W L, Gui G X. Cardio-protective role of gingerol along with prominent anti-diabetic cardiomyopathy action in a streptozotocin-induced diabetes mellitus rat model[J].CellJ, 2017,19(3): 469-75.
[2]Montaigne D, Marechal X, Coisne A, et al. Myocardial contrac tile dysfunction is associated with impaired mitochondrial function and dynamics in type 2 diabetic but not in obese patients[J].Circulation, 2014,130(7): 554-64.
[3]Ryan T E, Schmidt C A, Green T D, et al. Targeted expression of catalase to mitochondria protects against ischemic myopathy in high-fat diet-fed mice[J].Diabetes, 2016,65(9): 2553-68.
[4]曹琼丹,杨育红,于胜男,等. 黄芪甲苷对I型糖尿病大鼠心肌细胞PGC-1 aNRF-1表达的影响[J]. 中国药理学通报, 2015,31(8): 1096-101.
[4]Cao Q D, Yang Y H, Yu S N, et al. Effect of astragaloside Ⅳ on expression of PGC-1 aNRF-1 in cardiomyocytes of type I diabetic rats[J].ChinPharmacolBull, 2015,31(8): 1096-101.
[5]Kim J S, Lim K W. Relationship between FAT/CD36 protein in skeletal muscle and whole-body fat oxidation in endurance-trained mice[J].JExercNutritionBiochem, 2016,20(4): 48-52.
[6]Schilling J D. The mitochondria in diabetic heart failure: from pathogenesis to therapeutic promise[J].AntioxidRedoxSignal, 2015,22(17): 1515-26.
[7]李彩蓉,甘受益,黄红霞,等. 二苯乙烯苷对糖尿病大鼠心肌损伤的保护作用[J]. 中国药理学通报, 2016,32(3):410-5.
[7]Li C R, Gan S Y, Huang H X, et al. Protective effects of tetrahydroxystilbene glucoside on cardiac dysfunction in experimental diabetic cardiomyopathy [J].ChinPharmacolBull, 2016,32(3): 410-5.
[8]徐小惠,范氏泰,韦晓洁,等. 杨桃根总提取物对糖尿病小鼠肾功能及其抗氧化应激作用的研究[J]. 中国药理学通报, 2017,33(1): 95-100.
[8]Xu X H, Fan S T, Wei X J, et al. Study of the extract of averrhoacarambola L. root on renal function in diabetic mice and its anti-oxidative action[J].ChinPharmacolBull, 2017,33(1): 95-100.
[9]Sun X, Chen R, Yang Z, et al. Taxifolin prevents diabetic cardio-myopathyinvivoandinvitroby inhibition of oxidative stress and cell apoptosis[J].FoodChemToxicol, 2014,20(63): 221-32.
[10] Tsuyama T, Tsubouchi A, Usui T, et al. Mitochondrial dysfunction induces dendritic loss via eIF2α phosphorylation[J].JCellBiol, 2017,216(3): 815-34.
[11] Lanna A, Dustin M L. Mitochondrial fusion fuels T cell memory[J].CellRes, 2016,26(9): 969-70.
[12] Galloway C A, Yoon Y S. Mitochondrial dynamics in diabetic cardiomyopathy[J].AntioxidRedoxSign, 2015,22(17): 1545-62.
[13] Parra V, Verdejo H E, Iglewski M, et al. Insulin stimulates mitochondrial fusion and function in cardiomyocytes via the Akt-mTOR-NFκB-Opa-1 signaling pathway[J].Diabetes, 2014,63(1): 75-88.
[14] Kagan V E, Jiang J, Huang Z, et al. NDPK-D (NM23-H4)-mediated externalization of cardiolipin enables elimination of depolarized mitochondria by mitophagy[J].CellDeathDiffer, 2016,23(7): 1140-51.
[15] Mejia E M, Hatch G M. Erratum to: mitochondrial phospholipids: role in mitochondrial function[J].JBioenergBiomembr, 2015,47(3): 279-80.
[16] Mejia E M, Hatch G M. Mitochondrial phospholipids: role in mitochondrial function[J].JBioenergBiomembr, 2016,48(2): 99-112.
[17] Drago I, Davis R L. Inhibiting the mitochondrial calcium uniporter during development impairs memory in adult drosophila[J].CellRep, 2016,16(10): 2763-76.
[18] Yu Q, Fang D, Swerdlow R H, et al. Antioxidants rescue mitochondrial transport in differentiated Alzheimer’s disease trans-mitochondrial cybrid cells[J].JAlzheimersDis, 2016,54(2): 679-90.